Staphylococcus aureus strains are important foodborne pathogens that produce various toxins. To evaluate the risk of the enterotoxins, four S. aureus strains from kimbap and two clinical samples were isolated and identified, and their expression of the enterotoxin genes were analyzed using a reverse transcription real-time PCR. Various enterotoxin genes were detected, including sea, seg, seh, sei, sen, seo, and sem, where each isolate contained one or two. When the mRNA detection of the enterotoxin genes was analyzed using a reverse transcriptase PCR, various levels of expression were found depending on the species and enterotoxin gene. Therefore, it is reasonable to suggest that the poisoning risk of S. aureus can be effectively evaluated based on the gene expression at the mRNA level.
Staphylococcus aureus is a major pathogen for cattle, causing various forms of subclinical and clinical mastitis and could be a causative agent of food poisoning, it produces various superantigenic exotoxins which have a great public health significance. A total of 72 S. aureus clinical isolates from dairy farms located in Kyunggi Province Korea were examined for the species identification by biochemical method, and for the detection of $\beta$-lactamase, enterotoxin and other exotoxins genes by PCR. The results of species identification by biochemical method agreed with those of PCR done with species specific primer STA-AU. $\beta$-lactamase is an enzyme closely associated with the resistance to antibiotic penicillin, which is an important means of treatment of mastitis, all the isolates were positive for the presence of genes encoding $\beta$-lactamase, which were reproduced in penicillin susceptibility disc assay. Six types of toxin genes, Staphylococcal enterotoxin (SE)A, SEB, SEC, SEE, toxic shock syndrome toxin (TSST-1) and exfoliative toxin A (ET A) were detected in 72 isolates by PCR associated genotypic method in this study, none of the isolates carried the genes for enterotoxin D (SED) and exfoliative toxin B (ETB). The occurrence rate of exotoxin genes rated as 12.5%, and the precision of the PCR identification results has been confirmed using the reference strains.
Bacillus cereus group comprising B. cereus, B. thuringiensis, and B. mycoides was differentiated by polymerase chain reaction (PCR) and colony morphology. Prevalence of B. cereus group in rice and distribution of enterotoxin genes were determined as possible food poisoning agents. PCR using primers targeted for gyrB and cry genes could distinguish B. thuringiensis from B. cereus, and B. mycoides was differentiated by rhizoid morphological characteristics on nutrient agar. Among 136 rice and their processed products, prevalence of B. cereus group was 40%. B. cereus group consisted of 54 B. cereus, 11 B. thuringiensis, and 1 B. mycoides. Major isolates were B. cereus, with B. thuringiensis detected up to 10% among edible rice tested. Five enterotoxin genes, hbl, nhe, bceT, entFM, and cytK, were broadly distributed among B. cereus group, especially in B. cereus and B. thuringiensis. Prevalence of B. cereus group in rice and enterotoxin distribution suggest B. thuringiensis and B. cereus are toxigenic strain that should be controlled in rice and its products.
Bacillus cereus causes two different types of food poisoning syndromes: diarrhea and emesis. The diarrheal syndrome is attributed to various enterotoxins, including nonhemolytic enterotoxin, hemolytic enterotoxin, and enterotoxin-T, whereas the emetic syndrome is caused by the dodecadepsipeptide toxin cereulide. A multiplex polymerase chain reaction (PCR) assay was developed to rapidly detect and identify B. cereus strains. Three primer pairs specific to regions within genes encoding nonhemolytic enterotoxin (nheA), molecular chaperonin (groEL), and cereulide synthetase (ces) were used to identify and differentiate between the enterotoxin-producing and emetic toxin-producing B. cereus strains. The cereulide-producing emetic B. cereus showed 3 PCR products of 325, 405, and 685 bp for the groEL, ces, and nheA genes, respectively, whereas the enterotoxin-producing B. cereus showed 2 PCR products without a ces gene specific DNA fragment. Specific amplifications and differentiations by multiplex PCR assay were obtained using 62 B. cereus strains and 13 strains' of other bacterial species. The detection limit of this assay for enterotoxin-producing strain and emetic toxin-producing strain from pure cultures were $2.4{\times}10^1$ and $6.0{\times}10^2\;CFU/tube$, respectively. These results suggest that our multiplex PCR method may be useful for the rapid detection and differentiation of B. cereus strains in foods.
Nine types of staphylococcal enterotoxin (SE) genes (sea~see, seg~sej), 3 types of virulence genes (eta, etb, tst), mecA and 16S rRNA as internal positive control were detected from 187 clinical MRSA (methicillin resistance Staphylococcus aureus) strains isolated from a variety hospitalized patients in Daegu and Gyeongsangbuk-do areas using the multiplex PCR. The frequency of the S. aureus strains harboring recently reported SE genes (seg~sej) were found to be very high (65.9%) and greater than that of the strains harboring classical SE (sea~see) genes (47.8%) as previously established. Taking into account that the newly described pairs form SE genes (i.e., sec+seg+sei, seg+sei) were many, in the other hand, single form SE genes (i.e., seg, seh, sei and sej) were rarely detected. The S. aureus with pairs form enterotoxigenic genes become more potentially toxigenic strains. Furthermore, this work indicated a systematic association between the seg and sei genes and their high incidence among the S, aureus strains, which suggests that these two SE's could be an important phylogenetic link among the staphylococcal enterotoxins.
The aim of this study was to investigate the antimicrobial resistance profiles of and the enterotoxin gene distribution in 4 strains of Staphylococcus aureus (S10-2, S10-3, S12-2, and S13-2) isolated from 90 bulgogi samples. The S. aureus enterotoxin H gene (seh) was found in all the strains, while the S. aureus enterotoxin A gene (sea) was found only in 3 of the 4 strains. The S10-2 strain expressed a combination of enterotoxin genes - seg, seh, sei, sej, selm, and seln. The strains S10-2 and S13-2 were resistant to ampicillin and penicillin G, and all the isolated strains were resistant to tetracycline. The S10-2 strain was the only mecA-positive strain; it was also resistant to β-lactam antibiotics. Thus, genes encoding enterotoxin as well as those conferring antibiotic resistance were identified in the S. aureus strains isolated from pork bulgogi. These results represents the potential occurrence of MRSA in pork bulgogi, and the need for a monitoring system for pork bulgogi in order to prevent an outbreak of staphylococcal food poisoning.
Identification of virulent Bacillus cereus strains was examined by PCR using primers specific for the detection of plcR-papR, which encode regulatory proteins controlling the transcription of virulence factors in B. cereus. Total 96 strains of B. cereus that carried at least one of diarrheal toxin genes including hblACD, nheABC, and cytK showed all positive PCR products, while other 48 Bacillus strains that lacked the toxin genes were plcRpapR-negative. This PCR method targeting the plcR-papR genes appears to be simple and effective in identifying the enterotoxin genes-harboring B. cereus strains.
To provide microbial information for the safety of agricultural production, the presence of enterotoxin genes and antibiotic susceptibility of 14 isolated Staphylococcus aureus (11.7%) strains were investigated using PCR-based methods and disk diffusion method, respectively. Among enterotoxin-encoding genes, sea was detected from two isolates (14.3%), sea and sed genes were co-detected from three isolates (21.4%), and sea, sed, and see genes in seven isolates (50.0%), whereas seb, sec, and tsst were not detected in any isolate. Nine (64.3%), eight (57.1%), six (42.9%), two (14.3%), and one (7.2%) isolates were resistant to penicillin, novobiocin, amphicillin, erythromycin and oxacillin, and doxycycline and kanamycin, respectively. Methicilline-resistant S. aureus was found in roller of B farm and in hydroponic solution of D farm.
Kim, Se-Ri;Park, Seon-Ja;Shim, Won-Bo;Kim, Hyoung-Kab;Chung, Duck-Hwa
Journal of Environmental Health Sciences
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v.31
no.1
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pp.23-30
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2005
Staphylococcus aureus is one of the important pathogenic agents, which are related to the hygienic condition. This study performed for the detection of Staphylococcus aureus and screening staphylococcal enterotoxin a, b, c genes in strains isolated from the environment for production of non-pasteurized strawberry juice. A total of 44 samples were collected from utensils, machinery, employees, raw materials, and strawberry juices in 3 strawberry juice shops in Jinju, western Gyeongnam. The isolation rate of Staphylococcus aureus was 26%. Specially Staphylococcus aureus was frequently isolated from employee's hands, strawberry and strawberry juices. The sea, seb, and sec genes were also investigated by polymerase chain reaction (PCR). One hundred and 55% of each isolate had found sea gene and seb gene, respectively. However, sec gene was not detected anywhere. To prevent food-borne disease associated with juice, the accomplishment of HACCP to be more efficient and systematic is necessary.
Objectives: This study was conducted in order to evaluate the microbiological contamination of the indoor air of the lunchrooms at child care centers and investigate the toxin genes and toxin production ability of food-borne pathogens. Methods: A total of 64 child care centers were sampled to test total aerobic bacteria, coliform bacteria, fungi, Staphylococcus aureus, Bacillus cereus and Salmonella spp. according to the Korea Food Code. All toxin genes of pathogens were detected using the Polymerase Chain Reaction method. The Sthaph. aureus enterotoxin was detected by a Staphylococcus aureus enterotoxin-reversed passive latex agglutination kit. The heamolysin BL (HBL) and non-heamolytic enterotoxin (NHE) produced by B. cereus were detected using a B. cereus enterotoxin-reversed passive latex agglutination kit and Bacillus diarrheal enterotoxin visual immunoassay kit, respectively. Results: The means of total aerobic bacteria and coliform bacteria were $1.91{\pm}1.84$ log CFU/plate and $0.47{\pm}0.62$ log CFU/plate, respectively. The mean of fungi also showed $0.59{\pm}0.71$ log CFU/plate. Among the pathogenic bacteria tested in this study, Staphy. aureus and B. cereus were detected in four (6.3%) and 21 (32.8%) out of 64 indoor air samples from lunchrooms in child care centers, respectively. All Staphy. aureus tested in this study possessed no toxin genes and did not produce enterotoxin. The detection rate of nheABC, hblCDA, entFM and ces toxin gene in B. cereus was 100, 57.1, 76.2 and 0%, respectively. B. cereus isolates were classified into four groups according to the presence or absence of toxin genes. The nheABC gene was the major toxin gene among B. cereus tested in this study. The HBL was detected in 11 out of 21 B. cereus isolates (52.4%) and three B. cereus isolates produced NHE (14.3%). Conclusion: The results indicated that the contamination by microorganisms in the indoor air of lunchrooms was unqualified to supply safe catering in child care centers. The ongoing control of indoor air quality is required.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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