국내 시판 무 (Baekwoon) 의 씨앗으로부터 항 진균 단백질들을 (RAP-l,2)분리 하였으며[12] 이들 항 진균 단백질을 MALDI-TOF실험결과, 2S storage albumin, Rs-AFP등 지하부 식물의 defensin protein과[15] 일치함을 확인하였고 이에 시판되는 7종의 각각의 무 씨앗으로부터 조 단백질과 Total RNA를 분리 하여 항 효모 (Saccharomyces cerevisiae, Candida albicans.) 및 항 곰팡이 (Botrytis cenma)에 대한 항 진균성을 실험한 결과 항 곰팡이 활성은 모든 품종에서 보였으나 항 효모 활성은2 종 (Myungsan, Baekwoon) 의 무에서만 보였 다 . 또한 기존에 알려진 항 진균 단백질 (Rs-AFP)의 유전자를 Gene Bank/EMBL 에서 획득하여 씨앗으로부터 분리한 Total RNA 에 RT-PCR 한결과, 7종 중 2종은 0.2kb 의 산물이 보이지 않았다. 이들 Ks-AFP 유전자산물을 염기서열을 분석하였으며 이 염기서열에서 얻어진 아미노산 서열을 Clustal W를 이용한 pairwise alignment 분석에 의해 국내 시판 무 의 품종간 각clone의 계통수를 분석한 결과를 보고한다.
유도된 집파리유통 hemolymph중에서 Candida albicans의 3가지 anti-fungal peptides를 분리하였다. 3개 anti-fungal peptides는 분자량이 4-16 kDa 사이의 분명한 구별이 있을 뿐만 아니라, 각 peptide는 anti-fungal peptides작용이 있었다. 이들 peptide의 공통 특징은 모두 열을 받은 뒤 활성이 변하지 않는 비교적 강한 내열성을 보여주었다.
Purpose: The present study concerns molecular mechanisms involved in induction of apoptosis by a fungal taxol extracted from the fungus Cladosporium oxysporum in T47D human breast cancer cells. Materials and Methods: Apoptosis-induced by the fungal taxol was assessed by MTT assay, nuclear staining, DNA fragmentation, flow cytometry and pro- as well as anti-apoptotic protein expression by Western blotting. Results: Our results showed inhibition of T47D cell proliferation with an $IC_{50}$ value of $2.5{\mu}M/ml$ after 24 h incubation. It was suggested that the extract may exert its anti-proliferative effect on human breast cancer cell line by suppressing growth, arresting through the cell cycle, increase in DNA fragmentation as well as down-regulation of the expression of NF-${\kappa}B$, Bcl-2 and Bcl-XL and up-regulation of pro-apoptotic proteins like Bax, cyt-C and caspase-3. Conclusions: We propose that the fungal taxol contributes to growth inhibition in the human breast cancer cell through apoptosis induction via a mitochondrial mediated pathway, with possible potential as an anticancer therapeutic agent.
In the present study, we analyzed the defensin protein deduced from Korean radish (Raphanus sativus L.) seeds.To express the genes in E. coli, we constructed a recombinant expression vector with a defensin gene, named rKRs-AFP gene isolated from Korean radish seeds. Over expressed rKRs-AFP proteins was separated by SDS-PAGE to determine the purity, and protein concentration was determined by the Bradford method. Antifungal activity was assessed by disk assay method against the tested fungi. As a result, when 500 mL of cell culture were disrupted by sonicator, 32.5 mg total proteins were obtained. The purified protein showed a single band on SDS-PAGE with estimated molecular weight about 6 KDa, consistent with the molecular mass calculated from the deduced amino acid sequence. The purified rKRs-AFP protein showed remarkable antifungal activities against several fungi including Aspergillus niger, Botrytis cinerea causing the gray mold disease, and Candida albicans. In field tests using the purified rKRs-AFP protein, the protein showed the reducing activity of disease spot and the mitigating effect of spreading of disease like agrichemicals. The immuno-assay of rKRs-AFP protein showed that the purified protein entirely accumulated at B. cinerea cytoplasm through the hyphal septa shown by fluorescence imaging. There was no fluorescence inside the cell, when the hypha was incubated without the protein. These all results indicate that the recombinant rKRs-AFP proteins can be utilized as a potential antifungal drug to control harmful plant fungal pathogens.
항 진균제의 인체에 대한 부작용을 완화시키는 방법은 부작용이 적은 새로운 항 진균제 개발이나 기존 항 진균제와 혼용하여 상승효과를 나타내는 물질이 필요하다. 이를 위해 Rahnella aquatilis AY2000가 생산하는 항 효모물질은 일종의 단백질성 고분자 물질이란 점에서 기존 항 진균제와 차이가 있다. 이 항 효모물질은 유도기나 대수증식 기에 있는 효모 생육을 억제시켰으며, cell cycle 분석에서 sub-G1기에 속하는 세포수의 증가 없이 세포를 arrest시켰다. 따라서 항 효모물질은 Candida albicans에 정균작용을 나타내었다. 또한 in vitro 실험에서 이 항 효모물질과 itraconazole이나 fluconazole을 병용한 후 fractional inhibitory concentration index 분석을 행한 결과 항 효모활성이 더욱 상승되었다. 결론적으로 이 항 효모물질은 정균 작용을 가질 뿐만 아니라 azole계의 항 진균제와 혼용하면 상승효과를 가짐으로 부작용이 적은 새로운 개념의 항 진균제로 개발할 가치가 있을 것이라고 생각된다.
Soybean meal (SBM), a commonly used protein source for animal feed, contains anti-nutritional factors such as trypsin inhibitor, phytate, oligosaccharides among others, which limit its utilization. Microbial fermentation using bacteria or fungi has the capability to improve nutritional value of SBM by altering the native composition. Both submerged and solid state fermentation processes can be used for this purpose. Bacterial and fungal fermentations result in degradation of various anti-nutritional factors, an increase in amount of small-sized peptides and improved content of both essential and non-essential amino acids. However, the resulting fermented products vary in levels of nutritional components as the two species used for fermentation differ in their metabolic activities. Compared to SBM, feeding non-ruminants with fermented SBM has several beneficial effects including increased average daily gain, improved growth performance, better protein digestibility, decreased immunological reactivity and undesirable morphological changes like absence of granulated pinocytotic vacuoles.
Rehmannia glutinosa is one of the most important medicinal crops in Korea. However, various plant pathogens, including Fusatium spp., cause great damage on R. glutinosa and result in enormous economic losses. This study was conducted to breed Fusarium-resistant plants by using Agrobacterium tumefaciences and AFP (anti-fungal protein) gene. The plant material used was a native accession of R. glutinosa. The PCR analysis was conducted to verify transgenicity. Based on the PCR analysis, nptII band was observed in transgenic plant genome. Southern blot and AFP protein analyses also showed the expression of this gene in transgenic plants. Expression of AFP in transgenic plants offers the possibility of developing resistance to fungal infection.
Environmental stressors like pathogens and toxins may depress the animal immune system through invasion of the gastrointestinal tract (GIT) tract, where they may impair performance and production, as well as lead to increased mortality rates. Therefore, protection of the GIT tract and improving animal health are top priorities in animal production. Being natural-sourced materials, phytochemicals are potential feed additives possessing multiple functions, including: anti-inflammatory, anti-fungal, anti-viral and antioxidative properties. This paper focuses on immunity-related physiological parameters regulated by phytochemicals, such as carvacrol, cinnamaldehyde, curcumin, and thymol; many studies have proven that these phytochemicals can improve animal performance and production. On the molecular level, the impact of inflammatory gene expression on underlying mechanisms was also examined, as were the effects of environmental stimuli and phytochemicals in initiating nuclear factor kappa B and mitogen-activated protein kinases signaling pathways and improving health conditions.
Park, Yoon-Kyung;Kim, Mi-Hyun;Park, Seong-Cheol;Cheong, Hyeon-Sook;Jang, Mi-Kyeong;Nah, Jae-Woon;Hahm, Kyung-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제18권10호
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pp.1729-1734
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2008
Chitosan, a cationic polysaccharide, has been widely used as a dietary supplement and in a variety of pharmacological and biomedical applications. The antifungal activity and mechanism of action of low molecular weight water-soluble chitosan (LMWS-chitosan) were studied in fungal cells and vesicles containing various compositions of fungal lipids. LMWS-chitosan showed strong antifungal activity against various pathogenic yeasts and hyphae-forming fungi but no hemolytic activity or cytotoxicity against mammalian cells. The degree of calcein leakage was assessed on the basis of lipid composition (PC/CH; 10:1, w/w). Our result showing that LMWS-chitosan interacts with liposomes demonstrated that chitosan induces leakage from zwitterionic lipid vesicles. Confocal microscopy revealed that LMWS-chitosan was located in the plasma membrane. Finally, scanning electron microscopy revealed that LMWS-chitosan causes significant morphological changes on fungal surfaces. Its potent antibiotic activity suggests that LMWS-chitosan is an excellent candidate as a lead compound for the development of novel anti-infective agents.
Kim, Jeong-Ho;Chung, Ki-Chul;Kang, Hyun-Sam;Lee, Young-Kyu
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제1권4호
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pp.232-239
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1991
Caboxymethyl cellulase (CMCase) I was purified from the induced culture filtrate of Penicllium verruculosum F-3 by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephadex A-50 chromatography and Bio-gel P-150 filtration. The purified enzyme was assumed to be a glycoprotein consisting of 8.5% carbohydrate and having a molecular weight of 70.000 in SDS-polycrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The purified enzyme-specific anti-CMCase I IgG was obtained by rabbit immunization and protein A-sepharose CL-4B chromatography. The fungal poly($A^+$) RNA was isolated from the total RNA of the mycelium grown under cellulase induction conditions by oligo(dT)-cellulosse chromatography. The translation products in vitro were prepared by translating the isolated poly ($A^+$) RNA in rabbit reticulocyte lysate and analyzed by SDS-PAGE and fluorography. Of the translation products, CMCase I was identified by the immunoprecipitation against anti-CMCase I IgG.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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