Bacteriocin-producing lactic acid bacteria were isolated from kimchi. One isolate producing the most efficient bacteriocin was identified and named Lactococcus lactis B2, based on the biochemical properties and 16S rDNA sequences. The B2 bacteriocin inhibited many different Gram positive bacteria including Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Enterococcus, Streptococcus, and Staphylococcus, but did not inhibit Gram-negative bacteria. The bacteriocin was maximally produced at temperatures between $25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$ and at the initial pH of 7.0. Ninety $\%$ of the activity remained after 10 min of heat treatment at $121^{\circ}C,\;and\;100\%$, after 1 h exposure to organic solvents. The bacteriocin was purified from culture supernatant by ammonium sulfate precipitation, CM Sepharose column chromatography, ultrafiltration, and finally, by reverse-phase HPLC. A 1.58-kb fragment was amplified from B2 chromosome by using a primer set designed from the published nisA sequence. Sequencing result showed that the fragment contained the whole nisZ and 5' portion of nisB, whose gene product was involved in postmodification of nisin. The upstream sequence, however, was completely different from those of reported nisin genes.
Thirty-seven carbofuran-degrading bacteria were isolated from agricultural soils, and their genetic and phenotypic characteristics were investigated. The isolates were able to utilize carbofuran as a sole source of carbon and energy. Analysis of the 16S rRNA gene sequence indicated that the isolates were related to members of the genera Rhodococcus, Sphingomonas, and Sphingobium, including new types of carbofuran-degrading bacteria, Bosea and Microbacterium. Among the 37 isolates, 15 different chromosomal DNA patterns were obtained by polymerase chain reaction (PCR) amplification of repetitive extragenic palindromic (REP) sequences. Five of the 15 representative isolates were able to degrade carbofuran phenol, fenoxycarb, and carbaryl, in addition to carbofuran. Ten of the 15 representative isolates had 1 to 8 plasmids. Among the 10 plasmid-containing isolates, plasmid-cured strains were obtained from 5 strains. The cured strains could not degrade carbofuran and other pesticides anymore, suggesting that the carbofuran degradative genes were on the plasmid DNAs in these strains. When analyzed with PCR amplification and dot-blot hybridization using the primers targeting for the previously reported carbofuran hydrolase gene (mcd), all of the isolates did not show any positive signals, suggesting that their carbofuran hydrolase genes had no significant sequence homology with the mcd gene.
Lactic acid bacteria showing both protease activity and the capacity to produce casein phosphopeptide (CPP) were isolated from Korean kimchi, a traditional food made from fermented vegetables. Among the 450 strains of isolated lactic acid bacteria, the strain MG-379 showed high protease activity and the highest ability to produce CPP. Characterization results showed that MG-379 was gram-positive and measured $0.6-0.8{\mu}m$ in diameter. DNA sequencing of MG-379 and comparison with other sequences using BLAST revealed a 100% identity with the sequence of Enterococcus faecalis. However, MG-379 showed a higher CPP-producing ability than E. faecalis KCCM 40450. Accordingly, MG-379 was newly named as E. faecalis MG-379. Amount of free calcium liberated by CPPs was 2227.5 and 1151.6 mg/kg for E. faecalis MG-379 and E. faecalis KCCM (control), respectively.
Lactic acid bacteria with amylolytic and acid producing activities can ferment starch directly to lactic acid thereby producing a monomer for the production of biodegradable poly lactic acid (PLA). In this study, the strain producing L-lactic acid from soluble starch was isolated from Nuruk. The isolated strain was identified as Enterococcus sp. through its morphological, cultural, biochemical characteristics as well as the 16S rDNA sequence analysis, and named Enterococcus sp. JA-27. Enterococcus sp. JA-27 produced exclusively L-lactic acid from soluble starch as a carbon source. The optimal conditions for the maximum production of L-lactic acid from Enterococcus sp. JA-27 were 30 C, pH 8, 1.5 % soluble starch as a substrate and 3.5 % tryptone as a nitrogen source, 0.1 % $K_2$$HPO_4$, 0.04 % $MgSO_4$. $7H_2$O, 0.014 % $MnSO_4$$.$4$H_2O$, 0.004% $FeSO_4$$.$$7H_2$O. Batch and fed batch culture were carried out and the former was more effective. L-Lactic acid production in the optimum medium was significantly increased in a 7 L jar fermenter, where the maximum L-lactic acid concentration was 3 g/L. For the purification of lactic acid in fermented broth, two stage ionexchange column chromatographies were employed and finally identified by HPLC.
Kwon, Jeong Eun;Lee, Jin Woo;Park, Yuna;Sohn, Eun-Hwa;Choung, Eui Su;Jang, Seon-A;Kim, Inhye;Lee, Da Eun;Koo, Hyun Jung;Bak, Jong Phil;Lee, Sung Ryul;Kang, Se Chan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.1
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pp.22-31
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2018
Isoflavone itself is less available in the body without the aid of intestinal bacteria. In this study, we searched for isoflavone-transforming bacteria from human fecal specimens (n = 14) using differential selection media. Isoflavone-transforming activity as the production of dihydrogenistein and dihydrodaidzein was assessed by high-performance liquid chromatography and we found Lactobacillus rhamnosus, named L. rhamnosus vitaP1, through 16S rDNA sequence analysis. Extract from Pueraria lobata (EPL) and soy hypocotyl extract were fermented with L. rhamnosus vitaP1 for 24 and 48 h at $37^{\circ}C$. Fermented EPL (FEPL) showed enhanced anti-tyrosinase activity and antioxidant capacities, important suppressors of the pigmentation process, compared with that of EPL (p < 0.05). At up to $500{\mu}g/ml$ of FEPL, there were no significant cell cytotoxicity and proliferation on B16-F10 melanoma cells. FEPL ($100{\mu}g/ml$) could highly suppress the content of melanin and melanosome formation in B16-F10 cells. In summary, Lactobacillus rhamnosus vitaP1 was found to be able to biotransform isoflavones in EPL. FEPL showed augmented anti-melanogenic potential.
Prajapati, Jashbhai B.;Nathani, Neelam M.;Patel, Amrutlal K.;Senan, Suja;Joshi, Chaitanya G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.4
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pp.459-466
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2013
The lactic acid bacterium Streptococcus thermophilus is widely used as a starter culture for the production of dairy products. Whole-genome sequencing is expected to utilize the genetic basis behind the metabolic functioning of lactic acid bacterium (LAB), for development of their use in biotechnological and probiotic applications. We sequenced the whole genome of Streptococcus thermophilus MTCC 5461, the strain isolated from a curd source, by 454 GS-FLX titanium and Ion Torrent PGM. We performed comparative genome analysis using the local BLAST and RDP for 16S rDNA comparison and by the RAST server for functional comparison against the published genome sequence of Streptococcus thermophilus CNRZ 1066. The whole genome size of S. thermophilus MTCC 5461 is of 1.73Mb size with a GC content of 39.3%. Streptococcal virulence-related genes are either inactivated or absent in the strain. The genome possesses coding sequences for features important for a probiotic organism such as adhesion, acid tolerance, bacteriocin production, and lactose utilization, which was found to be conserved among the strains MTCC 5461 and CNRZ 1066. Biochemical analysis revealed the utilization of 17 sugars by the bacterium, where the presence of genes encoding enzymes involved in metabolism for 16 of these 17 sugars were confirmed in the genome. This study supports the facts that the strain MTCC 5461 is nonpathogenic and harbors essential features that can be exploited for its probiotic potential.
In order to develop a new starter for fermented milk, 1037 bacterial strains were isolated from raw milk. The strain that showed excellent acid producing and angiotensin converting enzyme (ACE) inhibitory activity (88.6%) was selected and identified as a Lactobacillus zeae based on the result of API carbohydrate fermentation pattern and 16S rDNA sequence. Lactobacillus zeae RMK354 was investigated further to study its physiological characteristics. It showed strong ACE inhibitory activity compared with commercial LAB starters tested. The optimum growth temperature of L. zeae RMK354 was $40^{\circ}C$ and it took 10 hr to reach pH 4.3 under this condition. L. zeae RMK354 showed more sensitive to penicillin-G, bacitracin, novobiocin, in a comparison of 14 different antibiotics, and showed most resistance to polymyxin B and vancomycin. It showed higher esterase and leucine arylamidase activities compared with 16 other enzymes. It was comparatively tolerant to bile juice and able to survive at pH 2 for 3 hr. It showed inhibitory activity against Salmonella Typhimurium with the rate of 60%. Based on these and previous results, L. zeae RMK354 could be an excellent starter culture for fermented milk with high level of ACE inhibitory activity.
Purpose: The probiotic effects of lactic acid bacteria have widely been researched in diverse human pathogens, but only a few effects are reported against oral pathogens. The antimicrobial effects of the Enterococcus faecium 7413 isolated from Korean infants on the 9 pathogen including 6 oral streptococci were investigated the clinical use of the antimicrobial peptide for oral microflora control. Materials and Methods: E. faecium 7413 was identified by morphological, biochemical tests and 16S rDNA sequence analysis. Inhibitory effects of culture supernatants were determined for their ability to grow on agar plate containing pathogenic bacteria. Result: The culture supernatant of Enterococcus faecium 7413 showed inhibitory effects on oral pathogens, namely Streptococcus pyogenes KCTC 3556, S. pneumoniae KCTC 5080, S. mutans ATCC 25175, S. anginosus ATCC 33397, S. constellatus KCTC 3268, S. intermedius ATCC 27823 and Shigella flexneri KCTC 2008. Whereas it did not affect the multiplication of E. coli strains, KCTC 1041 and ATCC 43894. Conclusion: The data obtained in this study could be useful for future development of effective probiotics allowing prevention for oral pathogens.
Among 63 Bacillus strains grown at $60^{\circ}C$ from sixteen samples of homemade Korean soybean paste, one strain was selected for producing the thermostable protease. The isolate has been identified as Bacillus licheniformis on the basis of its 16S rDNA sequence, morphology and biochemical properties. Culture filtrate of the isolate showed maximal protease activity at the reaction condition of $60-65^{\circ}C$ and pH 11. The culture filtrate retained more than 87% of initial protease activity after incubation for 30 min at $60^{\circ}C$ without substrate. In order to develop the medium composition, effects of ingredients including nitrogen sources, carbon sources, metal ions and phosphate were examined for protease production of the isolate. Lactose and soytone peptone were the most effective carbon and nitrogen source for the enzyme production. After the late logarithmic growth phase the isolate began to produce the protease, and the maximum protease productivity was reached to 550 unit/ml in the optimized medium consisting of lactose (3%), soytone peptone (1.5%), $MgSO_4$ (0.1%), $K_2HPO_4$ (0.03%), and $KH_2PO_4$ (0.03%) at 28 h of incubation.
The ${\alpha}$-galactosidase-coding gene agaAJB13 was cloned from Sphingomonas sp. JB13 showing 16S rDNA (1,343 bp) identities of ${\leq}97.2%$ with other identified Sphingomonas strains. agaAJB13 (2,217 bp; 64.9% GC content) encodes a 738-residue polypeptide (AgaAJB13) with a calculated mass of 82.3 kDa. AgaAJB13 showed the highest identity of 61.4% with the putative glycosyl hydrolase family 36 ${\alpha}$-galactosidase from Granulicella mallensis MP5ACTX8 (EFI56085). AgaAJB13 also showed <37% identities with reported protease-resistant or Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidases. A sequence analysis revealed different catalytic motifs between reported Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidases (KXD and RXXXD) and AgaAJB13 (KWD and SDXXDXXXR). Recombinant AgaAJB13 (rAgaAJB13) was expressed in Escherichia coli BL21 (DE3). The purified rAgaAJB13 was characterized using p-nitrophenyl-${\alpha}$-D-galactopyranoside as the substrate and showed an apparent optimum at pH 5.0 and $60^{\circ}C$ and strong resistance to trypsin and proteinase K digestion. Compared with reported proteaseresistant ${\alpha}$-galactosidases showing thermolability at $50^{\circ}C$ or $60^{\circ}C$ and specific activities of <71 U/mg with or without protease treatments, rAgaAJB13 exhibited a better thermal stability (half-life of >60 min at $60^{\circ}C$) and higher specific activities (225.0-256.5 U/mg). These sequence and enzymatic properties suggest AgaAJB13 is the first identified and characterized Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidase, and shows novel protease resistance with a potential value for basic research and industrial applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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