Apolipoprotein E (apoE) restriction isotyping used oligonucleotides to amplify apoE gene sequences containing amino acid positions 112 and 158. The amplification products were digested with HhaI and subjected to electrophoresis on $4\%$ agarose gel. Each of the isoforms was distinguished by a unique combination of HhaI fragment sizes that enabled unambiguous typing of all homozygotic and heterozygotic combinations. HhaI cleaves at GCGC encoding 112arg (E4) and 158arg (E3, E4), but does not cut at GTGC encoding 112cys (E2, E3) and] 58cys (E2). DNA was isolated from 72 study participants and apoE genotypes were determined utilizing the polymerase chain reaction and restriction isotyping. In the entire group of subjects, $38 (52.8\%)$ had apo E4/4 or E3/4 (Group E4), $28(38.9\%)$ had the apo E3/3 genotype (Group E3) and $6(8.3\%)$ had apo E2/2 or E2/3 (Group E2). This genotypic information may help to identify individuals at increased risk for several diseases.
This study was carried out to find out PSS(Porcine Stress Syndrome) with the PSE(Pale, Soft, Exudative) in different piglets. These experiments were accomplished with the aid of PCR-RFLP(Polymerase Chain Reaction-Restriction Fragment Length Polymorphism). The samples were collected and examined from umbilical cord blood of piglets of Yorkshire, Landrace and Crossbred. And then, the PCR products were digested by restriction enzyme, Hha I. The results obtained were as follows; The PCR products of the blood genomic DNA of ryanodine receptor gene were length of 1 .8kb in umbilical cord blood. Normal type(NN), heterozygous type(Nn) and recessively homozygous type(nn, PSS) as a result of digestion of restriction enzyme, Hha 1, were 90.0%, 10.0% and 0.0% in Yorkshire piglets, 76.2%, 19.0% and 4.8% in Landrace, 69.1%, 23.8% and 7.1% in crossbred, respectively. As already showing the above results, the blood from piglets umbilical cord can be availably used for the determination of genotypes of PSS because of easiness of blood collection without stress in live piglets.
Kim, Sun-Mee;Cho, Min-Kyung;Yu, Hak-Sun;Cha, Hee-Jae;Ock, Mee-Sun
Journal of Life Science
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v.19
no.9
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pp.1328-1332
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2009
Anisakidosis is caused by anisakid nematodes (family Anisakidae) larvae which can cause not only direct tissue damage but also a severe allergic response related to excretory-secretion products. Lots of different species of anisakid larvae, including Anisakis simplex, Contracaecum, Goezia, Pseudoterranova, and Hysterothylacium, cause the anisakidosis. But it is difficult to diagnosis the species of larvae since the morphologies of larval anisakid nematodes are almost indistinguishable. In order to diagnosis the differential infections of larval anisakid nematodes, polymerase chain reaction - restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) of 18S rDNA - was conducted. Three major species of anisakid larvae including A. simplex, C.ontracaecum spp, and Goezia spp. were collected from mackerel (Scomber japonicus), mullet (Mugil cephalus), founder (Paralichthys olivaceus), eel (Astroconger myriaster) and red sea bream (Pagrus major). PCR amplified 18S rDNA from each species of anisakid larvae was digested with eight restriction enzymes including Taq I, Hinf I, Hha I, Alu I, Dde I, Hae III, Sau96 I, and Sau3A I. The original sizes of PCR amplified 18S rDNA were 2.0Kb in both anisakid larvaes and Goezia. Restrction enzymes including Hinf 1, Alu 1, Hha I, Dde 1 and Hae III cut differently and distinguished the A. simplex and Contracaecum type C'. However, Contracaecum type A showed two different restriction enzyme cutting patterns by Taq 1, Hinf I, Alu 1, and Dde 1. One of the patterns was the same as those of A. simplex, Contracaecum type C' and Goezia and the other was unique. These results suggest that PCR-RFLP pattern by Hinf 1, Alu 1, Hae I, Dde 1 and Hae III can be applied to differential diagnosis of human infection with A. simplex and Contracaecum type C'. Contracaecum type A needs further study of classification by morphological characteristics and genetic analysis.
Seo, Sang-Tae;Jeong, Su-Jee;Lee, Seung-Kyu;Kim, Kyung-Hee
Research in Plant Disease
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v.17
no.1
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pp.99-101
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2011
The ascomycetous fungus Taphrina wiesneri, the pathogen of cherry witches' broom, is highly pathogenic to Prunus yedoensis, the most widely planted cherry trees in Korea as park and roadside trees. A collection of 13 strains of the pathogen in Korea and Japan was characterized by 18S rDNA gene sequence and restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis. In cluster analysis based on 18S rDNA gene sequence the strains were divided into 2 clusters. In RFLP analysis of the rDNA-IGS region using HhaI, the strains were separated into four patterns, B, C, D and G, of which pattern G was new.
Lentinula edodes (Berk.) Pegler, the most produced mushroom in the world, is an edible mushroom with very high nutritional and pharmacological value. Currently, interest in the protection of genetic resources is increasing worldwide, and securing the distinction between new cultivars is very important. Therefore, the development of efficient molecular markers that can discriminate between L. edodes cultivars is required. In this study, we developed cleaved amplified polymorphic sequence (CAPS) markers for the identification of L. edodes cultivars (Sanbaekhyang and Sulbaekhyang). These markers were developed from whole genome sequencing data from L. edodes monokaryon strain B17 and resequencing data from 40 cultivars. A nucleotide deletion existed in scaffold 19 POS 214449 in Sanbaekhyang (GT→G), and a single nucleotide polymorphism changed in scaffold 7 POS 215801 in Sulbaekhyang (G→A). The restriction enzymes Hha I and HpyCH4IV distinguished Sanbaekhyang and Sulbaekhyang, respectively, from other cultivars. Thus, we developed two CAPS markers for the identification of the L. edodes cultivars Sanbaekhyang and Sulbaekhyang.
Two groups of phytoplasma were identified in chrysanthemum(Dendranthema grandiflorum) cv. Chunkwang showing distinct symptoms. Isolate Ph-ch1 showed symptoms of dwarf, witches'-broom, rosette and root death. The other isolate, Ph-ch2, revealed symptoms of dwarf, yellowing, leaf cupping, vein clearing and root death. The presence of phytoplasma structures in chrysanthemum leaf tissue was confirmed by transmission electron microscopy. The 16S rRNA gene was amplified from isolates Ph-ch1 and Ph-ch2 by PCR and cloned, and the nucleotide sequences were determined. In RFLP analysis, isolate Ph-ch2 showed profiles identical to Ph-ch1, except with restriction enzymes HhaI and MseI. The sequence data showed that isolate Ph-ch1 was most closely related to the aster yellows (AY) phytoplasma, and isolate Ph-ch2 was more closely related to stolbur phytoplasma than to AY phytoplasma. This is the first reported observation of stolbur phytoplasma in chrysanthemum species.
Jujube trees infected with phytoplasma exhibit symptoms of typical witches' broom, such as yellowing, abnormally small leaves, short internodes and proliferation of shoots. A 1.2 kb fragment of the 16S rDNA from jujube phytoplasma was generated by R16F2n/R16R2 primer pair from earlier amplified P1/P7 PCR products of cloned jujube witches' broom phytoplasmas. Enzymatic restriction fragment length polymorphism (RFLP) and sequence analysis of 16S rDNA revealed that the jujube tree was infected with 16S rDNA I and V groups of phytoplasmas. Extensive comparative analyses of restriction enzyme profiles from Alu I, Hha I, Msp I, and Rsa I clearly classified the two into different phytoplasma groups. The phylogenie analyses based on 16S rDNA showed that the similarity of the two different clones was 87.5%. This is the first report of a mixed phytoplasmal infection in a single jujube tree.
To evaluate the phylogenetic and taxonomic status of the phytoplasmas associated with water dropwort (Oenanthe javanica DC) disease in Korea and Japan, their 16S rDNA was analyzed. DNAs extracted from water dropworts collected in Korea (Kyongnam province) and Japan (Chiba prefecture) affected by witches' broom and yellows were subjected to PCR using phytoplasma-specific primers, which amplified a 1.4-kbp fragment that included the 16S rDNA. Phytoplasmas were characterized by RFLP analysis using AluI, HaeIII, HhaI, KpnI, MseI, and RsaI restriction enzymes and by sequence analysis of the PCR products. The mater dropwort witches'broom (WDWB) and water dropwort yellows (WDY) 16S rDNA sequences were identical and closely related to onion yellows (OY, 99.9% identity), which belong to the aster yellows (AY) 16S-subgroup. However, the KpnI RFLP analyses clearly distinguished the WDY and WDWB phytoplasmas from the OY phytoplasma. The phylogenetic analysis based on 16S rDNA showed that WDWE and WDY phytoplasmas are members of a relatively homogeneous group that evolved from a common ancestor.
Park, Gug-Seoun;Kim, Jae-Hyun;Kim, Jeong-Soo;Park, Jang-Kyung
The Plant Pathology Journal
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v.20
no.2
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pp.131-134
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2004
A strain of Cucumber mosaic virus (CMV) was isolated from a weed, water chickweed (Stellaria aquatica), growing in the pepper field in Chunchon, Korea. This isolate, CMV-Sa, was differentiated from other CMVs based on biological properties and nucleotide sequence analysis of the coat protein (CP) gene. CMV-Sa showed different reactions to all the tested plants, except Capsicum annuum and Cucumis sativus, when compar-ed with those of CMV-Mf (subgroup I) and CMV-PaFM (subgroup II). Remarkably, in Nicotiana tabacum cvs. Samsun, Xanthi-nc and Ky-57, CMV-Sa induced local necrotic ring spots on the inoculated leaves and venal wave pattern and mosaic on the upper leaves. RNA analysis, serology, and RT-PCR of CP gene showed that CMV-Sa belonged to subgroup I of CMV. However, restriction enzyme analysis of the cDNA using AluI, HhaI, HincII, HindIII, HinfI and MspI showed that CMV-Sa was distinct from that of CMV-Mf. Based on comparison of the nucleotide of CP gene and deduced amino acid sequences between other CMV strains, CMV-Sa was closely related to CMV-Mf with 93.7% and 97.2 % identity, respectively.
Kim, Young-Joo;Seo, Sheungwoo;Wang, Xiaoyu;Seo, Dong Joo;Lee, Min Hwa;Son, Na Ry;Lee, Bog-Hieu;Choi, Changsun
Food Science of Animal Resources
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v.33
no.5
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pp.610-616
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2013
Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) is an emerging detection technology for the amplification of DNA under isothermal conditions. The aim of this study was to develop a rapid and reliable LAMP technique for the detection of Cronobacter sakazakii in milk powder. In order to enhance the sensitivity and specificity, LAMP primers targeting outer membrane protein A (ompA) gene of C. sakazakii were designed using Explorer V4 software. Thirty seven C. sakazakii strains and 13 pathogenic microorganisms were used for comparative detection of C. sakazakii using polymerase chain reaction (PCR), real-time PCR, and LAMP. LAMP developed in this study could specifically detect C. sakazakii strains without cross-reactivity with other foodborne pathogens. LAMP products amplified from ompA gene of C. sakazakii were digested with with HhaI and NruI enzyme. The specificity of LAMP was confirmed by restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis. LAMP could detect C. sakazakii within 1 h without bacterial culture and its detection limit was as low as 1 CFU/mL C. sakazakii in milk. In the comparison of the sensitivity, LAMP showed 10,000- and 100-times higher detection limit than PCR or real-time PCR, respectively. Therefore, this study can conclude that LAMP is a rapid and reliable detection technique for C. sakazakii contaminated in powdered milk.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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