Surface plasmon resonance has been used for a biospecific interaction analysis between two macromolecules in real time. Determination of an antibody that is capable of specifically interacting with the native form of antigen is very useful for many biological and medical applications. Twenty monoclonal antibodies against the $\alpha$ subunit of E. coli DNA polymerase III were screened for specifically recognizing the native form of protein using surface plasmon resonance. Only four monoclonal antibodies among them specifically recognized the native $\alpha$ protein, although all of the antibodies were able to specifically interact with the denatured $\alpha$ subunit. These antibodies failed to interfere with the interaction between the $\tau$ and $\alpha$ subunits that were required for dimerization of the two polymerases at the DNA replication fork. This real-time analysis using surface plasmon resonance provides an easy method to screen antibodies that are capable of binding to the native form of the antigen molecule and determine the biological interaction between the two molecules.
It was found that the diapause in the silkworm egg is induced by the action of the diapause hormone secreted from the suboesophageal ganglion, and "esterase A" affects protein metabolism in oocyte and egg. In this connection, some changes in protein metabolism of silkworm egg according to embryonic developments could give some information on the diapause, using Ouchterlony Test. Antigenicity of the protein of silkworm egg was detected through antigen-antibody interaction among the extracts of rabbit blood. Furthermore, existence of the specific antigen was also detected according to embryonic development, using the adsorption test. The results were obtained as follows: 1 Detection of antigenicity The antigenicity of silkworm egg was ascertained by inoculating it into a rabbit, but positive results were shown in most of the silkworm eggs tested, whereas the antibody specific to a certain antigen was not detected. 2. Detection of the common antigen It was demonstrated that most of the antigen could incite the common antibodies, but the specific antibody formation was not detected in a few antigens, even though the nonspecific antibody formation was displayed. 3. Detection of the specific antigen It is suggested that there are the specific antigens detectable in each treated eggs by the adsorption test.
This research was conducted to develop a quick and sensitive method of detecting carbamate residues using the immobilization of antibody-antigen interactions with surface plasmon resonance (SPR). We have used commercialized surface plasmon resonance equipment (Biacore 3000). The antibody used for the immunoassay was specific for glutathione-s-transferase (GST) and the antigens included several carbamate pesticides (carbofuran, carbaryl, and benfuracarb). When antigens were applied to the protein GST, the detection limit was 2 ng/mL of carbamate pesticide. The fabricated protein GST maintained its activity for over 200 measurements. Thus we determined that the SPR biosensors could detect the specific reversible binding of a reactant in solution to a binding partner immobilized on the surface of the sensor and allow real-time detection and monitoring.
The tetradecameric peptide (K47-K60) near the NH$_2$-terminal region of epithelial-cell adhesion molecule (Ep-CAM) was chosen as antigenic site and a polyclonal antibody was generated, which could recognize Ep-CAM from the mouse colon tissue or the colon cancer cell, CT-26, in Western blot analysis. Then, the fluorescein isothiocyanate (FITC), a fluorescence dye, was conjugated with the affinity purified Ep-CAM antibody using thiocyanate and the amino groups of FITC and antibody, respectively. The molar ratio of FITC to antibody was estimated approximately 1.86 to 1.00 by measuring the optical densities at 492 nm and 280 nm. Ep-CAM antibody-FITC conjugate was then used for immunohistochemistry of the CT-26 cells. Judging from the shapes formed by fluorescence, the Ep-CAM antibody could delivered FITC to the surface of cells in which Ep-CAM was expressed. This result implies that Ep-CAM antibody could be also used for the tissue-specific delivery of the photosensitizer to the target protein via antigen-antibody interaction.
Lee Woo-Chang;Lim Sang-Soo;Choi Bum-Kyoo;Choi Jeong-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.8
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pp.1216-1221
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2006
A protein array was fabricated for a miniaturized immunoassay using microcontact printing ($\mu$CP). A polydimethylsiloxane (PDMS) stamp with a 5 $\mu$m$\times$5 /$\mu$m dimension was molded from a silicon master developed by photolithography. Under optimal fabrication conditions, including the baking, incubation, and exposure time, a silicon master was successfully fabricated with a definite aspect ratio. An antibody fragment was utilized as the ink for the $\mu$CP, and transferred to an Au substrate because of the Au-thiol (-SH) interaction. The immobilization and antibody-antigen interaction were investigated with fluorescence microscopy. When human serum albumin (HSA) was applied to the protein array fabricated with an antibody against HSA, the detection limit was 100 pg/ml of HSA when using a secondary antibody labeled with a fluorescence tag. The fabricated protein array maintained its activity for 14 days.
Kim, Woo Jin;Lee, Hui Young;Lee, Seung-Joon;Jung, Se-Hui;Yuk, Jong Seol;Ha, Kwon-Soo;Jung, Ki-Suck
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.60
no.4
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pp.412-418
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2006
Background; The diagnosis of chlamydial infection is based on serology. The current gold standard of diagnosis is MIF(microimmunofluorescence), but this modality is subjective and time-consuming. Protein microarray with using a SPR(surface plasmon resonance) sensor has recently been suggested as a method for detecting infection. For developing a protein chip to diagnose chlamydial infection, EBs(elementary bodies) were immobilized on a gold chip and the interaction between an antibody for Chlamydophila pneumoniae and the EBs(elementary bodies) immobilized on the surface of the gold chip was measured by using an SPR sensor. Methods; For the surface antigen, the EBs of Chlamydophila pneumoniae LKK1 were purified. Charged arrays were prepared by using PDDA(polydiallyldimethylammonium chloride) which has a positive charge. After immobilization of the chlamydial EBs on the PDDA surface, the investigation of the surface was done with using atomic force microscopy. After the antibody for C. pneumoniae was applied on chip, we monitored the SPR wavelength-shift to detect any antigen-antibody interaction with using a self-assembled SPR sensor. Results; The chlamydial EBs on the positively charged PDDA were visible on the surface with using atomic force microscopy. The SPR wavelength increased after interaction of antibody for C. pneumoniae with the EBs immobilized on charged gold surface. The wavelength-shift was correlated with the concentration of antigens. Conclusion; The surface immobilization of EBs on the gold surface with the charged arrays was identified and the antigen-antibody interaction on the gold chip was detected via the SPR sensor. Further investigations are needed to apply this technique to the clinical field.
We have detected deoxynivalenol(DON) using a metal-oxide-semiconductor field-effect-transistor(MOSFET)-based biosensor. The MOSFET-based biosensor is fabricated by a standard complementary metal-oxide-semiconductor(CMOS) process, and the biosensor's electrical characteristics were investigated. The output of the sensor was stabilized by employing a reference electrode that applies a fixed bias to the gate. Au which has a chemical affinity for thiol was used as the gate metal to immobilize a self-assembled monolayer(SAM) made of 16-mercaptohexadecanoic acid(MHDA). The SAM was used to immobilize anti-deoxynivalenol antibody. The carboxyl group of the SAM was bound to the anti- deoxynivalenol antibody. Anti-deoxynivalenol antibody and deoxynivalenol were bound by an antigen-antibody reaction. In this study, it is confirmed that the MOSFET-based biosensor can detect deoxynivalenol at concentrations as low as 0.1 ${\mu}g$/ml. The measurements were performed in phosphate buffered saline(PBS; pH 7.4) solution. To verify the interaction among the SAM, antibody, and antigen, surface plasmon resonance(SPR) measurements were performed.
The advent of the major histocompatibility complex (MHC) multimer technology has led to a breakthrough in the quantification and analysis of antigen-specific T cells. In particular, this technology has dramatically advanced the measurement and analysis of CD8 T cells and is being applied more widely. In addition, the scope of application of MHC multimer technology is gradually expanding to other T cells such as CD4 T cells, natural killer T cells, and mucosal-associated invariant T cells. MHC multimer technology acts by complementing the T-cell receptor-MHC/peptide complex affinity, which is relatively low compared to antigen-antibody affinity, through a multivalent interaction. The application of MHC multimer technology has expanded to include various functions such as quantification and analysis of antigen-specific T cells, cell sorting, depletion, stimulation to replace antigen-presenting cells, and single-cell classification through DNA barcodes. This review aims to provide the latest knowledge of MHC multimer technology, which is constantly evolving, broaden understanding of this technology, and promote its widespread use.
Lee, E. K.;Ahn, S. J.;Yoo, C. H.;Ryu, K.;Jeon, J. Y.;Lee, H. I.;Choi, S. C.;Lee, Y. S.
KSBB Journal
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v.17
no.1
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pp.20-25
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2002
We performed a basic experiment for rapid, on-line, real-time measurement of HBsAg by using a surface plasmon resonance biosensor to quantify the recognition and interaction of biomolecules. We immobilized the anti-HBsAg polyclonal antibody to the dextran layer on a CM5 chip surface which was pre-activated by N-hydroxysuccinimide for amine coupling. The binding of the HBsAg to the immobilized antibody was measured by the mass increase detected by the change in the SPR signal. The binding characteristics between HBsAg and its antibody followed typical monolayer adsorption isotherm. When the entire immobilized antibody was interacted, there was no additional, non-specific binding observed, which suggested the biointeraction was very specific as expected and independent of the ligand density. No significant steric hindrance was observed at 17.6 nm/$mm^2$ immobilization density. The relationship between the HBsAg concentration in the sample solution and the antigen bound to the chip surface was linear up to ca. $40\mu\textrm{g}$/mL, which is much wider than that of the ELISA method. It appeared the antigen-antibody binding was increased as the immobilized ligand density increased, but verification is warranted. This study showed the potential of this biosensor-based method as a rapid, simple, multi-sample, on-line assay. Once properly validated, it can serve as a more powerful method for HBsAg quantification replacing the current ELISA method.
An electrochemical immunoassay based on osmium-hippuric acid (HA) conjugate films onto the electrode is presented for the detection of urinary HA. This is the first report on the use of the oxidative electropolymerization of 5-amino-1,10-phenanthroline (5-$NH_2$-phen) for immobilizing an antigen, osmium-conjugated HA. As a redox mediator, [Os(5-amino-1,10-phenanthroline)$_2$(4-aminomethylpyridine-HA)Cl]$^{+/2+}$ (Os-phen-HA) was successfully synthesized and electropolymerized onto the screen-printed carbon electrodes (SPCEs). The interaction between osmium-HA conjugate films and antibody-HA ($anti$-HA) was performed by cyclic voltammetry (CV) and differential pulse voltammetry (DPV). The electrical signals were linearly proportional to urinary HA in the range of 0.1-5.0 mg/mL, which is sufficient for use as an immunosensor using a cutoff concentration of 2.0 mg/mL in urine samples. The proposed electrochemical immunoassay method can be extended to various applications for detecting a wide range of different small antigens in the health care area.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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