Mechanical hair removal of carrot seed causes seed injuries and suppresses the germination in carrot cultivation. This study was performed to develop molecular markers for breeding high quality cultivars with short-hair seed. To meet this objective, random amplified polymorphic DNA (RAPD)-sequence characterized amplified region (SCAR) markers specifically linked to seed-hair characteristic were identified using CT-SMR 616 OP 389-1 line with short-haired seed and CT-SMR 616 OP 616-33 line with long-haired seed, bred by self-pollination for 6 years from 2008 to 2013, as parents. After seed hair lengths of these lines were analyzed using microscope, next generations were advanced and compared with the molecular markers polymorphism. From RAPD analysis using fixed lines in 2011, twelve RAPD primers showing polymorphic bands specific between the two lines were identified from 80 random primers. To develop RAPD-SACR marker, SCAR primers were designed based on sequence analysis of these specific RAPD bands and more than three combinations of primers were tested. As a result, it was found that the $SCA2_{1.2}$ amplified single polymorphic band from short-haired seed line. To confirm this result, $SCA2_{1.2}$ marker was retested by applying to the 2012 and 2013 progenies. Finally, it was concluded that the developed $SCA2_{1.2}$ marker distinguished short-haired line from long-haired seed line. Therefore, SCAR marker, $SCA2_{1.2}$ is expected to be utilized for breeding of the short-haired seed cultivars.
Seo, Kyoung-In;Jang, Kab-Yeul;Yoo, Young-Bok;Park, Soon-Young;Kim, Kwang-Ho;Kong, Won-Sik
The Korean Journal of Mycology
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v.39
no.1
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pp.31-38
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2011
In this study, 81 commercial strains of Pleurotus species cultivated in South Korea were analyzed with randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) technique. Sequence characterized amplified region (SCAR) markers were developed by designing from one RAPD polymorhic band specific to Suhan strain. The SCAR primer pair 'S-OPA13-1' amplified a 590-bp fragment in the varieties originated from Suhan strain. The Blast search of S-OPA13-1 showed high homology to the POMFBO1 P. ostreatus cDNA clone MFB02-A05 and Laccaria bicolor S238N-H82. The results showed that this SCAR marker can clearly distinguish Suhan strains from Pleurotus spp.
Wook Jin Kim;Sumin Noh;Goya Choi;Woojong Jang;Byeong Cheol Moon
The Korea Journal of Herbology
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v.39
no.2
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pp.1-9
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2024
Objectives : Paeng-hwal is described as an insect herbal medicine used for digestive diseases in the Dong-ui-bo-gam. The origin of this herbal medicine is limited to several small crabs, such as Helice tridens. These crab species cohabitat in the same environment and share similar morphological characteristics, making it very difficult to distinguish and collect the individual species for use in dietary supplements or herbal medicines. This study was conducted to develop a genetic identification tool for discriminating among these closely related small crab species. Methods : CO1 DNA barcode regions of 15 samples from 6 species of small crabs were analyzed to obtain the individual sequences. To identify the correct species, comparative analyses were carried out using the database of the NCBI GenBank and the NIBR. SCAR primers were designed to develop simple and rapid assay methods using inter-species specific sequences. Optimal SCAR assay conditions were established through gradient PCR, and the limit of detection (LOD) was determined. Results : Six species of small crabs (Helicana tridens, Macrophthalmus abbreviatus, Helicana tientsinensis, Helicana wuana, Chiromantes dehaani, and Hemigrapsus penicillatus), which are distributed as Paeng-hwal, were identified through CO1 sequences analysis. We also developed SCAR markers to distinguish between six small crabs at the species level. Furthermore, we established the optimal PCR assay methods and the LOD of each individual species. Conclusions : The rapid and simple SCAR-PCR assay methods were developed to identify the species and control the quality of herbal medicines for Paeng-hwal based on the genetic analyses of CO1 DNA barcodes.
Ginkgo (Ginkgo biloba L.) is one of the most appropriate roadside trees because of a good transplantation nature and ability to grow well in urban environment. Ginkgo is a dioecious species. Sex discrimination of ginkgo is possible through comparing morphological characters of reproductive organs. However, it needs more than about twenty years for reproductive organs to appear after sexual maturity. Until now, ginkgo trees for roadside plantation have been planted without discriminating the sex because ginkgo trees have been usually planted before sexual maturity. Ginkgo nuts from the female ginkgo trees planted along the roadside emit a foul odor, and make much pollution on the streets. Thus in this study a novel SCAR marker (SCAR-GBM) for the early sex discrimination was developed. Primers were developed on the basis of the sequence of male-specific RAPD variants reported previously. False-negative problem of SCAR marker, probably caused by dominant nature, was resolved by using multiplex PCR using primers of both the SCAR-GBM and a universal primer set of atp1 region in mitochondria DNA, which resulted in improved discrimination efficiency. The results showed that DNA bands of 1,039 bp were commonly amplified by the atp1 primer set in male and female trees, and SCAR-GBM markers of 675 bp were specifically amplified only in male trees. Reproducible and specific discrimination of the multiplex PCR was finally confirmed by applying multiple male and female individuals.
Koh, Hyun Seok;Sohn, San Ho;Lee, Young Sun;Koh, Young Jin;Song, Jang Hoon;Jung, Jae Sung
The Plant Pathology Journal
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v.29
no.4
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pp.357-363
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2013
The fungus Venturia nashicola is the causal agent of scab on Asian pears. For the rapid and reliable identification as well as sensitive detection of V. nashicola, a PCR-based technique was developed. DNA fingerprints of three closely related species, V. nashicola, V. pirina, and V. inaequalis, were obtained by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. Two RAPD markers specific to V. nashicola were identified by PCR, after which two pairs of sequence characterized amplified region (SCAR) primers were designed from the nucleotide sequences of the markers. The SCAR primer pairs, designated as D12F/D12R and E11F/E11R, amplified 535-bp and 525-bp DNA fragments, respectively, only from genomic DNA of V. nashicola. The specificity of the primer sets was tested on strains representing three species of Venturia and 20 fungal plant pathogens. The nested PCR primer pair specific to V. nashicola was developed based on the sequence of the species-specific 525-bp DNA fragment amplified by primer set E11F/E11R. The internal primer pair Na11F/Na11R amplified a 235-bp fragment from V. nashicola, but not from any other fungal species tested. The nested PCR assay was sensitive enough to detect the specific fragment in 50 fg of V. nashicola DNA.
The fruiting body pattern is an important agronomic trait of the edible fungus Auricularia auricula-judae, and an important breeding target. There are two types of fruiting body pattern: the cluster type and the chrysanthemum type. We identified the fruiting body pattern of 26 test strains, and then constructed two different near-isogenic pools. Then, we developed sequence characterized amplified region (SCAR) molecular markers associated with the fruiting body pattern based on sequence-related amplified polymorphism (SRAP) markers. Ten different bands (189-522 bp) were amplified using 153 pairs of SRAP primers. The SCAR marker "SCL-18" consisted of a single 522-bp band amplified from the cluster-type strains, but not the chrysanthemum strains. This SCAR marker was closely associated with the cluster-type fruiting body trait of A. auricula-judae. These results lay the foundation for further research to locate and clone genes controlling the fruiting body pattern of A. auricula-judae.
Amplified fragment length polymorphism (AFLP) is a molecular marker technique based on DNA and is extremely useful in detection of high polymorphism between closely related genotypes like Korean wheat cultivars. Six sequence characterized amplified regions (SCARs) have been developed from inter simple sequence repeat (ISSR) analysis which enabled the identification and differentiation of 13 Korean wheat cultivars from the other cultivars. We used six combinations of primer sets in our AFLP analysis for developing additional cultivar-specific markers in Korean wheat. Fifty-eight of the AFLP bands were isolated from EA-ACG/MA-CAC, EA-AGC/MA-CTG and EA-AGG/MA-CTA primer combinations. Of which 40 bands were selected to design SCAR primer pairs for Korean wheat cultivar identification. Three of 58 amplified primer pairs, KWSM006, KWSM007 and JkSP, enabled wheat cultivar identification. Consequently, 23 of 32 Korean wheat cultivars were classified by eight SCAR marker sets.
Watermelon production is often limited by powdery mildew in areas with a large daily temperature range. Development of resistant watermelon cultivars can protect against powdery mildew; however, little is known about the characteristics of its causal agents. Here, we identified the genus and race of a causal pathogen of powdery mildew in Ansung province of South Korea, and developed molecular markers for the generation of resistant watermelon cultivars. The causal pathogen was determined to be Podosphaera xanthii based on multiple sequence alignments of internal transcribed spacers (ITS) of rDNA. The physiological race was identified as 1W, and the Ansung isolate was named P. xanthii 1W-AN. Following inoculation with the identified P. xanthii 1W-AN, we found inheritance of the resistant gene fitting a single dominant Mendelian model in a segregated population ('SBA' ${\times}$ PI 254744). To develop molecular markers linked to fungus-resistant loci, random amplified polymorphic DNA (RAPD) was accomplished between DNA pooled from eight near-isogenic lines (NILs; $BC_4F_6$), originated from PI 254744 and susceptible 'SBB' watermelon. After sequencing bands from RAPD were identified in all eight NILs and PI254744, 42 sequence-characterized amplifiedregion (SCAR) markers were developed. Overall, 107 $F_2$ plants derived from $BC_4F_6$ NIL-1 ${\times}$ 'SBB' were tested, and one SCAR marker was selected. Sequence comparison between the SCAR marker and the reference watermelon genome identified three Nco I restriction enzyme sites harboring a single nucleotide polymorphism, and codominant cleavage-amplified polymorphic site markers were subsequently developed. A CAPS marker was converted to a high-resolution melt (HRM) marker, which can discriminate C/T SNP (254PMR-HRM3). The 254PMR-HRM3 marker was evaluated in 138 $F_{2:3}$ plants of a segregating population ('SBA' ${\times}$ PI254744) and was presumed to be 4.3 cM from the resistance locus. These results could ensure P. xanthii 1W-AN resistance in watermelon germplasm and aid watermelon cultivar development in marker-assist breeding programs.
Peaches (Prunus persica) are less popular than the fresh fruits, because their flesh gets soft faster. So many breeders focused on their aim to firmness. Other breeders focused on juiciness, flavor and aroma. Breeding requires much labor, time and money. To reduce these requirements, many scientists develop many SSR, CAPS and SCAR makers. New peach varieties bred in our National Institute of Horticultural & Herbal Science (NIHHS) such as, Cheonhong, Suhong and Harhong are yellow flesh cultivars and Yumyeong, Baekmijosaeng, Baekhyang, Jinmi, Soomee, Mihong, Misshong and Yumee are white flesh cultivars. These peach cultivars are planted in orchard of Korea. To assert breeding cultivar patents and prevent patent disputes, we detected cultivar-specific DNA fragment using 235 sets of Operon RAPD primers, analyzed 134 DNA sequences and constructed SCAR primers. To confirm the cultivar-specific SCAR markers, we applied candidate SCAR primers to 30 peach cultivars widely cultivated in Korea. These selected lines are included father and mother lines that were used to develop new varieties in NIHHS. Using fourteen SCAR primer sets, we characterized thirty cultivars selected. The SCAR marker is expected to serve as molecular evidence distinguishing different peach varieties.
Kim, Hyun Jung;Han, Jung-Heon;Yoo, Jae Hyoung;Cho, Hwa Jin;Kim, Byung-Dong
Molecules and Cells
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v.25
no.2
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pp.205-210
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2008
To develop molecular markers linked to the $L^4$ locus conferring resistance to tobamovirus pathotypes in pepper plants, we performed AFLP with 512 primer combinations for susceptible (S pool) and resistant (R pool) DNA bulks against pathotype 1.2 of pepper mild mottle virus. Each bulk was made by pooling the DNA of five homozygous individuals from a T10 population, which was a near-isogenic $BC_4F_2$ generation for the $L^4$ locus. A total of 19 primer pairs produced scorable bands in the R pool. Further screening with these primer pairs was done on DNA bulks from T102, a $BC_{10}F_2$ derived from T10 by back crossing. Three AFLP markers were finally selected and designated L4-a, L4-b and L4-c. L4-a and L4-c each underwent one recombination event, whereas no recombination for L4-b was seen in 20 individuals of each DNA bulk. Linkage analysis of these markers in 112 $F_2$ T102 individuals showed that they were each within 2.5 cM of the $L^4$ locus. L4-b was successfully converted into a simple 340-bp SCAR marker, designated L4SC340, which mapped 1.8 cM from the $L^4$ locus in T102 and 0.9 cM in another $BC_{10}F_2$ population, T101. We believe that this newly characterized marker will improve selection of tobamovirus resistance in pepper plants by reducing breeding cost and time.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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