Anaerobic rumen microorganisms mainly bacteria, protozoa and fungi degrade ligno-cellulosic feeds consumed by the ruminants. The ruminants in developing countries are predominantly maintained on low grade roughage and grazing on degraded range land resulting in their poor nutrient utilization and productivity. Hence, manipulation of rumen fermentation was tried during last two decades to optimize ruminal fermentation for improving nutrient utilization and productivity of the animals. Modification of rumen microbial composition and their activity was attempted by using chemical additives those selectively effect rumen microbes, introduction of naturally occurring or genetically modified foreign microbes into the rumen and genetically manipulation of existing microbes in the rumen ecosystem. Accordingly, rumen protozoa were eliminated by defaunation for reducing ruminal methane production and increasing protein outflow in the intestine, resulting in improve growth and feed conversion efficiency of the animals. Further, Interspecies trans-inoculation of rumen microbes was also successfully used for annulment of dietary toxic factor. Additionally, probiotics of bacterial and yeast origin have been used in animal feeding to stabilize rumen fermentation, reduced incidence of diarrhoea and thus improving growth and feed conversion efficiency of young stalk. It is envisaged that genetic manipulation of rumen microorganisms has enormous research potential in developing countries. In view of feed resource availability more emphasis has to be given for manipulating rumen fermentation to increase cellulolytic activity for efficient utilization of low grade roughage.
An in vitro study was carried out to investigate the differences in rumen microbes and fiber degradation capacity between sheep and goats. Three local male sheep and three Inner Mongolia male cashmere goats (aged 1.5 to 2 years; weight 25.0 to 32.0 kg) were each fitted with a permanent rumen cannula used to provide rumen fluid. Cycloheximide was used to eliminate rumen anaerobic fungi. The results showed that the quantities of fungal zoospores in the culture fluid of the control group were significantly greater in the sheep than in the goats; however, bacteria and protozoa counts were significantly higher in goats than in sheep. The digestibility of straw dry matter did not differ significantly between the two species before elimination of fungi, but tended to be higher for sheep (55.4%) than for goats (53.3%). The results also indicated that bacteria counts increased significantly after elimination of anaerobic fungi; however, the digestibility of straw dry matter significantly decreased by 12.1% and 8.6% for sheep and goats respectively. This indicated that the anaerobic fungi of the rumen played an important role in degradation of fiber.
Roderick I. Mackie;Hyewon Kim;Na Kyung Kim;Isaac Cann
Animal Bioscience
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v.37
no.2_spc
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pp.323-336
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2024
Molecular hydrogen (H2) and formate (HCOO-) are metabolic end products of many primary fermenters in the rumen ecosystem. Both play a vital role in fermentation where they are electron sinks for individual microbes in an anaerobic environment that lacks external electron acceptors. If H2 and/or formate accumulate within the rumen, the ability of primary fermenters to regenerate electron carriers may be inhibited and microbial metabolism and growth disrupted. Consequently, H2- and/or formate-consuming microbes such as methanogens and possibly homoacetogens play a key role in maintaining the metabolic efficiency of primary fermenters. There is increasing interest in identifying approaches to manipulate the rumen ecosystem for the benefit of the host and the environment. As H2 and formate are important mediators of interspecies interactions, an understanding of their production and utilization could be a significant starting point for the development of successful interventions aimed at redirecting electron flow and reducing methane emissions. We conclude by discussing in brief ruminant methane mitigation approaches as a model to help understand the fate of H2 and formate in the rumen ecosystem.
Lee, S.S.;Shin, K.J.;Kim, W.Y.;Ha, J.K.;Han, In K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.12
no.6
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pp.988-1001
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1999
The rumen ecosystem is increasingly being recognized as a promising source of superior polysaccharide-degrading enzymes. They contain a wide array of novel enzymes at the levels of specific activities of 1,184, 1,069, 119, 390, 327 and $946{\mu}mol$ Reducing sugar release/min/mg protein for endoglucanase, xylanase, polygalactouronase, amylase, glucanase and arabinase, respectively. These enzymes are mainly located in the surface of rumen microbes. However, glycoside-degrading enzymes (e.g. glucosidase, fucosidase, xylosidase and arabinofuranosidase, etc.) are mainly located in the rumen fluid, when detected enzyme activities according to the ruminal compartments (e.g. enzymes in whole rumen contents, feed-associated enzymes, microbial cell-associated enzymes, and enzymes in the rumen fluid). Ruminal fungi are the primary contributors to high production of novel enzymes; the bacteria and protozoa also have important functions, but less central roles. The enzyme activities of bacteria, protozoa and fungi were detected 32.26, 19.21 and 47.60 mol glucose release/min/mL mediem for cellulose; 42.56, 14.96 and 64.93 mmol xylose release/min/mL medium after 48h incubation, respectively. The polysachharide-degrading enzyme activity of ruminal anaerobic fungi (e.g. Neocallimastix patriciarum and Piromyces communis, etc.) was much higher approximately 3~6 times than that of aerobic fungi (e.g. Tricoderma reesei, T. viridae and Aspergillus oryzae, etc.) used widely in industrial process. Therefore, the rumen ecosystem could be a growing source of novel enzymes having a tremendous potential for industrial applications.
Methane emitted from ruminant livestock is regarded as a loss of feed energy and also a contributor to global warming. Methane is synthesized in the rumen as one of the hydrogen sink products that are unavoidable for efficient succession of anaerobic microbial fermentation. Various attempts have been made to reduce methane emission, mainly through rumen microbial manipulation, by the use of agents including chemicals, antibiotics and natural products such as oils, fatty acids and plant extracts. A newer approach is the development of vaccines against methanogenic bacteria. While ionophore antibiotics have been widely used due to their efficacy and affordable prices, the use of alternative natural materials is becoming more attractive due to health concerns regarding antibiotics. An important feature of a natural material that constitutes a possible alternative methane inhibitor is that the material does not reduce feed intake or digestibility but does enhance propionate that is the major hydrogen sink alternative to methane. Some implications of these approaches, as well as an introduction to antibiotic-alternative natural materials and novel approaches, are provided.
In order to know the effects of Garlic, Scallion, Flavonoid, Urushiol, Anthocyanidin and Bio-MOS?? on pathogenic microbes and rumen anaerobic microbes, the growth rate of pathogens (including Escherichia coli O157, Salmonella paratyphi, Listeria monocytogenes and Staphylococcus aureus) and in vitro rumen microbial growth, gas production, ammonia concentration, carboxymethylcellulase(CMCase) activity, and microbial populations were investigated.The growth of pathogens was inhibited by supplementation of 0.1% Flavonoid, Scallion or Bio-MOS?? as biological active materials. And Scallion and Flavonoid had powerful antimicrobial properties on the pathogens applied in paper disc method.Although few effects by biological active materials disappeared in rumen fermentation in vitro, CMCase activity removed with supplementation of 1% of Flavonoid which had antimicrobial property in paper disc method. Scallion, having powerful antimicrobial property on pathogens and no inhibiting on rumen fermentation, might be a source in development of natural antimicrobial agent for ruminants.
In order to know the effects of scoria, germanium, charcoal, ginger, stevia, and CLA(Conjugated Linoleic Acid) as biologically active materials on pathogenic microbes and rumen anaerobic microbes, the growth rate of pathogens (including Escherichia coli O157, Salmonella paratyphi, Listeria monocytogenes and Staphylococcus aureus) and in vitro lumen microbial growth, gas production, ammonia concentration, carboxymethyl-cellulase (CMCase) activity, and microbial populations were investigated. The growth of pathogenic microbes was inhibited by the supplement of 0.10% ginger. Ginger had powerful antimicrobial properties on all the pathogens used in this experiments. Additionally in the antibacterial assay by paper disc method, we could observe the clear zone of similar area with the positive control(antibiotics) for E. coli as applied with the 10% stevia or the 10% CLA only. The supplements of ginger, stevia and CLA in vitro rumen fermentation inhibited populations of rumen bacteria and protozoa. Particularly supplement of ginger resulted in remarkable reduction of the protozoa population, which means it might serve as a source inhibiting material of methane creation in the rumen.
A series of experiments was carried out to determine the possibility for the non-ionic surfactant (NIS) as a feed additive for ruminant animals. The effect of the NIS on (1) the enzyme distribution in the rumen fluids of Hereford bulls, (2) the growth of pure culture of rumen bacteria and (3) rumen anaerobic fungi, (4) the ruminal fermentation characteristics of Korean native cattle (Hanwoo), and (5) the performances of Holstein dairy cows were investigated. When NIS was added to rumen fluid at the level of 0.05 and 0.1% (v/v), the total and specific activities of cell-free enzymes were significantly (p<0.01) increased, but those of cell-bound enzymes were slightly decreased, but not statistically significant. The growth rates of ruminal noncellulolytic species (Ruminobacter amylophilus, Megasphaera elsdenii, Prevotella ruminicola and Selenomonas ruminantium) were significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at both concentrations tested. However, the growth rate of ruminal cellulolytic bacteria (Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus albus, Ruminococcus flavefaciens and Butyrivibrio fibrisolvens) were slightly increased or not affected by the NIS. In general, NIS appears to effect Gram-negative bacteria more than Gram-positive bacteria; and non-cellulolytic bacteria more than cellulolytic bacteria. The growth rates of ruminal monocentric fungi (Neocallimastix patriciarum and Piromyces communis) and polycentric fungi (Orpinomyces joyonii and Anaeromyces mucronatus) were also significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at all concentrations tested. When NIS was administrated to the rumen of Hanwoo, Total VFA and ammonia-N concentrations, the microbial cell growth rate, CMCase and xylanase activities in the rumen increased with statistical difference (p<0.01), but NIS administration did not affect at the time of 0 and 9 h post-feeding. Addition of NIS to TMR resulted in increased TMR intake and increased milk production by Holstein cows and decreased body condition scores. The NEFA and corticoid concentrations in the blood were lowered by the addition of NIS. These results indicated that the addition of NIS may greatly stimulate the release of some kinds of enzymes from microbial cells, and stimulate the growth rates of a range of anaerobic ruminal microorganisms, and also stimulate the rumen fermentation characteristics and animal performances. Our data indicates potential uses of the NIS as a feed additive for ruminant animals.
Kim, Eun T.;Guan, Le Luo;Lee, Shin J.;Lee, Sang M.;Lee, Sang S.;Lee, Il D.;Lee, Su K.;Lee, Sung S.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.28
no.4
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pp.530-537
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2015
The objective of this study was to evaluate the in vitro effects of flavonoid-rich plant extracts (PE) on ruminal fermentation characteristics and methane emission by studying their effectiveness for methanogenesis in the rumen. A fistulated Holstein cow was used as a donor of rumen fluid. The PE (Punica granatum, Betula schmidtii, Ginkgo biloba, Camellia japonica, and Cudrania tricuspidata) known to have high concentrations of flavonoid were added to an in vitro fermentation incubated with rumen fluid. Total gas production and microbial growth with all PE was higher than that of the control at 24 h incubation, while the methane emission was significantly lower (p<0.05) than that of the control. The decrease in methane accumulation relative to the control was 47.6%, 39.6%, 46.7%, 47.9%, and 48.8% for Punica, Betula, Ginkgo, Camellia, and Cudrania treatments, respectively. Ciliate populations were reduced by more than 60% in flavonoid-rich PE treatments. The Fibrobacter succinogenes diversity in all added flavonoid-rich PE was shown to increase, while the Ruminoccocus albus and R. flavefaciens populations in all PE decreased as compared with the control. In particular, the F. succinogenes community with the addition of Birch extract increased to a greater extent than that of others. In conclusion, the results of this study showed that flavonoid-rich PE decreased ruminal methane emission without adversely affecting ruminal fermentation characteristics in vitro in 24 h incubation time, suggesting that the flavonoid-rich PE have potential possibility as bio-active regulator for ruminants.
Rumen microbiome consists of a wide variety of microorganisms, such as bacteria, archaea, protozoa, fungi, and viruses, that are in a symbiotic relationship in a strict anaerobic environment in the rumen. These rumen microbiome, a vital maker, play a significant role in feed fermentation within the rumen and produce different volatile fatty acids (VFAs). VFAs are essential for energy metabolism and protein synthesis of the host animal, even though emission of methane gas after feed fermentation is considered a negative indicator of loss of dietary energy of the host animal. To improve rumen microbial efficiency, a variety of approaches, such as feed formulation, the addition of natural feed additives, dietary feed-microbes, etc., have taken to increase ruminant performance. Recently with the application of high-throughput sequencing or next-generation sequencing technologies, especially for metagenomics and metatranscriptomics of rumen microbiomes, our understanding of rumen microbial diversity and function has significantly increased. The metaproteome and metabolome provide deeper insights into the complicated microbial network of the rumen ecosystem and its response to different ruminant diets to improve efficiency in animal production. This review summarized some recent advances of rumen microbiome techniques, especially "meta-omics," viz. metagenomic, metatranscriptomic, metaproteomic, and metabolomic techniques to increase feed fermentation and utilization in ruminants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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