Enzymatic hydrolysate from non pre-treated biomass of yellow poplar (Liriodendron tulipifera) was prepared and used as resource for bioethanol production. Fresh branch (1 year old) of yellow poplar biomass was found to be a good resource for achieving high saccharification yields and bioethanol production. Chemical composition of yellow poplar varied significantly depending upon age of tree. Cellulose content in fresh branch and log (12 years old) of yellow poplar was 44.7 and 46.7% respectively. Enzymatic hydrolysis of raw biomass was carried out with commercial enzymes. Fresh branch of yellow poplar hydrolyzed more easily than log of yellow poplar tree. After 72 h of enzyme treatment the glucose concentration from Fresh branch of yellow poplar was 1.46 g/L and for the same treatment period log of yellow poplar produced 1.23 g/L of glucose. Saccharomyces cerevisiae KCTC 7296 fermented the enzyme hydrolysate to ethanol, however ethanol production was similar (~1.4 g/L) from both fresh branch and log yellow poplar hydrolysates after 96 h.
The selective removal and recovery of fermentation inhibitors during purification of sugars from biomass hydrolysates can increase the economic efficiency of the entire process to produce bioalcohol from lignocellulosic biomass. This study investigated the effect of furans in phenols-free biomass hydrolysate on acetic acid extraction in an emulsion liquid membrane system. Under specific operating conditions, more than 99% of acetic acid could be extracted within 5 minutes, and the degrees of extraction of furfural and 5-hydroxymethylfurfural were about 10% and 4%, respectively. The extraction rate of acetic acid was also lower at a higher initial concentration of furfural in the feed phase, which was greater for furfural than 5-hydroxymethylfurfural. Thus, if furfural is first removed from the hydrolysate prior to acetic acid extraction, emulsion liquid membrane would be a more economically efficient way of removing acetic acid.
Ahn, Su Jin;Cayetano, Roent Dune;Kim, Tae Hyun;Kim, Jun Seok
Korean Chemical Engineering Research
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v.53
no.1
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pp.1-5
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2015
Lactic acid, the most widely occurring hydroxy-carboxylic acid, has traditionally been used as food, cosmetic, pharmaceutical, and chemical industries. Even though it has tremendous potential for large scale production and use in a wide variety of applications, high cost lactic acid materials are primarily problems. Lactic acid can be obtained on either by fermentation or chemical synthesis. In recent years, the fermentation approach has become more successful because of the increasing market demand for naturally produced lactic acid. Generally, lactic acid was produced from pure starch or from glucose. As an alternative, biomass which is the most abundant renewable resources on earth have been considered for conversion to readily utilizable hydrolysate. In this study, we conducted the fermentation method to produce L(+)-lactic acid production from pretreated hydrolysate was investigated by Lactobacillus rhamnosus ATCC 10863. The hydrolysate was obtained from pretreatment process of biomass using Ammonia percolation process (AP) followed by enzymatic hydrolysis. In order to effectively enhance lactic acid conversion and product yield, controlled medium, temperature, glucose concentration was conducted under pure glucose conditions. The optimum conditions of lactic acid production was investigated and compared with those of hydrolysate.
Batch cultivations of Anaerobiospirillum succiniciproducens have been systematically studied for the economical production of succinic acid from wood hydrolysate with corn steep liquor(CSL) as a nitrogen source. CSL was found to be an alternative complex nitrogen source for A. succiniciproducens when glucose and wood hydrolysate were used as carbon sources. Compared with polypeptone and/or yeast extract, CSL had similar effects on fermentation performance such as succinic acid yield and a ratio of succinic acid to acetic acid in the fermentation of wood hydrolysate as well as glucose. This means that succinic acid can be produced more economically from wood hydrolysate and CSL than relatively expensive carbon and nitrogen sources. Besides its low cost, the alternative medium served as a green technology for succinic acid production because it gives a net-zero effect on global warming.
Seo, Hyeon-Beom;Han, Jae-Gun;Choi, Won-Seok;Lee, Oh-Kyu;Lee, Soo-Min;Choi, Seok-Hwan;Lee, Hyeon-Yong;Jung, Kyung-Hwan
KSBB Journal
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v.23
no.6
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pp.494-498
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2008
We investigated the bioethanol production using wood biomass hydrolysate which obtained from the supercritical water (SCW) treatment. SCW-treated hydrolysate was used C-source of culture medium in shaking flask culture for bioethanol production. When the concentrated SCW-treated hydrolysate (SCW3) was used, yeast cell growth was slower compared with those in other SCW-treated hydrolysate (SCW1, SCW2). In addition, the bioethanol productions were 0.51 to 0.56 (%,w/v) when SCW1, SCW2, and SCW3 were used. Therefore, we removed the toxic phenolic compound in SCW-treated hydrolysate by pretreatments of activated charcoal and calcium hydroxide. Activated charcoal reduced more efficiently the phenolic compounds in SCW3 by 94.6%. Finally, when we pretreated SCW3 by activated charcoal and this was used for bioethanol production, 0.96 (%,w/v) bioethanol was produced and the ethanol yield based on reducing sugar reached 0.5.
A composite microbial system (XDC-2) was used to pretreat and hydrolyze corn stalk to enhance anaerobic digestion. The results of pretreatment indicated that sCOD concentrations of hydrolysate were highest (8,233 mg/l) at the fifth day. XDC-2 efficiently degraded the corn stalk by nearly 45%, decreasing the cellulose content by 22.7% and the hemicellulose content by 74.1%. Total levels of volatile products peaked on the fifth day. The six major compounds present were ethanol (0.29 g/l), acetic acid (0.55 g/l), 1,2-ethanediol (0.49 g/l), propionic acid (0.15 g/l), butyric acid (0.22 g/l), and glycerine (2.48 g/l). The results of anaerobic digestion showed that corn stalks treated by XDC-2 produced 68.3% more total biogas and 87.9% more total methane than untreated controls. The technical digestion time for the treated corn stalks was 35.7% shorter than without treatment. The composite microbial system pretreatment could be a cost-effective and environmentally friendly microbial method for efficient biological conversion of corn stalk into bioenergy.
Biofuel has been considered as promising renewable energy to solve various problems that result from increasing usage of fossil fuels since the early 20th century. In terms of chemical and physical properties as fuel, biobutanol has more merits than bioethanol. It could replace gasoline for transportation and industrial demand is increasing significantly. Production of butanol can be achieved by chemical synthesis or by microbial fermentation. The water hyacinth, an aquatic macrophyte, originated from tropical South America but is currently distributed all over the world. Water hyacinth has excellent water purification capacity and it can be utilized as animal feed, organic fertilizer, and biomass feedstock. However, it can cause problems in the rivers and lakes due to its rapid growth and dense mats formation. In this study, the potential of water hyacinth was evaluated as a lignocellulosic biomass feedstock in biobutanol fermentation by using Clostridium beijerinckii. Water hyacinth was converted to water hyacinth hydrolysate medium through pretreatment and saccharification. It was found that productivity of water hyacinth hydrolysate medium on biobutanol production was comparable to general medium.
We established a strategy for bioethanol production using the hydrolysate of rape stem, in which the inhibitor cocktail was added intentionally. The final goal of this study was to circumvent the detoxification process when the hydrolysate of lignocelluloisic biomass contained the toxic substances in high concentration. When six yeast strains were examined, Sacchromyces cerevisiae ATCC 96581 and Pichia stipitis CBS 7126 were relatively resistant to inhibitor cocktail. Then, using strains 96581 and 7126, we designed a process strategy for bioethanol production, assuming that the concentration of toxic substance in the hydrolysate of rape stem was remarkably high. When strains 96581 and 7126 were inoculated simultaneously, it was observed that strain 7126 produced bioethanol as well as strain 96581, although the concentration of inhibitor cocktail was 18.2% (v/v). Finally, throughout this co-cultivation of strains 96581 and 7126, bioethanol was produced about 6.0 (g/L), and bioethanol yield reached at 0.4 (g-bioethanol/g-reducing sugar) (78.4% of theoretical value).
In this study, we produced bioethanol from the original hydrolysate obtained during oxalic acid pretreatment of lignocellulosic biomass. The bioethanol was separated and concentrated by pervaporation and the residue after pervaporation was evaluated for its antioxidant activity. Xylose ($37.28g/{\ell}$) was the major product in the original hydrolysate. The original hydrolysate contained acetic acid, furfural and total phenolic compounds (TPC) as fermentation inhibitors. Acetic acid was removed by electrodialysis (ED), and $12.21g/{\ell}$ of bioethanol was produced from ED-treated hydrolysate. The TPC of ethyl acetate extracts from the residue obtained (OA-E) during pervaporation was 86.81 mg/100 g (extract). The $IC_{50}$ values of DPPH and ABTS radical scavenging activities, and reducing power of OA-E were $0.87mg/m{\ell}$, $0.85mg/m{\ell}$, and $0.59mg/m{\ell}$, respectively. Sugar degradation products and the phenolic compounds in OA-E were determined by GC-MS.
In this study, we investigated the feasibility of producing bioethanol from the hydrolysate of rape stem. Specifically, the most ideal yeast strain was screened, and the microaeration was performed by surface aeration on a liquid medium surface. Among the yeast strains examined, Pichia stipitis CBS 7126 displayed the best performance in bioethanol production during the surface-aerated fermentor culture. Pichia stipitis CBS 7126 produced maximally 9.56 g/l of bioethanol from the initial total reducing sugars (about 28 g/l). The bioethanol yield was 0.397 (by the DNS method). Furthermore, this controlled surface aeration method holds promise for use in the bioethanol production from the xylose-containing lignocellulosic hydrolysate of biomass.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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