Background: Classical swine fever (CSF) is a severe infectious disease of pigs that causes significant economic losses to the swine industry. Objectives: This study developed a solid-phase blocking enzyme-linked immunosorbent assay (spbELISA) method for the specific detection of antibodies against the CSF virus (CSFV) in porcine serum samples. Methods: A spbELISA method was developed based on the recombinant E2 expressed in Escherichia coli. The specificity of this established spbELISA method was evaluated using reference serum samples positive for antibodies against other common infectious diseases. The stability and sensitivity were evaluated using an accelerated thermostability test. Results: The spbELISA successfully detected the antibody levels in swine vaccinated with the C-strain of CSFV. In addition, the detection ability of spbELISA for CSFV antibodies was compared with that of other commercial ELISA kits and validated using an indirect immunofluorescence assay. The results suggested that the spbELISA provides an alternative, stable, and rapid serological detection method suitable for the large-scale screening of CSFV serum antibodies. Conclusions: The spbELISA has practical applications in assessing the vaccination status of large pig herds.
K. H. Kwak;S. C. Han;T. J. Kim;K. S. Chang;M. H. Jun;H. J. Song
Korean Journal of Poultry Science
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v.28
no.2
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pp.83-89
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2001
Newcastle disease virus, CBP-1 strain isolated from Korean pheasants was passaged for 173 times by 9-day-old specific pathogenic free (SPF) embryonated eggs at $37^{\circ}C$ (parent strain) and subsequently passaged for 15 (cold attenuation (CA) -15) and 30(cold attenuation (CA) -30) times by 10-day-old of commercial broiler chicks embryonated eggs at $29^{\circ}C$, respectively, The Physical and chemical properties (sensitivity to lipid solvents, low pH and thermostability), pathogenicity (mean death time, intracerebral pathogenic index and intravenous patho-genic index), safety, booster or protective effect and characterization of temperature sensitivity were measured in cold attenuated CA-15 or 30 strain and compared to those of parent CBP-1 strain. NDV, CBP-1 CA-30 strain acquired cold attenuation and decreased infectivity at $41^{\circ}C$ compared to those of parent strain grown at $37^{\circ}C$. It lost hemagglutination activity (HA) and cell infectivity at $56^{\circ}C$ for 30, 60, and 120 Min. CA-30 strain treated with ethyl ether also lost its HA and cell infectivity. Both CA-30 and parent strains exhibited a little resistant to HA at pH 3.0 glycine HCI buffer. Intracerebral pathogenic index (ICPI) and intravenous pathogenic index (IVPI) of parent strain were 1.12 and 1.45, but decreased to 0.75 and 0.00 in CA-30 strain, respectively. The safety was evaluated by mortality in chicks inoculated with 10$^{4.0}$ EID$_{50}$ /0.1 ml. The mortalities of parent, CA-30 and commercial Bl strains were 17.5, 12.0 and 0.0%, respectively. The safety of CA-30 strain was higher than that of parent strain. The booster effects of CA-30 strain and parent strain performed in 4-week-old chicks after being vaccinated with primary commercial Bl strain.
The gene encoding $\beta$-agarase (agaB) which hydrolyzes $\beta$-1,4 linkages of agarose from Zobellia galactanivorans was cloned and fused to Saccharomyces cerevisiae mating factor alpha-1 secretion signal ($MF{\alpha}1$), in which the transcription of $MF{\alpha}1$-AgaB was under the control of AOX1 (alcohol oxidase 1, methanol inducible) promoter. The constructed plasmid pPIC-AgaB (9 kb) was integrated into HIS4 gene locus of Pichia pastoris genome. Successful integration was confirmed by performing colony PCR. The transformed cells showed red halos around its colonies in methanol agar plate by adding iodine solution, indicating the active expression of agaB in P.pastoris. By SDS-PAGE and zymographic analysis, the molecular weight of $\beta$-agarase was estimated to be a 53 kDa and about 15% N-linked glycosylation was occurred. The activity of extracellular $\beta$-agarase reached 1.34, 1.42 and 1.53 units/mL by inducing 0.1, 0.5, and 1% methanol, respectively, at baffled flask culture of P.pastoris GS115/pPIC-AgaB for 48 hr. Most of the enzyme activity was found in the extacellular fraction and the secretion efficiency showed 98%. Thermostability of recombinant $\beta$-agarase was also increased by glycosylation.
Agarase can be used in the field of basic science, as well as for production of agar-derived high-functional oligosaccharides and bioenergy production using algae. In 2012, we summarized the classification, origin, production, and applications of agar. In this paper, we briefly review the literature on the recombinant expression of agarases from 2012 to the present. Agarase genes originated from 19 genera, including Agarivorans, Flammeovirga, Pseudoalteromonas, Gayadomonas, Catenovulum, Microbulbifer, Cellulophaga, Saccharophagus, Simiduia, and Vibrio. Of the 47 recombinant agarases, there were only two α-agarases, while the rest were β-agarases. All α-agarases produced agarotetraose, while β-agarases yielded many neoagarooligosaccharides ranging from neoagarobiose to neoagarododecaose. The optimum temperature ranged between 25 and 60℃, and the optimum pH ranged from 3.0 to 8.5. There were 14 agarases with an optimum temperature of 50℃ or higher, where agar is in sol state after melting. Artificial mutations, including manipulation of carbohydrate-binding modules (CBM), increased thermostability and simultaneously raised the optimum temperature and activity. Many hosts and secretion signals or riboswitches have been used for recombinant expression. In addition to gene recombination based on the amino acid sequence after agarase purification, recombinant expression of the putative agarase genes after genome sequencing and metagenome-derived agarases have been studied. This study is expected to be actively used in the application fields of agarase and agarase itself.
This study aimed to enhance rutin contents by controlling germination condition for manufacturing buckwheat sprouts. Two kinds of buckwheat, a common buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench) and a tartary buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertner) were used. By comparing the rutin content of two buckwheats, tartary buckwheat was 487 ppm, about 36 times higher than common buckwheat. Both common buckwheat and tartary buckwheat which germinated and grew under the light had higher rutin content relatively. In case of tartary buckwheat, rutin content of over 10 cm sprout was 4,579 ppm (without the light), and 5,160 ppm (with the light). Furthermore, tartary buckwheat was germinated and grew under different light strengths from 2,000 to 22,000 Lux. The rutin contents of tartary buckwheat sprout that was grown under the 22,000 Lux light was the highest. The rutin content was increased dramatically at 14,000 Lux of light. From 14,000 to 22,000 Lux, there was a little change on rutin content. Therefore, the condition of 14,000 Lux light was determined optimal for manufacturing tartary buckwheat sprouts. Also, rutin contents of extracts treated with 60, 70, 80 and $90^{\circ}C$ during different time had no significant difference. Therefore, rutin of tartary buckwheat sprout extract had thermostability up to $90^{\circ}C$.
A hyperthermophilic bacteria (strain HJ6) was isolated from a hot springs located in the Arima-cho, Hyogo, Japan. The cells were long-rod type ($2-4{\mu}m$), about $0.4{\mu}m$ in diameter. The pH and temperature for optimal growth were 6.5 and $80^{\circ}C$, respectively. Phylogenetic analysis based on the 16S rDNA sequence and biochemical studies indicated that HJ6 belonged to the genus Thermus thermophilus (Tt). The gene encoding the Trehalose synthase (TS) was cloned and sequenced. The open reading frame (ORF) of the TtTS gene was composed of 2,898 nucleotides and encoded a protein (975 amino acids) with a predicted molecular weight of 110.56 kDa. The deduced amino acid sequence of TtTS showed 99% and 83% identities to the Thermus caldophilus TS and Meiothermus ruber TS, respectively. TtTS gene was expressed in Escherichia coli cells, and the recombinant protein was purified to homogeneity. The optimal temperature and pH for Trehalose synthase activity were found to be $80^{\circ}C$ and 7.5, respectively. The half-life of heat inactivation was about 40 min at $90^{\circ}C$. The maximum trehalose conversion rate of maltose into trehalose by the enzyme increased as the substrate concentration increased, and reached 55.7% at the maltose concentration of 500 mM, implying that the enzyme conversion was dependent of the substrate concentration.
For usage of natural antioxidants, sanjook (Sasa boreails var. chiisanensis) leaves were extracted with methanol and investigated about its antioxidative activities and stability. It showed that the antioxidant activity of methanol extracts from the leaves of sanjook depend on their concentration within range of 0.1 to 0.8 mg/ml. The methanol extracts from the leaves of sanjook represented $583{\mu}g/ml$ for $IC_{50}$ of DPPH radical scavenging ability, $800{\mu}g/ml$for $IC_{50}$ of SOD-like activity and $38{\mu}g/ml$for $IC_{50}$ of $H_{2} O_{2}$ scavenging ability, while BHT, as a compared substance, was $271{\mu}g/ml$ for $IC_{50}$ of DPPH radical scavenging ability, $680{\mu}g/ml$ for $IC_{50}$ of SOD-like activity and $30{\mu}g/ml$ for $IC_{50}$ of $H_{2} O_{2}$ scavenging ability, respectively. The anti-au-toxidation effect for methanol extracts from the leaves of sajook was $55\∼60\%$ within range of 0.1 to 0.8 mg/ml. The pH stability on methanol extracts from the leaves of sanjook was most stable at pH 6. The more acid or akali it became, the more unstable it turned. The thermostability on methanol extracts from the leaves of sanjook remained above $80\%$ of their DPPH activity at range of $0^{\circ}C{\;}to{\;}120^{\circ}$.
Tilapia cultured in fresh water were acclimated in sea water with daily increase of $5%_{\circ}$ of salinity and it was completely terminated at the 7th day (0 week). Each three tilapia acclimated were examined weekly based from 0 week to elucidate changes of chloride cells in gill, mineral contents and physical properties in muscle and biochemical characteristics in myofibrils. Chloride cells existed in gills were gradually developed in number and size by acclimation to sea water and became to almost constant state at the third week. Shearing value, compressing strength and content of minerals such as Mg, Na and K in muscle were showed remarkable increase by acclimation to sea water in comparison to those of muscle from tilapia reared in fresh water. Myofibrillar $Mg^{2+}-,\;Ca^{2+}-$ and $K^+(EDTA)-ATPase$ activities of tilapia acclimated in sea water also increased showing significant statistic difference (p<0.01) from those of tilapia reared in fresh water However. thermostability of myofibrils was dropped by acclimation to sea water. The increase of shearing value and compressing strength in the muscle of tilapia by acclimation to sea water would be attributed to the increase of myofibrillar ATPase activities which act to accelerate the decomposition rate of ATP. Therefore, it is suggested that this phenomenon associated with muscle contraction could be brought an improvement of texture of tilapia acclimated in sea water.
Hyun, Jeongwoo;Abigail, Maria;Choo, Jin Woo;Ryu, Jin;Kim, Hyung Kwoun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.10
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pp.1708-1716
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2016
Glucose dehydrogenase (GDH) is an oxidoreductase enzyme and is used as a biocatalyst to regenerate NAD(P)H in reductase-mediated chiral synthesis reactions. In this study, the glucose 1-dehydrogenase B gene (gdhB) was cloned from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki, and wild-type (GDH-BTWT) and His-tagged (GDH-BTN-His, GDH-BTC-His) enzymes were produced in Escherichia coli BL21 (DE3). All enzymes were produced in the soluble forms from E. coli. GDH-BTWT and GDH-BTN-His showed high specific enzymatic activities of 6.6 U/mg and 5.5 U/mg, respectively, whereas GDH-BTC-His showed a very low specific enzymatic activity of 0.020 U/mg. These results suggest that the intact C-terminal carboxyl group is important for GDH-BT activity. GDH-BTWT was stable up to 65℃, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His were stable up to 45℃. Gel permeation chromatography showed that GDH-BTWT is a dimer, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His are monomeric. These results suggest that the intact N- and C-termini are required for GDH-BT to maintain thermostability and to form its dimer structure. The homology model of the GDH-BTWT single subunit was constructed based on the crystal structure of Bacillus megaterium GDH (PDB ID 3AY6), showing that GDH-BTWT has a Rossmann fold structure with its N- and C-termini located on the subunit surface, which suggests that His-tagging affected the native dimer structure. GDH-BTWT and GDH-BTN-His regenerated NADPH in a yeast reductase-mediated chiral synthesis reaction, suggesting that these enzymes can be used as catalysts in fine-chemical and pharmaceutical industries.
Lee Seung-Hun;Kwon Hyuk-Sang;Koo Kyo-Tan;Kang Byung-Hwa;Kim Tae-Yong
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.34
no.1
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pp.28-34
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2006
A native extracellular acid phosphatase, phytase (EC 3.1.3.8), from Bacillus coagulans IDCC 1201 (commercially known as Lactobacillus sporogenes) used as probiotics, was characterized. Though some strains of B. coagulans have been evaluated with regard to several health-promoting effects, it has not been reported to produce phytase. Partially purified phytase front the strain IDCC 1201 had a pH optimum of 4.0 and a temperature optimum of $50^{\circ}C$, respectively. The requirement for divalent cations was studied and cobalt ion remarkably increased the enzyme activity. The removal of metal ions from the enzyme by EDTA decreased activity below 50%. The enzyme activity depleted restored when the assay was performed in the presence of $Co^{2+}$. Also, $Co^{2+}$ is the most active stimulator and has unique activation effect at high temperature. The phytase was specific for sodium phytate and p-nitrophenylphosphate, which is different from other known Bacilli phytases. The putative amino acid sequences of the phytase from B. coagulans IDCC 1201 were very similar to that of the phytase from B. subtilis strain 168. Based on these data, we concluded that the phytase from B. coagulans IDCC 1201 is a $Co^{2+}$-dependent acid phosphatase. Therefore, the strain B. coagulans IDCC 1201 is thought to be a valuable addititive for livestocks as well as a beneficial probiotics for human.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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