원유시료에서 분리한 methicillin 내성 황색포도알균의 분표율과 내성유전자의 분석을 분자수준에서의 실시하였다. 총 698종의 원유시료에서 286개의 포도알균속 세균을 Staphylococcus Medium 110을 이용하여 분리 후 Vitek 2 system을 이용하여 동정한 결과 94개의 황색포도알균을 확인하였다. 94개의 황색포도알균 중 총 7개의 균에서 methicillin 내성 mecA 유전자가 존재함을 확인하였다. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA)로 확인된 7 균주에 대해 수종의 항생제에 대한 감수성 시험, staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) typing, 및 병독소유전자인 Panton-Valentine Leukocidin (pvl)유전자를 분석하였다. 그 결과 7종의 mecA 양성 MRSA 모두 ampicillin과 oxacillin에 내성이었으며 teicoplanin, vancomycin 및 ciprofloxacin에는 모두 감수성임을 확인하였다. 한편 SCCmec typing결과 7균 중 1균주는 SCCmec type II로 확인되었고 6균주는 SCCmec type IV로 확인되었으며 병독소 유전자인 pvl유전자는 검출되지 않았다.
본 연구에서는 환자의 비강으로부터 분리 배양된 총 39건의 MRSA 분리 배양 균주를 이용해 mecA 유전자 검출, SCCmec typing과 mec complex typing을 분석해 보고자 하였다. 임상 환자의 비강으로부터 분리 배양된 MRSA 총 39주 중 SCCmec type-II가 24건, type-II/IVa가 2건, type-II/V가 1건, type-IVa가 1건, not-typeable이 11건으로 분석되었으며, mec complex type A가 29건, not-typeable이 10건이었으며, type B는 없는 것으로 분석 되었다. 결론적으로, 환자의 비강으로부터 분리된 MRSA 분리 배양 균주 중 SCCmec type-II와 mec complex type A 아형이 가장 많이 분포하고 있었으며, 이 결과는 의료기관 획득 MRSA에 관한 다른 연구결과와 유사한 결과를 나타냈다. 이후 환자의 비강으로부터 분리 배양된 not-typeable 아형의 MRSA 균주를 대상으로 국내에서 발견되는 새로운 MRSA 아형 규명에 관한 추가 연구가 필요할 뿐만 아니라, MRSA 분리 배양 균주의 아형을 분석함으로써 그 분자적 특성을 분석한 결과를 바탕으로 병원 감염관리를 위한 기초자료를 제공할 수 것으로 사료된다.
본 연구에서는 2017년 6월부터 7월까지 국내 충남 소재 2차 의료기관의 임상검체에서 분리 된 20개 균주와 ICU환경으로부터 분리 한 4개를 포함해 총 24개의 MRSA 균주에 대한 분자유전학적 특성을 분석하기 위해 SCCmec typing과 mec complex typing을 수행하였다. 임상검체에서 분리된 MRSA 20균주의 SCCmec typing 분석 결과 SCCmec type II가 8건, type IVa가 1건, Not-typeable이 11건으로 나타났다. 의료기관 중환자실 환경에서 분리 된 MRSA 중 한 균주는 mecA 유전자를 가지고 있지 않은 것으로 확인되었으며, 나머지 세 균주는 SCCmec type II, III, IVa가 각각 한 건으로 나타났다. 임상검체와 중환자실 환경검체에서 분리된 MRSA는 SCCmec typing 결과 그 기원이 서로 다른 것으로 나타났으나, 의료기관 환경에서 분리된 1건의 경우 그 기원이 서로 일치하여 의료종사자의 손, 가운 등을 매개체로 하여 환경내의 MRSA가 환자에게 전파되었을 가능성이 있는 것으로 사료된다. 이후 추가적인 연구를 통해 좀 더 많은 수의 병원감염 관련 균주를 대상으로 추적조사를 실시 한다면 임상 현장에 감염관리와 관련한 더욱 유용한 정보를 제공할 수 있을 것으로 사료된다.
Skin and soft tissue infections caused by methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) can occur especially in community populations such as military training camps. We investigated antimicrobial resistance patterns and molecular epidemiological characteristics of MRSA isolated from nasal swabs in healthy army trainees. From January 2018 to March 2018, one MRSA strain was isolated from nasal swab and hand of healthy army trainees. mecA gene detection, SCCmec and mec complex typing were performed to analyze the antimicrobial resistance patterns and molecular epidemiological characteristics of MRSA isolates. As a result, SCCmec and mec complex type of MRSA isolate from military trainees was not-typeable (n=1). In conclusion, not-typeable subtype of MRSA isolate from military trainees need to be confirmed by continuous follow-up study to determine whether there is a different genotype or a new subtype of genotype present in the Republic of Korea.
Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is a bacterial pathogen capable of causing human diseases, such as soft tissue infection, bacteremia, endocarditis, toxic shock syndrome, pneumonia, and sepsis. Although the incidence rate of diseases caused by MRSA has declined in recent years, these diseases still pose a clinical threat due to their consistently high morbidity and mortality rates. However, the role of virulence factors in staphylococcal infections remains incompletely understood. Methicillin resistance, which confers resistance to all β-lactam antibiotics in cellular islets, is mediated by the mecA gene in the staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec). Differences in SCCmec types and differences in their sizes and structures serve epidemiological purposes and are used to differentiate between hospital-associated (HA)-MRSA and community-associated (CA)-MRSA. Some virulence factors of S. aureus are also providing a distinction between HA-MRSA and CA-MRSA. These factors vary depending on the presence of toxins, adhesion, immune evasion, and other virulence determinants. In this review, we summarized an overview of MRSA such as resistance mechanisms, SCCmec types, HA- and CA-MRSA, and virulence factors that enhance pathogenicity or MRSA epidemiology, transmission, and genetic diversity.
본 연구는 치과 병의원 진료실 주변환경과 치과종사자의 휴대전화에서 분리된 coagulase-negative staphylococci (CNS)의 분리율과 항균제 내성양상 및 분자 역학적 특성을 분석하고자 하였다. 2014년 12월부터 2015년 1월까지 부산지역 10개의 치과 병의원에서 총 154개의 샘플을 수집하여 MALDI-TOF분석법을 통해 동정하였다. 항균제 감수성검사는 디스크 확산법을 시행하였고 mupA, mecA 유전자 보유현황 및 SCCmec type은 PCR과 염기 서열분석에 의해 결정하였다. 154개의 샘플 중 10개(6.5%)에서 CNS 균주(Staphylococcus epidermidis 5주, Staphylococcus capitis 2주, Staphylococcus warneri 2주, Staphylococcus haemolyticus 1주) 가 분리되었다. 항균제 감수성검사에서 penicillin 10주, mupirocin 6주, gentamicin 5주, tetracycline 3주 및 cefoxitin과 erythromycin 2주가 내성이었고 clindamycin, ciprofloxacin, teicoplanin, trimethoprim-sulfamethoxazole에 내성인 세균은 없었다. 2개의 CNS균주(S. warneri, S. haemlyticus)에서 mecA 유전자가 검출되었고 1개의 CNS균주(S. epidermidis)에서 mupA가 확인되었다. Methicillin 내성 CNS균주 가운데 1주는 SCCmec I형이었고 1균주는 SCCmec의 유전형이 구분되지 않았다. 본 연구를 통하여 다약제 내성을 보이는 CNS균주가 더 이상 우리나라 치과병의원 환경에서 드물지 않음을 알 수 있었다.
황색포도상구균은 주요한 기회 감염균으로, 최근 여러 가지 항생제에 내성을 지닌 메치실린 내성 황색포도상구균 Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: MRSA)이 늘어나 문제가 되고 있다. 이에 본 연구에서는 인천지역관내 설사환자에서 분리한 장독소 양성인 S. aureus를 대상으로 항생제 감수성시험 및 PCR을 이용한 tsst, eta, etb mecA 유전자 검사를 실시하여 생물학적인 특성을 조사하였고, tsst 양성인 MRSA를 대상으로 Pulse Field Gel Electrophoresis (PFGE)에 의한 유전자형을 분석함으로서 경시적인 분자역학적 특성을 파악하고자 하였다. 그 결과 2,281건의 대변에서 173주의 장독소 양성인 S. aureus를 분리하였으며 A독소와 C독소가 각각 39%, 58%를 차지하는 것으로 나타났다. 항생제 감수성 결과 장독소 양성주는 모두 MRSA였으며, 이중 51%가 tsst 양성인 것으로 나타났고 eta, etb 유전자는 검출되지 않았다. mecA 내성유전자는 MRSA 균주의 97%가 양성으로 나타났다. tsst 양성인 MRSA 88주를 대상으로 PFGE한 결과, 10개의 유형으로 나뉘었으며 그중 A형, H형 및 F형 이 각각 58%, 10%, 9%로 주요한 형으로 나타났다.
Staphylococcus aureus (S. aureus) is known as a bacterium that can cause skin infections, respiratory system infections, and sinusitis; however, it can exist as a normal flora rather than a pathogen. Recently, methicillin-resistant S. aureus (MRSA) infections have emerged in the community as a new variant of community-associated (CA)-MRSA. In the present study, S. aureus and MRSA were isolated and cultured by collecting samples from facilities and environments where students and educational personnel have multiple contacts on university campuses; specifically, the nostrils and hands of college students were tested from July to September of 2019. The molecular properties of the isolated MRSA were analyzed, and the one MRSA strain was isolated from the university campuses. One MRSA that was isolated and cultured on campus was the mec complex group A and staphylococcal cassette chromosome (SCC) mec type II, which is a characteristic of healthcare-associated (HA)-MRSA, and SCCmec type V, which is a characteristic of CA-MRSA. This result was similar to other studies wherein the SCCmec type II was detected in SCCmec typing analysis in CA-MRSA. To confirm whether there is a new variant of CA-MRSA in the Republic of Korea, additional follow-up studies on the analysis of virulence factors of MRSA are needed by additionally separating CA-MRSA from the body parts of university students and educational personnel.
Kim, Yong Hoon;Kim, Han Sol;Kim, Seokhwan;Kim, Migyeong;Kwak, Hyo Sun
한국축산식품학회지
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제40권5호
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pp.758-771
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2020
This study was to investigate the prevalence and characteristics of antimicrobial-resistant Staphylococcus aureus and methicillin-resistant S. aureus (MRSA) from 4,264 retail meat samples including beef, pork, and chicken in Korea between 2013 and 2018. A broth microdilution antimicrobial susceptibility testing was performed for S. aureus. Molecular typing by multilocus sequence typing (MLST), spa typing, and pulsed-field gel electrophoresis (PFGE), was performed on mecA-positive S. aureus strain. S. aureus was isolated at a rate of 18.2% (777/4,264), of which MRSA comprised 0.7% (29 strains). MLST analysis showed that 11 out of the 29 MRSA isolates were predominantly sequence type (ST) 398 (37.9%). In addition, ST72, ST692, ST188, ST9, and ST630 were identified in the MRSA isolates. The spa typing results were classified into 11 types and showed a high correlation with MLST. The antimicrobial resistance assays revealed that MRSA showed 100% resistance to cefoxitin and penicillin. In addition, resistance to tetracycline (62.1%), clindamycin (55.2%), and erythromycin (55.2%) was relatively high; 27 of the 29 MRSA isolates exhibited multidrug resistance. PFGE analysis of the 18 strains excluding the 11 ST398 strains exhibited a maximum of 100% homology and a minimum of 64.0% homology. Among these, three pairs of isolates showed 100% homology in PFGE; these results were consistent with the MLST and spa typing results. Identification of MRSA at the final consumption stage has potential risks, suggesting that continuous monitoring of retail meat products is required.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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