본 연구에서는 외부의 푸마르산을 인식하는 DcuS/R TCS에 의하여 발현이 조절되는 dctA 유전자의 발현 특성을 GFP를 이용하여 관찰하였으며, 1 mM의 푸마르산을 감지하여 GFP를 발현 시킬 수 있음을 확인하였다. 결론적으로, 개량된 E. coli는 간단한 dctA 프로모터와 GFP의 융합을 이용하여 푸마르산을 모니터 할 수 있으며, 이것은 상승된 푸마르산 농도 조건하에서 원활히 작동함을 확인할 수 있었다.
원하는 유전자를 배큘로바이러스의 감염에 의하여 초파리 Drosophila melanogaster S2 세포에 도입하는 배큘로바이러스/S2 세포 발현 시스템은 강력하고 안전한 배큘로바이러스의 장점과 세포가 파괴되지 않는 S2 세포의 장점을 접목한 시스템이다. 본 연구에서는 외래 목적 단백질로 발현 모니터링이 손쉬운 녹색형광단백질(green fluorescent protein)을 발현시키는 재조합 배큘로바이러스를 이용하여 S2 세포에의 감염조건들에 대한 영향 연구를 수행하였다. 재조합 배큘로바이러스의 S2 세포에의 감염조건으로는 multiplicity of infection(MOI), 초기 세포 수, 배큘로바이러스 용액이 세포를 적시는 최소 부피, 배큘로바이러스를 첨가한 후 제거하기까지의 배양시간 그리고 배큘로바이러스 제거 후 S2 세포를 혈청이 존재하는 배지에서 키우는 배양시간을 선정하였다. MOI는 일반적으로 크게 하는 것이 높은 발현 수율을 위하여 좋은 결과를 보였으나 세포배양이 길어지는 경우 세포독성의 문제가 심각해 질 수 있고 실제적인 배양에서는 높은 MOI를 유지하는 것이 불가능하므로 사용하는 100 mm 배양접시에서 배큘로바이러스와 S2 세포가 접촉하는 동안의 변수들인 MOI를 적정의 값인 30으로, 배큘로바이러스 배양 시간을 1.5 시간으로 고정함으로써 배큘로바이러스가 숙주 세포인 S2에 대해 미치는 세포독성을 낮출 수 있었다. 또한, 배큘로바이러스 최소 부피는 배양접시에서 사용부피의 2.4%에서 가장 좋은 결과를 보였으며 배큘로바이러스 용액을 10배 농축시킴으로써 이 부피를 맞추기 위해 첨가시키는 새로운 배지의 비율을 높임으로써 결과적으로 배큘로바이러스에 의한 세포독성을 줄일 수 있었다. 이를 통하여 세포 파쇄 및 배양접시 표면에서 탈착되는 것을 막고 높은 생장 상태를 유지해서 감염 효율도 높일 수 있었다. 배큘로바이러스의 감염이 끝난 후의 관여하는 변수들인 감염 후 배양시간은 24시간에서 최대의 녹색형광단백질의 발현을 나타내었다.
Transfer of an electron from one site to another in a molecular or between molecules and/or electrodes is one of the most fundamental and ubiquitous processes in chemistry, biology and physics. In this study fusion proteins composed by green fluorescent protein(GFP) and cytochrome b562 were used in fabricating molecular array as an electron sensitizer and electron acceptor, Protein formation onto the substrate was performed by the self-assembly technique. The fusion protein film were analyzed using scanning probe microscope(SPM), Surface Plasmon Resornance(SPR) and hybrid STM/I-V. The results suggest that the proposed molecular photodiode can be used as a basic unit of the memory device.
In this paper, we present details on fabrication of single-cell electroporation microdevice, practical experiments of single-cell electroporation with our fabricated microdevice. Also, the continuous electroporation for the continuous flow of cells is used for high-throughput electroporation. The delivery efficiency and cell viability tests are provided and the successful GFP transfection into cells is also evaluated with a fluorescent microscope after electroporation. This device enables to reduce the size of samples and thus the use of small amount of reagents. Also, it makes it possible to permit to avoid cell discrimination (transfected cells versus non-transfected cells) encountered when traditional bulk electroporation is held.
Sohn, Seong-Han;Huh, Sun-Mi;Kim, Kook-Hyung;Park, Jin-Woo;Lomonossoff, George
The Plant Pathology Journal
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제27권4호
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pp.310-314
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2011
Nonstructural protein 3 (NS3) encoded by RNA3 of Rice stripe virus (RSV), known to be a suppressor of gene silencing, was cloned and sequenced. The cloned NS3 gene is composed of 636 nucleotides encoding 211 deduced amino acids, and showed a high degree of similarity with the equivalent genes isolated from Korea, Japan and China. The NS3 gene promoted the enhancement of transient gene expression and suppressed transgene co-silencing. In the transient GFP expression via agroinfiltration, GFP expression was dramatically enhanced in terms of both protein yield and expression period in the presence of NS3. The highest accumulation of GFP protein reached to 6.8% of total soluble proteins, which corresponded to a two-fold increase compared to that obtained in the absence of NS3. In addition, NS3 significantly suppressed the initiation of GFP co-silencing induced by the additive GFP infiltration in GFP-transgenic Nicotiana benthamiana. The NS3 gene was also found to be a stronger suppressor than Cucumber mosaic virus 2b. These observations are believed to be derived from the strong suppressive effect of NS3 on gene silencing, and indicate that NS3 could be used as an effective enhancer for the rapid production of foreign proteins in plants.
Transcriptome analysis revealed that the sinR gene encoding a transition-state regulator of Bacillus pumilus, genetically close to B. subtilis, was expressed at high levels during growth. The sinR gene is the second gene of the sinIR operon consisting of three promoters and two structural genes in B. subtilis. This study used the sinIR promoter of B. subtilis DB104 to construct a recombinant protein expression system. First, the expression ability depending on the number of sinIR promoter was investigated using enhanced green fluorescent protein (eGFP). The expression level of eGFP was slightly higher when using two promoters (Psin2) than using original promoters. The Psin2 promoter was further engineered by modifying the repressor binding site and -35 and -10 regions. Shine-Dalgarno (SD) sequence of the sinI gene was modified to the consensus sequence. Finally, combining the engineered Psin2 promoter with the modified SD sequence increased the expression level of eGFP by about 13.4-fold over the original promoter. Our results suggest that the optimized sinIR promoter could be used as a novel tool for recombinant protein expression in B. subtilis.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제1권2호
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pp.111-114
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2000
The female pupae of the silkworms Bombyx mori, were injected with recombinant Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) expressing green fluorescent protein (GFP) by percutaneous inoculation. When the 4 day-old female pupae were injected with 1x10$^{7}$ or 2${\times}$10$^{7}$ plaque forming units (pfu) of the recombinant AcNPV, oviposited number and egg weight were significantly decreased. Furthermore, the shape of the eggs was obviously divides into normal and abnormal shapes. The percentage of the eggs with an abnormal shape was 7.8% and 57.1% at 1${\times}$10$^{7}$ and 2${\times}$10$^{7}$ pfu inoculation, respectively. PCR analysis of the genomic DNA extracted from the eggs revealed that gfp and AcNPV ecdysteroid UDP-glucosyltransferase genes were amplified from both types of eggs with normal and abnormal shapes. The results demonstrate that AcNPV DNA, and gfp gene cloned into the AcNPV genome, injected in pupal stage were transmitted to eggs and remained stable through at least next generation.
A practical approach was proposed to produce transgenic chimeric chickens using blastodermal cells (BCs). The chicken BCs were mechanically dissociated and transferred into the recipient eggs that had been exposed to 500 rads irradiation of$^{60}Co$ and windowed on the equatorial plane. Chimeric chickens were generated using two models: the crosses (MXL) from Black Minors (ii,EE,b/b) ♂${\times}$Barred Leghorns (ii,ee,B/-) ♀ as donors and White Leghorns (WL, II) as acceptors (Model 1), or the Black Heifengs (BH, ii,EE,bb) as donors and Hua-xing white (HW, II) as recipients (Model 2). The treated eggs were incubated in their original shells in normal conditions until hatching. Green fluorescent protein (GFP) gene was transferred into the BCs derived from MXL and BH via lipofectamine and the pEGFP-C1, and transfection efficiency into the BCs was examined under a fluorescent microscope. Potential transgenic chimeras were selected based on the proposed methods in this study. Using the fresh BCs, the best rate of phenotypic chimeras was 6.7% and 26.0% in model-1 groups, and model-2 groups, respectively. We also described the optimized conditions for transfection. Although 30% of the BCs transfected in vitro emitted green light under an inverted fluorescent microscope, no embryos injected with the transfected BCs expressed foreign GFP gene at 3-4 days.
열충격 단백질(hsp)은 세포의 기능에 중요한 역할을 하는 보존성이 높은 단백질중의 하나이다. 이들 중 70 kDa 열충격 단백질은 외부의 자극과 관계없이 상시적으로 합성되는 HSC70 단백질과 외부의 자극에 반응하여 합성되는 HSP70 단백질이 있다. 본 연구에서는 넙치(Paralichthys olivaceus)의 70 kDa 열충격 단백질에 대한 cDNA를 아미노산 서열로 변환시켜 분석함으로써 이 유전자가 상시적으로 발현하는 열충격 단백질인 HSC70에 대한 유전자임을 밝혔다. Hsp70 유전자의 발현 기작을 조사하기 위하여 단백질 발현을 조절하는 5' 인접부위를 분리하고 이들의 염기서열을 분석함으로써 유전자 조절부위의 중요인자와 중심 부위를 동정하였다. 또한 Hsp70 유전자의 유전자 조절부위를 이용하여 형광단백질 발현벡터를 제작한 후 메다카 수정란에 미세 주입하여 배 발생 과정의 살아있는 메다카에서 발현하는 형광 단백질(GFP)의 발현을 조사하였다.
The present study was conducted to evaluate the efficiency of transgenic rabbit production by DNA microinjection using EGFP (Enhanced Green Fluorescent Protein) gene. In this experiment EGFP coding sequences fused to CMV promoter were microinjected into rabbit one-cell embryos, and then GFP expression and gene integration were evaluated in preimplantation embryos and fetuses recovered on day 15 of pregnancy to determine efficiency of transgenic rabbit production. Effect of DNA concentration was also tested on development in vitro following microinjection and transgene integration in fetuses. Development of embryos in vitro was decreased by DNA microinjection, but the rates of pregnancy and implantation were not significantly affected by microinjection. As development progressed in vitro percentage of GFP expression in rabbit embryos was decreased, resulting GFP expression detected in 37.5% of blastocysts. The efficiencies for production of transgenic fetuses were 4.0% and 7.6%, respectively, when $10ng/{\mu}l$ and $20ng/{\mu}l$ of DNA concentration were microinjected. Transgenic fetuses were confirmed by GFP expression and PCR analysis of fetus genomic DNA. These results indicated that DNA microinjection itself damaged embryo development and DNA concentration affected the efficiency of transgenic rabbit production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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