A phase variation has been reported in an entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila. Compared with a wild-type primary form, a secondary form usually loses several physiological and biochemical characters. This study showed that the phase variation of X. nematophila caused a significant alteration in its immunosuppressive activity and subsequent entomopathogenicity. A secondary form of X. nematophila was detected in laboratory colonies and exhibited significant differences in dye absorption and entomopathogenicity. In addition, the secondary form was different in its production of eicosanoid-biosynthesis inhibitors (EBIs) compared with the primary form of X. nematophila. Production of oxindole and p-hydroxypropionic acid was significantly reduced in the culture broth of the secondary form of X. nematophila. The reduced EBI production resulted in significant suppression in the inhibitory effects on cellular nodule formation and phenoloxidase activity. Culture broth of the primary form of X. nematophila enhanced the pathogenicity of Bacillus thuringiensis ( Bt) significantly more than the culture broth of the secondary form. Furthermore, this study developed a highly efficient "Dual Bt-Plus: to control both lepidopteran insect pests Plutella xylostella and Spodoptera exigua, by mixing two effective Bt strains along with the addition of potent bacterial metabolites or 100-fold concentrated X. nematophila culture broth.
A bacterial colony was isolated from the gut of the bean bug, Riptortus clavatus. From morphological and biochemical tests, the bacterial isolate showed the highest similarity to Staphylococcus succinus. DNA sequence of 16S rRNA gene of the bacterium supported the identification. Oral administration of penicillin G to adults of R. clavatus gave a dose-dependent mortality of adults of R. clavatus to adults along with significant decrease of the bacterial population in the gut. Similarly, three metabolites (benzylideneacetone, proline-tyrosine, and acetylated phenylalanine-glycine-valine) derived from an entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila, also inhibited growth of the gut bacterial population and gave significant mortalities to R. clavatus. These results suggest that a gut bacterial population classified as Staphylococcus sp. is required for survival of R. clavatus and that the three bacterial metabolites had toxic effects on the bugs due to their antibacterial properties.
3-(4-Hydroxyphenyl)-propionic acid (HPP) is a bacterial metabolite synthesized and released by an entomopathogenic bacterium Xenorhabdus nematophila K1. In this study, the control efficacy of HPP was tested against Phytophthora blight and anthracnose of red pepper plants. HPP suppressed mycelial growth of Phytophthora blight and anthracnose pathogens. Under natural sunlight condition, HPP maintained the antifungal activity on the diseases for at least twenty five days. The antifungal activity was not decreased even in the condition of soil-water. It was proved that HPP was able to penetrate the roots and travel upward of the red pepper plants. When HPP suspension was applied to soil rhizosphere before transplanting the red pepper seedlings or was regularly sprayed to the foliage of the plants with ten days interval, it resulted in significant reduction of the disease occurrences (Phytophthora blight and anthracnose) without any phytotoxicity. These results suggested that HPP can be developed to a systemic agrochemical against Phytophthora blight and anthracnose of red pepper plants.
Indole compound is a bacterial metabolite synthesized and released by an entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila K1. The antibiotic activity was evaluated against plant pathogens, such as Phytophthora blight and anthracnose of red pepper. Indole significantly suppressed mycelial growth of Phytophthora blight and anthracnose pathogens. Under natural sunlight conditions, indole maintained the antifungal activity for at least sixty days. The activity was not affected under the condition of soil-water. When the indole suspension was applied to surface soil before transplanting of red pepper seedlings and was then regularly sprayed to the foliage of the plants with ten days interval, it resulted in significant reduction of the disease occurrences (Phytophthora blight, anthracnose, soft rot, and black mold) by about 30%. These results suggest that indole can be used to control Phytophthora blight and anthracnose of red pepper.
To enhance Bacillus thuringiensis (Bt) efficacy, four Cry toxins were purified from four different Bt strains and assessed in their combined efficacy. The Cry mixtures significantly expanded their target insect spectra. Bacterial culture broth of Xenorhabdus nematophila (Xn) significantly suppressed insect cellular immune response and increased Cry toxicity. The addition of Xn culture broth to Cry mixture significantly enhanced Bt efficacy in target insect spectrum and insecticidal activity.
Two entomopathogenic bacteria, Xenorhabdus nematophila and Photorhabdus temperata subsp. temperata, are known to be potent against the diamondback moth, Plutella xylostella, when the bacteria are injected into the hemocoel. This study investigated any pathogenic effect of their culture broth on P. xylostella by oral administration. Only culture broth of both bacterial species did not give enough pathogenic effects by the oral administration. However, when the culture broth was orally treated together with Bacillus thuringiensis (Bt), both cell-free culture broth significantly enhanced Bt pathogenicity against the 3rd instar larvae of P. xylostella. The culture broth was then fractionated into hexane, ethyl acetate, and aqueous extracts. Most synergistic effect on Bt pathogenicity was found in ethyl acetate extracts of both bacterial species. Thin layer chromatography of these extracts clearly showed that ethyl acetate extracts of both bacterial culture broths possessed metabolites that were different to those of hexane and aqueous extracts. These results suggest that the both entomopathogenic bacteria produce and secrete different factors to give significant synergistic effect on Bt pathogenicity.
Bacillus thuringiensis (Bt) is a bacterial biopesticide against insect pests, mainly lepidopterans. Spodoptera exigua and Plutella xylostella exhibit significant decreases in Bt susceptibility in late larval instars. To enhance Bt pathogenicity, we used a mixture treatment of Bt and other bacterial metabolites which possessed significant immunosuppressive activities. Mixtures of Bt with culture broths of Xenorhabdus nematophila (Xn) or Photorhabdus temperata ssp. temperata (Ptt) significantly enhanced the Bt pathogenicity against late larval instars. Different ratios of Bt to bacterial culture broth had significant pathogenicities against last instar P. xylostella and S. exigua. Five compounds identified from the bacterial culture broth also enhanced Bt pathogenicity. After determining the optimal ratios, the mixture was applied to cabbage infested by late instar P. xylostella or S. exigua in greenhouse conditions. A mixture of Bt and Xn culture broth killed 100% of both insect pests when it was sprayed twice, while Bt alone killed less than 80% or 60% of P. xylostella and S. exigua, respectively. Other Bt mixtures, including Ptt culture broth or bacterial metabolites, also significantly increased pathogenicity in the semi-field assays. These results demonstrated that the Bt mixtures collectively names "Bt-Plus" can be developed into potent biopesticides to increase the efficacy of Bt.
Park, Youngjin;Kim, Minwoo;Kim, Kunwoo;Kim, Yonggyun
Korean journal of applied entomology
/
v.54
no.2
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pp.55-62
/
2015
'Bt-Plus' has been developed by mixing spores of Bacillus thuringiensis (Bt) and culture broth of Xenorhabdus nematophila (Xn). Despite its high toxicity, it has some imitation to broaden its efficacy against diverse insect pest spectrum. This study focuses on enhancement of Bt-Plus toxicity against semi-susceptible insect, Spodoptera exitgua, by addition of Xn metabolites. Two main Xn metabolites, oxindole (OI) and benzylideneacetone (BZA), are known to enhance the Bt insecticidal activities. The addition of OI or BZA significantly increased Bt-Plus pathogenicity. However, when the freeze-dried Xn culture broth was added to Bt-Plus, much less amount was enough to enhance the toxicity compared to the amount of OI or BZA. An HPLC analysis indicated that there were more than 12 unidentifed bacterial metabolites in Xn culture broth. These suggest that there are potent biological response modifiers in Xn metabolites other than OI and BZA.
Entomopathogenic bacteria (Xenorhabdus nematophila, X. sp. and Photorhabdus temperata subsp. temperata) isolated from entomopathogenic nematodes express potent insecticidal activity in insect hemocoel. They are also known to suppress insect immune mediation by inhibiting phospholipase $A_2$, leading to host immunosuppression. This study analyzed effects of their cultured broths on inhibiting insect immunosuppression. For this, we removed all bacterial cells using $0.2\;{\mu}m$ pore sized membrane from the bacteria-cultured broth. All three sterilized cultured media, in dose-dependent manners, significantly inhibited hemocyte-spreading behavior of 5th instar larvae of Spodoptera exigua. However, they showed differential inhibitory activities among different bacterial species, in which X. nematophila showed the most potent inhibitory activity. This immunosuppressive effect was applied to increase the pathogenicity of Bacillus thuringiensis (Bt). All three bacterial cultured broths including bacterial cells significantly potentiated Bt pathogenicity against young S. exigua larvae when each of them was orally administered in a mixture of low dose of Bt. Finally, we tested the effect of oral administration of the cultured media containing the immunosuppressive compound(s) secreted by the bacteria. The membrane-sterilized cultured broths were mixed with the low dose of Bt and then orally administered to the young S. exigua. Only the cultured medium of X. nematophila showed increase of Bt pathogenicity. These results indicated that the; cultured media of the three bacteria possessed immunosuppressive factor(s), which may act to potentiate Bt toxicity to young S. exigua larvae.
Two groups of entomopathogenic bacteria, Xenorhabdus and Photorhabdus, are known to suppress insect immune responses by inhibiting eicosanoid biosynthesis. This study used these bacterial culture broths to develop novel biochemical insecticides against the diamondback moth, Plutella xylostella. Though the bacterial culture broths alone showed little insecticidal activity, they significantly enhanced pathogenicity of Bacillus thuringiensis against the fourth instar larvae of P. xylostella. Sterilization of the bacterial culture broth by autoclaving or $0.2\;{\mu}m$ membrane filtering did not influence the synergistic effect on the pathogenicity of B. thuringiensis. Three metablites identified in the culture broth of X. nematophila also showed similar synergistic effects. In field test, both entomopathogenic bacterial culture broth also enhanced the control efficacy of B. thuringiensis against P. xylostella.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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