Adaptive brain function and synaptic plasticity rely on dynamic regulation of local proteome. One way for the neuron to introduce new proteins to the axon terminal is to transport those from the cell body, which had long been thought as the only source of axonal proteins. Another way, which is the topic of this review, is synthesizing proteins on site by local mRNA translation. Recent evidence indicates that the axon stores a reservoir of translationally silent mRNAs and regulates their expression solely by translational control. Different stimuli to axons, such as guidance cues, growth factors, and nerve injury, promote translation of selective mRNAs, a process required for the axon's ability to respond to these cues. One of the critical questions in the field of axonal protein synthesis is how mRNA-specific local translation is regulated by extracellular cues. Here, we review current experimental techniques that can be used to answer this question. Furthermore, we discuss how new technologies can help us understand what biological processes are regulated by axonal protein synthesis in vivo.
Transforming Growth Factor (TGF)-$\beta$ family, including TGF-$\beta$, bone morphorgenic protein (BMP), and activn, plays an important role in essential cellular functions such as proliferation, differentiation, apoptosis, tissue remodeling, angiognesis, immune responses, and cell adhesions. TGF-$\beta$ predominantly transmits the signals through serine/threonine receptor kinases and cytoplasmic proteins called Smads. Since the discovery of TGF-$\beta$ in the early 1980s, the dysregulation of TGF-$\beta$/Smad signaling has been implicated in the pathogenesis of human diseases. Among signal transducers in TGF-$\beta$/Smad signaling, inhibitory Smads (I-Smads), Smad6 and Smad7, act as major negative regulators forming autoinhibitory feedback loops and mediate the cross-talking with other signaling pathways. Expressions of I-Smads are mainly regulated on the transcriptional levels and post-translational protein degradations and their intracellular levels are tightly controlled to maintain the homeostatic balances. However, abnormal levels of I-Smads in the pathological conditions elicit the altered TGF-$\beta$ signaling in cells, eventually causing TGF-$\beta$-related human diseases. Thus, exploring the molecular mechanisms about the regulations of I-Smads may provide the therapeutic clues for human diseases induced by the abnormal TGF-$\beta$ signaling.
Han, Nayoung;Song, Yun-Kyoung;Burckart, Gilbert J.;Ji, Eunhee;Kim, In-Wha;Oh, Jung Mi
Biomolecules & Therapeutics
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v.25
no.5
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pp.482-489
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2017
Individual differences in drug responses are associated with genetic and epigenetic variability of pharmacogene expression. We aimed to identify the relevant miRNAs which regulate pharmacogenes associated with drug responses. The miRNA and mRNA expression profiles derived from data for normal and solid tumor tissues in The Cancer Genome Atlas (TCGA) Research Network. Predicted miRNAs targeted to pharmacogenes were identified using publicly available databases. A total of 95 pharmacogenes were selected from cholangiocarcinoma and colon adenocarcinoma, as well as kidney renal clear cell, liver hepatocellular, and lung squamous cell carcinomas. Through the integration analyses of miRNA and mRNA, 35 miRNAs were found to negatively correlate with mRNA expression levels of 16 pharmacogenes in normal bile duct, liver, colon, and lung tissues (p<0.05). Additionally, 36 miRNAs were related to differential expression of 32 pharmacogene mRNAs in those normal and tumorigenic tissues (p<0.05). These results indicate that changes in expression levels of miRNAs targeted to pharmacogenes in normal and tumor tissues may play a role in determining individual variations in drug response.
Gastric cancer is highly invasive, aggressively malignant, and amongst the most prevalent of all forms of cancer. Despite improved management strategies, early stage diagnosis of gastric cancer and accurate prognostic assessment is still lacking. Several recent reports have indicated that the pathogenesis of gastric cancer involves complex molecular mechanisms and multiple genetic and epigenetic alterations in oncogenes and tumor suppressor genes. Functional inactivation of the tumor suppressor protein PTEN (Phosphatase and Tensin Homolog) has been detected in multiple cases of gastric cancer, and already shown to be closely linked to the development, progression and prognosis of the disease. Inactivation of PTEN can be attributed to gene mutation, loss of heterozygosity, promoter hypermethylation, microRNA- mediated regulation of gene expression, and post-translational phosphorylation. PTEN is also involved in mechanisms regulating tumor resistance to chemotherapy. This review provides a comprehensive analysis of PTEN and its roles in gastric cancer, and emphasizes its potential benefits in early diagnosis and gene therapy-based treatment strategies.
Park, So Young;Jeong, Mi Suk;Han, Chang Woo;Yu, Hak Sun;Jang, Se Bok
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.4
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pp.637-647
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2016
Proliferating cell nuclear antigen (PCNA) is a critical eukaryotic replication accessory factor that supports DNA binding in DNA processing, such as DNA replication, repair, and recombination. PCNA consists of three toroidal-shaped monomers that encircle double-stranded DNA. The diverse functions of PCNA may be regulated by its interactions with partner proteins. Many of the PCNA partner proteins generally have a conserved PCNA-interacting peptide (PIP) motif, located at the N- or C- terminal region. The PIP motif forms a 310 helix that enters into the hydrophobic groove produced by an interdomain-connecting loop, a central loop, and a C-terminal tail in the PCNA. Post-translational modification of PCNA also plays a critical role in regulation of its function and binding partner proteins. Structural and biochemical studies of PCNA-protein will be useful in designing therapeutic agents, as well as estimating the outcome of anticancer drug development. This review summarizes the characterization of eukaryotic PCNA in relation to the protein structures, functions, and modifications, and interaction with proteins.
Protein phosphorylation is one of most important post-translational modifications (PTMs) and plays an important role in regulation of protein function. Here we develop a method for a global identification of phosphopeptides and phosphorylation sites using nano-LC MS/MS. We compared two separation methods, C4 and strong cation ion exchange (SCX). Before phosphopeptides enrichment with $TiO_2$, total proteins from Rat 1 cells have been separated using C4 column or tryptic peptides of proteins from the cells have been separated using SCX column. Finally, we have detected 52 phosphorylation sites on 41 proteins from SCX method and 375 phosphorylation sites on 252 proteins from C4 method, and determined the function and localization of identified phosphoproteins using DAVID software. In particular, we showed new phosphorylation sites from membrane proteins related to various cell signaling mechanisms. This method may contribute to study global signal networks induced by various signals including ligands and drugs.
The translation elongation factor 1A, eEF1A, catalyzes the binding of aminoacyl-tRNA to the A-site of the ribosome by a GTP-dependent mechanism. By subtractive suppression hybridization technique, we have isolated a soybean low-temperature inducible gene, SLTI100 encoding translation elongation factor 1A. Multiple sequence alignments and phylogenic analysis showed that SLTI100 and other eEF1As originated from diverse organisms are highly conserved. RNA expression of SLTI100 was specifically induced by low temperature, high salt, ABA, or drought stress. Based on the subcellular localization of the corresponding gene product fused to GFP, we were able to confirm that SLTI100-GFP was restricted to the nucleus and cytoplasm. We propose that soybean eEF1A may play an important role in translational regulation during abiotic stress responses in plants.
Hypoxia-inducible factor $1{\alpha}\;(HIF1{\alpha})$ is a transcription factor that plays a key role in the adaptation of cells to low oxygen stress and oxygen homeostasis. The oxygen-dependent degradation (ODD) domain of $HIF1{\alpha}$ is responsible for the negative regulation of $HIF1{\alpha}$ in normoxia. The interactions of the $HIF1{\alpha}$ ODD domain with partner proteins such as von Hippel-Lindau tumor suppressor (pVHL) and p53 are mediated by two sequence motifs, the N- and C-terminal ODD(NODD and CODD). Multiple sequence alignment with $HIF1{\alpha}$ homologs from human, monkey, pig, rat, mouse, chicken, frog, and zebrafish has demonstrated that the NODD and CODD motifs have noticeably high conservation of the primary sequence across different species and isoforms. In this study, we carried out molecular dynamics simulation of the structure of the $HIF1{\alpha}$ CODD motif in complex with the p53 DNA-binding domain (DBD). The structure reveals specific functional roles of highly conserved residues in the CODD sequence motif of $HIF1{\alpha}$ for the recognition of p53.
The CDP/Cux transcription factor was previously shown to be proteolytically processed at the G1/S transition. In view of characterizing and eventually identifying the protease responsible for CDP/Cux processing, we have established an in vitro proteolytic processing assay. CDP/Cux recombinant proteins expressed in mammalian or bacterial cells were efficiently processed in vitro using as a source of protease either whole cell extracts, the nuclear or the cytoplasmic fraction. Processing was found to take place optimally at a lower pH, to be insensitive to variations in salt concentration, and to be inhibited by the protease inhibitors MG132 and E64D. Interestingly, the bacterially-produced substrate was more efficiently processed than the substrate purified from mammalian cells. Moreover, processing in vitro was more efficient when CDP/Cux substrates were purified from populations of cells enriched in the S phase than in the G1 phase of the cell cycle. Altogether, these results suggest that post-translational modifications of CDP/Cux in mammalian cells inhibits processing and contributes to the cell cycle-dependent regulation of processing. The in vitro processing assay described in this study will provide a useful tool for the purification and identification of the protease responsible for the processing of CDP/Cux.
MicroRNAs (miRNAs) are endogenous, non-coding, small RNA molecules consisting of 21-24 nucleotides (nts) that regulate target genes at the posttranscriptional level in plants and animals. In plants, miRNAs negatively regulate target mRNAs containing a highly complementary sequence by either mRNA cleavage or translational repression. MiRNAs are processed from single-stranded precursors containing stem-loop structures by a Dicer-like enzyme and are loaded into silencing complexes, where they act on target mRNAs. Although plant miRNAs were first reported in Arabidopsis 10 years later than animal miRNAs, numerous miRNAs have since been identified from various land plants ranging from mosses to flowering plants, and their roles in diverse aspects of plant developmental processes have been characterized. Furthermore, most of the annotated plant miRNAs are evolutionarily conserved in various plants. In particular, recent functional studies using Arabidopsis mutants have contributed a great deal of information towards establishing a framework for understanding miRNA biogenesis and functional roles. Extensive appraisal of miRNA-directed regulation during a wide array of plant development and plant responses to environmental conditions has confirmed the versatile roles of miRNAs as a key component of plant molecular biology.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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