The present investigation was undertaken to examine the effectiveness of the combination treatment of an Hsp90 inhibitor and a SIRT1 inhibitor on suppressing the growth of chemo-resistant human cancer cells. We showed that inhibition of SIRT1 effectively potentiated the cytotoxicity of 17-allylamino-17-demethoxygeldanamycin (17-AAG) and reversed Hsp90 inhibitor resistance in multidrug-resistant (MDR) human ovarian HeyA8-MDR cells. Amurensin G, a potent natural SIRT1 inhibitor, enhanced Hsp90 inhibitor-mediated abrogation of the Hsp90 chaperone function and accelerated degradation of mutated p53 (mut p53), an Hsp90 client protein, by up-regulation of ubiquitin ligase CHIP. Knock-down of CHIP significantly attenuated amurensin G-induced mut p53 degradation. Down-regulation of mut p53 reduced the expression of heat shock factor1 (HSF1)/heat shock proteins (Hsps), a major cause of Hsp90 inhibitor resistance, which led to sensitization of the MDR cells to the Hsp90 inhibitor by the SIRT1 inhibitor. Amurensin G potentiated cytotoxicity of the Hsp90 inhibitor in HeyA8-MDR cells through suppression of 17-AAG-induced Hsp70 and Hsp27 induction via down-regulation of mut p53/HSF1, and it caused activation of PARP and inhibition of Bcl-2. Our data suggests that SIRT1 inhibitors could be used to sensitize MDR cells to Hsp90 inhibitors, possibly through suppression of the mut p53/HSF1-dependent pathway, and a novel mut p53-directed action of SIRT1 inhibition could effectively prevent mut p53 accumulation in MDR cells.
The molecular mechanism underlying autophagy impairment in the retinal pigment epithelium (RPE) in dry age-related macular degeneration (AMD) is not yet clear. Based on the causative role of poly(ADP-ribose) polymerase 1 (PARP1) in RPE necrosis, this study examined whether PARP1 is involved in the autophagy impairment observed during dry AMD pathogenesis. We found that autophagy was downregulated following H2O2-induced PARP1 activation in ARPE-19 cells and olaparib, PARP1 inhibitor, preserved the autophagy process upon H2O2 exposure in ARPE-19 cells. These findings imply that PARP1 participates in the autophagy impairment upon oxidative stress in ARPE-19 cells. Furthermore, PARP1 inhibited autolysosome formation but did not affect autophagosome formation in H2O2-exposed ARPE-19 cells, demonstrating that PARP1 is responsible for impairment of late-stage autophagy in particular. Because PARP1 consumes NAD+ while exerting its catalytic activity, we investigated whether PARP1 impedes autophagy mediated by sirtuin1 (SIRT1), which uses NAD+ as its cofactor. A NAD+ precursor restored autophagy and protected mitochondria in ARPE-19 cells by preserving SIRT1 activity upon H2O2. Moreover, olaparib failed to restore autophagy in SIRT1-depleted ARPE-19 cells, indicating that PARP1 inhibits autophagy through SIRT1 inhibition. Next, we further examined whether PARP1-induced autophagy impairment occurs in the retinas of dry AMD model mice. Histological analyses revealed that olaparib treatment protected mouse retinas against sodium iodate (SI) insult, but not in retinas cotreated with SI and wortmannin, an autophagy inhibitor. Collectively, our data demonstrate that PARP1-dependent inhibition of SIRT1 activity impedes autophagic survival of RPE cells, leading to retinal degeneration during dry AMD pathogenesis.
Kang, Eun Sil;Kim, Hyo Juong;Han, Sung Gu;Seo, Han Geuk
Food Science of Animal Resources
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v.40
no.1
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pp.106-117
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2020
Cellular senescence is associated with age-related vascular disorders and has been implicated in vascular dysfunctions. Here, we show that duck oil-loaded nanoemulsion (DO-NE) attenuates premature senescence of vascular smooth muscle cells (VSMCs) triggered by angiotensin II (Ang II). Compared with control nanoemulsion (NE), DO-NE significantly inhibited the activity of senescence-associated β-galactosidase, which is a biomarker of cellular senescence, in Ang II-treated VSMCs. SIRT1 protein expression was dose- and time-dependently induced in VSMCs exposed to DO-NE, but not in those exposed to NE, and SIRT1 promoter activity was also elevated. Consistently, DO-NE also dose-dependently rescued Ang II-induced repression of SIRT1 expression, indicating that SIRT1 is linked to the anti-senescence action of DO-NE in VSMCs treated with Ang II. Furthermore, the SIRT1 agonist resveratrol potentiated the effects of DO-NE on VSMCs exposed to Ang II, whereas the SIRT1 inhibitor sirtinol elicited the opposite effect. These findings indicate that DO-NE inhibits senescence by upregulating SIRT1 and thereby impedes vascular aging triggered by Ang II.
Sirtuin proteins have emerged as important modulators of several age-associated diseases. These include cancer and diabetes, as well as cardiovascular and neurodegenerative diseases. Among the sirtuin family members, SIRT2 mRNA is strongly expressed. To investigate the pathophysiological significance of SIRT2 as a primary regulator of angiogenesis, we focused on the biological role of SIRT2 under hypoxic conditions, examining the gene expression pattern of sirtuin family members in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). SIRT2 was expressed primarily in the cytoplasm, but it was dynamically trans-localized in the nuclear by hypoxia stimuli. Interestingly, both SIRT2 and the pro-angiogenic factor, VEGF, were up- regulated by hypoxia. A Matrigel assay demonstrated that the HUVECs formed a tube-like structure under hypoxia. The SIRT2 inhibitor, AK-1, significantly decreased the tube-forming activity of the HUVECs under either normoxia or hypoxia conditions. These findings suggest that SIRT2 might be a key regulator of angiogenesis.
Yong Jung Kang;Young Hoon Kwon;Jung Yoon Jang;Jun Ho Lee;Sanggwon Lee;Yujin Park;Hyung Ryong Moon;Hae Young Chung;Nam Deuk Kim
Biomolecules & Therapeutics
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v.31
no.1
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pp.73-81
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2023
Sirtuins (SIRTs) belong to the nicotinamide adenine dinucleotide (NAD+)-dependent class III histone deacetylase family. They are key regulators of cellular and physiological processes, such as cell survival, senescence, differentiation, DNA damage and stress response, cellular metabolism, and aging. SIRTs also influence carcinogenesis, making them potential targets for anticancer therapeutic strategies. In this study, we investigated the anticancer properties and underlying molecular mechanisms of a novel SIRT1 inhibitor, MHY2251, in human colorectal cancer (CRC) cells. MHY2251 reduced the viability of various human CRC cell lines, especially those with wild-type TP53. MHY2251 inhibited SIRT1 activity and SIRT1/2 protein expression, while promoting p53 acetylation, which is a target of SIRT1 in HCT116 cells. MHY2251 treatment triggered apoptosis in HCT116 cells. It increased the percentage of late apoptotic cells and the sub-G1 fraction (as detected by flow cytometric analysis) and induced DNA fragmentation. In addition, MHY2251 upregulated the expression of FasL and Fas, altered the ratio of Bax/Bcl-2, downregulated the levels of pro-caspase-8, -9, and -3 proteins, and induced subsequent poly(ADP-ribose) polymerase cleavage. The induction of apoptosis by MHY2251 was related to the activation of the caspase cascade, which was significantly attenuated by pre-treatment with Z-VAD-FMK, a pan-caspase inhibitor. Furthermore, MHY2251 stimulated the phosphorylation of c-Jun N-terminal kinase (JNK), and MHY2251-triggered apoptosis was blocked by pre-treatment with SP600125, a JNK inhibitor. This finding indicated the specific involvement of JNK in MHY2251-induced apoptosis. MHY2251 shows considerable potential as a therapeutic agent for targeting human CRC via the inhibition of SIRT1 and activation of JNK/p53 pathway.
The tumor necrosis, factor-related, apoptosis-inducing ligand (TRAIL) is regarded as a potentially useful anticancer agent with excellent selectivity for cancer cells. However, a considerable number of cancer cells are resistant to apoptosis induction by TRAIL. Developing strategies to overcome this resistance are important for the successful use of TRAIL for cancer therapy. Here, we revealed that siRNA-mediated downregulation of SIRT1 or SIRT1 inhibitor Amurensin G upregulated DR5 and c-Myc and downregulated c-$FLIP_{L/S}$ and Mcl-1, which was associated with sensitization of TRAIL-resistant MCF-7 cells to TRAIL. This result was followed by the activation of caspases, PARP cleavage, and downregulation of Bcl-2 in both TRAIL-treated MCF-7 cells transfected with SIRT1 siRNA and cells co-treated with Amurensin G and TRAIL. Our results suggest that the induction of DR5 and downregulation of c-FLIP via suppression of SIRT1 expression may be a useful strategy to increase the susceptibility of TRAIL-resistant cancer cells to TRAIL-induced cell death.
Sirt1, a nicotinamide adenine dinucleotide ($NAD^+$)-dependent histone deacetylase, is known to deacetylate a number of proteins that are involved in various cellular pathways such as the stress response, apoptosis and cell growth. Modulation of the stress response by Sirtuin 1 (Sirt1) is achieved by the deacetylation of key proteins in a cellular pathway, and leads to a delay in the onset of cancer or aging. In particular, Sirt1 is known to play an important role in maintaining genomic stability, which may be strongly associated with a protective effect during tumorigenesis and during the onset of aging. In these studies, Sirt1 was generated in stably expressing cells and during the stimulation of DNA damage to examine whether it promotes survival. Sirt1 expressing cells facilitated the repair of DNA damage induced by either ionizing radiation (IR) or bleomycin (BLM) treatment. Fastened damaged DNA repair in Sirt1 expressing cells corresponded to prompt activation of Chk2 and ${\gamma}$-H2AX foci formation and promoted survival. Inhibition of Sirt1 enzymatic activity by a chemical inhibitor, nicotinamide (NIC), delayed DNA damage repair, indicating that promoted DNA damage repair by Sirt1 functions to induce survival when DNA damage occurs.
Background: Fentanyl is used as an analgesic to treat pain in a variety of patients with cancer and recently it has become considered to also act as an antitumor agent. The study present was designed to investigate the effects of fentanyl on colorectal cancer cell growth and plausible mechanisms. Materials and Methods: The human colorectal carcinoma cell line HCT116 was subcutaneously injected into nude mice. The viability of HCT116 was tested by MTT assay, and apoptosis by flow cytometry and caspase-3 activity. The expression of Sirt1 and NF-${\kappa}B$ were evaluated by Western blotting and the levels of Sirt1 and NF-${\kappa}B$ by fluorescence method. SiRNA was used to silence and Ad-Sirt1 to overexpress Sirt1. Results: Our data showed that fentanyl could inhibit tumor growth, with increased expression of Sirt1 and down-regulation of Ac-p65 in tumors. Compared with control cells without treatment, HCT116 cells that were incubated with fentanyl had a higher apoptotic rate. Moreover, fentanyl could increase expression and activity of Sirt1 and inhibitor expression and activity of NF-${\kappa}B$, which might be mechanisms of fentanyl action. Conclusions: Fentanyl increased colorectal carcinoma cell apoptosis by inhibition of NF-${\kappa}B$ activation in a Sirt1-dependent manner.
Hwang, Jung Seok;Han, Sung Gu;Lee, Chi-Ho;Seo, Han Geuk
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.6
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pp.917-925
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2017
Whey protein, a by-product of milk curdling, exhibits diverse biological activities and is used as a dietary supplement. However, its effects on stress-induced vascular aging have not yet been elucidated. In this study, we found that whey protein significantly inhibited the Ang II-primed premature senescence of vascular smooth muscle cells (VSMCs). In addition, we observed a marked dose- and time-dependent increase in SIRT1 promoter activity and mRNA in VSMCs exposed to whey protein, accompanied by elevated SIRT1 protein expression. Ang II-mediated repression of SIRT1 level was dose-dependently reversed in VSMCs treated with whey protein, suggesting that SIRT1 is involved in preventing senescence in response to this treatment. Furthermore, resveratrol, a well-defined activator of SIRT1, potentiated the effects of whey protein on Ang II-primed premature senescence, whereas sirtinol, an inhibitor of SIRT1, exerted the opposite. Taken together, these results indicated that whey protein-mediated upregulation of SIRT1 exerts an anti-senescence effect, and can thus ameliorate Ang II-induced vascular aging as a dietary supplement.
Woo, Seon Rang;Park, Jeong-Eun;Kim, Yang Hyun;Ju, Yeun-Jin;Shin, Hyun-Jin;Joo, Hyun-Yoo;Park, Eun-Ran;Hong, Sung Hee;Park, Gil Hong;Lee, Kee-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.12
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pp.1785-1790
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2013
The synthetic machinery of ATF4 (activating transcription factor 4) is activated in response to various stress conditions involved in nutrient restriction, endoplasmic reticulum homeostasis, and oxidation. Stress-induced inhibition of proteasome activity triggers the unfolded protein response and endoplasmic reticulum stress, where ATF4 is crucial for consequent biological events. In the current study, we showed that the $NAD^+$-dependent deacetylase, SIRT1, suppresses ATF4 synthesis during proteasome inhibition. SIRT1 depletion via transfection of specific siRNA into HeLa cells resulted in a significant increase in ATF4 protein, which was observed specifically in the presence of the proteasome inhibitor MG132. Consistent with SIRT1 depletion data, transient transfection of cells with SIRT1-overexpressing plasmid induced a decrease in the ATF4 protein level in the presence of MG132. Interestingly, however, ATF4 mRNA was not affected by SIRT1, even in the presence of MG132, indicating that SIRT1-induced suppression of ATF4 synthesis occurs under post-transcriptional control. Accordingly, we propose that SIRT1 serves as a negative regulator of ATF4 protein synthesis at the post-transcriptional level, which is observed during stress conditions, such as proteasome inhibition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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