Obesity is a worldwide epidemic as well as being a major risk factor for diabetes, cardiovascular diseases and several types of cancers. Obesity is mainly due to the overgrowth of adipose tissue arising from an imbalance between energy intake and energy expenditure. Adipose tissue, primarily composed of adipocytes, plays a key role in maintaining whole body energy homeostasis. In view of the treatment of obesity and obesity-related diseases, it is critical to understand the detailed signal transduction mechanisms of adipogenic differentiation. Adipogenic differentiation is tightly regulated by many key signal cascades, including insulin signaling. These signal cascades generally transfer or amplify the signal by using serial tyrosine phosphorylations. Thus, protein tyrosine kinases and protein tyrosine phosphatases are closely related to adipogenic differentiation. Compared to protein tyrosine kinases, protein tyrosine phosphatases have received little attention in adipogenic differentiation. This review aims to highlight the involvement of protein tyrosine phosphatases in adipogenic differentiation and the possibility of protein tyrosine phosphatases as drugs to target obesity.
Calcium entry through $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels plays essential roles for various physiological events including thalamic oscillation, muscle contraction, hormone secretion, and sperm acrosomal reaction. In this study, we examined how protein tyrosine phosphatases or protein tyrosine kinases affect $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels reconstituted in Xenopus oocytes. We found that $Ca_v3.2$ channel activity was reduced by 25% in response to phenylarsine oxide (tyrosine phosphatase inhibitor), whereas it was augmented by 19% in response to Tyr A47 or herbimycin A (tyrosine kinase inhibitors). However, other biophysical properties of $Ca_v3.2$ currents were not significantly changed by the drugs. These results imply that $Ca_v3.2$ channel activity is capable of being increased by activation of tyrosine phosphatases, but is decreased by activation of tyrosine kinases.
Synthetic color additives approved for general food use are sixteen in European Union, seven in U. S. A. and twelve in Japan. Twelve food dyes were examined for their inhibitory potency against human protein tyrosine phosphatases (PTPases). Half of the food colorants inhibited PTPases significantly and three of them were potent inhibitors with low micromolar IC50 values. Also examined were the synthetic dyes structurally similar but not allowed in food. Some of them were potent inhibitors of PTPases. Considering the importance of PTPases in cellular signal transduction, inhibition of PTPases by food colorants might cause harmful effects in human health.
Reddy, Rallabandi Harikrishna;Kim, Hackyoung;Cha, Seungbin;Lee, Bongsoo;Kim, Young Jun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.5
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pp.878-895
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2017
Phosphorylation, a critical mechanism in biological systems, is estimated to be indispensable for about 30% of key biological activities, such as cell cycle progression, migration, and division. It is synergistically balanced by kinases and phosphatases, and any deviation from this balance leads to disease conditions. Pathway or biological activity-based abnormalities in phosphorylation and the type of involved phosphatase influence the outcome, and cause diverse diseases ranging from diabetes, rheumatoid arthritis, and numerous cancers. Protein tyrosine phosphatases (PTPs) are of prime importance in the process of dephosphorylation and catalyze several biological functions. Abnormal PTP activities are reported to result in several human diseases. Consequently, there is an increased demand for potential PTP inhibitory small molecules. Several strategies in structure-based drug designing techniques for potential inhibitory small molecules of PTPs have been explored along with traditional drug designing methods in order to overcome the hurdles in PTP inhibitor discovery. In this review, we discuss druggable PTPs and structure-based virtual screening efforts for successful PTP inhibitor design.
Faithful transmission of genetic information depends on accurate chromosome segregation as cells exit from mitosis, and errors in chromosomal segregation are catastrophic and may lead to aneuploidy which is the hallmark of cancer. In eukaryotes, an elaborate molecular control system ensures proper orchestration of events at mitotic exit. Phosphorylation of specific tyrosyl residues is a major control mechanism for cellular proliferation and the activities of protein tyrosine kinases and phosphatases must be integrated. Although mitotic kinases are well characterized, phosphatases involved in mitosis remain largely elusive. Here we identify a novel variant of mouse protein tyrosine phosphatase containing domain 1 (Ptpcd1), that we named Ptpcd2. Ptpcd1 is a Cdc14 related centrosomal phosphatase. Our newly identified Ptpcd2 shared a significant homology to yeast Cdc14p (34.1%) and other Cdc14 family of phosphatases. By subcellular fractionation Ptpcd2 was found to be enriched in the cytoplasm and nuclear pellets with catalytic phosphatase activity. By means of immunofluorescence, Ptpcd2 was spatiotemporally regulated in a cell cycle dependent manner with cytoplasmic abundance during mitosis, followed by nuclear localization during interphase. Overexpression of Ptpcd2 induced mitotic exit with decreased levels of some mitotic markers. Moreover, Ptpcd2 failed to colocalize with the centrosomal marker ${\gamma}$-tubulin, suggesting it as a non-centrosomal protein. Taken together, Ptpcd2 phosphatase appears a non-centrosomal variant of Ptpcd1 with probable mitotic functions. The identification of this new phosphatase suggests the existence of an interacting phosphatase network that controls mammalian mitosis and provides new drug targets for anticancer modalities.
Together with protein tyrosine kinases (PTKs), protein tyrosine phosphatases (PTPs) serve as hallmarks in cellular signal transduction by controlling the reversible phosphorylation of their substrates. The human genome is estimated to encode more than 100 PTPs, which can be divided into eleven sub-groups according to their structural and functional characteristics. All the crystal structures of catalytic domains of sub-groups have been elucidated, enabling us to understand their precise catalytic mechanism and to compare their structures across all sub-groups. In this review, I describe the structure and mechanism of catalytic domains of PTPs in the structural context.
Protein tyrosine phosphatases (PTPs) play crucial roles in signal transduction and their functional alteration has been detected in many diseases. PTP inhibitors have been developed as therapeutic drugs for diseases that are related to the activity of PTPs. In this study, PTP inhibitor XIX, an inhibitor of CD45 and PTEN, was investigated whether it inhibits other PTPs. Protein tyrosine phosphatase non-receptor type 2 (PTPN2) was selectively inhibited by the inhibitor in a competitive manner. Drug affinity responsive target stability (DARTS) analysis showed that the inhibitor induces conformational changes in PTPN2. Phosphorylation levels of signal transducer and activator of transcription 3 (STAT3) at Tyr-705, a crucial site for STAT3 activation and target site of PTPN2, decreased upon exposure to the inhibitor. Our results suggest that PTP inhibitor XIX might be considered as an effective regulator of PTPN2 for treating diseases related to PTPN2.
Choi, Hye-Ryung;Kim, Won Kon;Kim, Eun Young;Jung, Hyeyun;Kim, Jeong-Hoon;Han, Baek-Soo;You, Kwan-Hee;Lee, Sang Chul;Bae, Kwang-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.7
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pp.1029-1033
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2012
A number of evidence have been accumulated that the regulation of reversible tyrosine phosphorylation, which can be regulated by the combinatorial activity of protein tyrosine kinases (PTKs) and protein tyrosine phosphatases (PTPs), plays crucial roles in various biological processes including differentiation. There are a total of 107 PTP genes in the human genome, collectively referred to as the "PTPome." In this study, we performed PTP profiling analysis of the HIB-1B cell line, a brown preadipocyte cell line, during brown adipogenesis. Through RT-PCR and real-time PCR, several PTPs showing differential expression pattern during brown adipogenesis were identified. In the case of PTP-RE, it was shown to decrease significantly until 4 days after brown adipogenic differentiation, followed by a dramatic increase at 6 days. The overexpression of PTP-RE led to decreased brown adipogenic differentiation via reducing the tyrosine phosphorylation of the insulin receptor, indicating that PTP-RE functions as a negative regulator at the early stage of brown adipogenesis.
Park, Jae-Kweon;Tran, Phuong Ngoc;Kim, Jeong-Dong;Hong, Seong-Joo;Lee, Choul-Gyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.9
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pp.918-921
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2009
In the present study, we examined the inhibitory effects of protein tyrosine phosphatase (PTPase) inhibitors, including sodium orthovanadate (SOV), ammonium molybdate (AM), and iodoacetamide (IA), on cell growth, accumulation of astaxanthin, and PTPase activity in the photosynthetic algae Haematococcus lacustris. PTPase activity was assayed spectrophotometrically and was found to be inhibited 60% to 90% after treatment with the inhibitors. SOY markedly abolished PTPase activity, significantly activating the accumulation of astaxanthin. These data suggest that the accumulation of astaxanthin in H. lacustris results from the concerted actions of several PTPases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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