An innovative, simple, and rapid assay method based on liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) was developed and validated for the simultaneous determination of eight statin drugs in human urine. A simple sample clean-up procedure using the "dilute and shoot" (DAS) approach enabled a fast and reliable analysis. The influence of the dilution factor was investigated to ensure detectability and reduce the matrix effect. Chromatographic separation was performed on a Phenomenex Kinetex C18 column ($50{\times}3.0mm$ i.d., $2.6{\mu}m$) using an elution gradient of mobile phase A composed of 0.1% acetic acid, and mobile phase B composed of acetonitrile, at a flow rate of 0.35 mL/min. Quantitation was performed on a triple quadrupole mass spectrometer operated in multiple reaction monitoring (MRM) mode using electrospray ionization in positive ion mode. The total chromatographic run time was 15 min. The method was validated for selectivity, sensitivity, recovery, linearity, accuracy, precision, and stability. The present method was successfully applied to the analysis of Rosuvastatin in urine samples after oral administration to healthy human subjects.
Kim, Un-Yong;Han, Sang-Beom;Kwon, Oh-Seung;Yoo, Hye-Hyun
Mass Spectrometry Letters
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제2권1호
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pp.20-23
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2011
The purpose of this study is to investigate the in vitro metabolism of hesperetin, a bioflavonoid. Hesperetin was incubated with rat liver microsomes in the presence of NADPH and UDP-glucuronic acid for 30 min. The reaction mixture was analyzed by liquid chromatography-ion trap mass spectrometer and the chemical structures of hesperetin metabolites were characterzed based on their MS/MS spectra. As a result, a total of five metabolites were detected in rat liver microsomes. The metabolites were identified as a de-methylated metabolite (eriodictyol), two hesperetin glucuronides, and two eriodictyol glucuronides.
Peptides separation in high performance liquid chromatography (HPLC) is very important for the analysis of total proteins using mass spectrometry rather than two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis (2D-PAGE). In this study, we investigated the optimal HPLC condition of peptides for the use of mass fingerprinting. As a result of pursuing a combination of solvent additives for HPLC, water and acetonitile containing both 0.1% trifluoroacetic acid and 0.1% acetic acid respectively showed the most efficient resolution and sensitivity.
An advanced and reliable high performance liquid chromatography (HPLC)/ultraviolet detector (UV)/ion-trap time-of-flight (IT-TOF) mass spectrometry was developed for the simultaneous quantification of 19 marker compounds in Bang-poong-tong-sung-san (BPTS), a traditional oriental prescription. Various parameters affecting HPLC separation and IT-TOF detection were investigated, and optimized conditions were identified. The separation was achieved on a Capcell PAK C18 column ($1.5mm{\times}250mm$, $5{\mu}m$ particle size) using a gradient elution of acetonitrile and water containing 0.1% formic acid at a flow rate of 0.1 mL/min. The column temperature was maintained at $40^{\circ}C$ and the injection volume was $2{\mu}L$. IT-TOF system was equipped with an electrospray ion source (ESI) operating in positive or negative ion mode. The optimized electrospray ionization parameters were as follows: ion spray voltage, +4.5 kV (positive ion mode), or -3.5 kV (negative ion mode); drying gas ($N_2$), 1.5 L/min; heat block temperature, $200^{\circ}C$. Automatic $MS^n$ (n = 1~3) analyses were carried out to obtain structural information of analytes. Elemental compositions and their mass errors were calculated based on their accurate masses obtained from a formula predictor software. The marker compounds in BPTS were identified by comparisons between $MS^n$ spectra from standards and those from extracts. Moreover, the libraries of $MS^2$ and $MS^3$ spectra and accurate masses of parent and fragment ions for marker compounds were constructed. The developed method was successfully applied to the BPTS extracts and identified 17 out of 19 marker compounds in the BPTS extracts.
Park, Jongkwan;Choi, Mijin;Cho, Jaeweon;Chon, Kyongmi
Environmental Engineering Research
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제23권4호
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pp.390-396
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2018
This study investigated the transformation of dissolved organic matter (DOM) in a free-water surface flow constructed wetland. Pyrolysis gas chromatography-mass spectrometry (Py-GC/MS) coupled with preparative high-performance liquid chromatography (prep-HPLC) was used to analyze the compositions of biopolymers (polysaccharides, amino sugars, proteins, polyhydroxy aromatics, lipids and lignin) in DOM according to the molecular size at three sampling points of the water flow: inflow, midflow, and outflow. The prep-HPLC results verified the decomposition of DOM through the decrease in the number of peaks from three to one in the chromatograms of the sampling points. The Py-GC/MS results for the degradable peaks indicated that biopolymers relating to polysaccharides and proteins gradually biodegraded with the water flow. On the other hand, the recalcitrant organic fraction (the remaining peak) in the outflow showed a relatively high concentration of aromatic compounds. Therefore, the ecological processes in the constructed wetland caused DOM to become more aromatic and homogeneous. This indicated that the constructed wetland can be an effective buffer area for releasing biochemically stable DOM, which has less influence on biological water quality indicators, e.g., biochemical oxygen demand, into an aquatic ecosystem.
The analytical method for 16 organophosphorus pesticides was developed in this study. The 16 organophosphorus pesticides were analyzed by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC/MS/MS) using on-line solid phase extraction (on-line SPE) with PLRP- S cartridge. Analysis of all analytes in the MS/MS was processed in the electrospray ioni-zation (ESI) positive mode. They are Azinphos ethyl, Chlorfenvinphos, Ethion, Famphur, Phosmet, Phosphamidon, Terbufos, Aspon, Chlorpyrifos-methyl, Crotoxyphos, Dichlofenthi-on, Dicrotophos, Fonofos, Thionazin, Dimethoate and Iprobenfos. Limits of detection (LODs) and Limits of quantification(LOQs) were obtained as 0.8~2.0 ng/L and 2.6~6.4 ng/L, respectively. All compounds were not detected at the 8 sampling points of the raw water and clean water.
Our study aims to determine the metabolism and excretion of novel pulmonary-targeting docetaxel liposome (DTX-LP) using the in vitro and in vivo animal experimental models. The metabolism and excretion of DTX-LP and intravenous DTX (DTX-IN) in New Zealand rabbits were determined with ultra-performance liquid chromatography tandem mass spectrometry. We found DTX-LP and DTX-IN were similarly degraded in vitro by liver homogenates and microsomes, but not metabolized by lung homogenates. Ultra-performance liquid chromatography tandem mass spectrometry identified two shared DTX metabolites. The unconfirmed metabolite $M_{un}$ differed structurally from all DTX metabolites identified to date. DTX-LP likewise had a similar in vivo metabolism to DTX-IN. Conversely, DTX-LP showed significantly diminished excretion in rabbit feces or urine, approximately halving the cumulative excretion rates compared to DTX-IN. Liposomal delivery of DTX did not alter the in vitro or in vivo drug metabolism. Delayed excretion of pulmonary-targeting DTX-LP may greatly enhance the therapeutic efficacy and reduce the systemic toxicity in the chemotherapy of non-small cell lung cancer. The identification of $M_{un}$ may further suggest an alternative species-specific metabolic pathway.
A novel sample pretreatment technique, headspace hanging drop liquid phase microextraction (HS-LPME) was studied and applied to the determination of flavors from solid clove buds by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Several parameters affecting on HS-LPME such as organic solvent drop volume, extraction time, extraction temperature and phase ratio were investigated. 1-Octanol was selected as the extracting solvent, drop size was fixed to 0.6 $\mu$L. 60 min extraction time at 25 ${^{\circ}C}$ was chosen. HS-LPME has the good efficiency demonstrated by the higher partition equilibrium constant ($K_{lh}$) values and concentration factor (CF) values. The limits of detection (LOD) were 1.5-3.2 ng. The amounts of eugenol, $\beta$-caryophyllene and eugenol acetate from the clove bud sample were 1.90 mg/g, 1.47 mg/g and 7.0 mg/g, respectively. This hanging drop based method is a simple, fast and easy sample enrichment technique using minimal solvent. HSLPME is an alternative sample preparation method for the analysis of volatile aroma compounds by GC-MS.
Lee, Mee Youn;Park, Hye Min;Son, Gun Hee;Lee, Choong Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제23권7호
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pp.932-941
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2013
This work aimed to classify Aspergillus (8 species, 28 strains) by using a secondary metabolite profile-based chemotaxonomic classification technique. Secondary metabolites were analyzed by liquid chromatography ion-trap mass spectrometry (LC-IT-MS) and multivariate statistical analysis. Most strains were generally well separated from each section. A. lentulus was discriminated from the other seven species (A. fumigatus, A. fennelliae, A. niger, A. kawachii, A. flavus, A. oryzae, and A. sojae) with partial least-squares discriminate analysis (PLS-DA) with five discriminate metabolites, including 4,6-dihydroxymellein, fumigatin, 5,8-dihydroxy-9-octadecenoic acid, cyclopiazonic acid, and neosartorin. Among them, neosartorin was identified as an A. lentulus-specific compound that showed anticancer activity, as well as antibacterial effects on Staphylococcus epidermidis. This study showed that metabolite-based chemotaxonomic classification is an effective tool for the classification of Aspergillus spp. with species-specific activity.
Liquid chromatography mass spectrometry is widely employed in proteomics studies. One of such instruments is the Liquid Chromatography (LC)-Matrix-assisted laser desorption ionisation (MALDI)-Time of flight (TOF) or LC-MALDI-TOF/TOF. In this study, this instrument was used to identify the membrane proteins of a protozoan parasite namely Entamoeba histolytica. It causes amoebiasis in human. The E. histolytica trophozoites were cultured prior to the membrane protein extraction using the conventional method, $ProteoPrep^{(R)}$ and $ProteoExtract^{(R)}$ kits. Then, the membrane protein extracts were trypticdigested and analysed by LC-MALDI-TOF/TOF. Approximately, 194 proteins were identified and 27.8% (54) were predicted as membrane proteins having 1 to 15 transmembrane regions and signal peptides by combining all three extraction methods. Also, this study has discovered 3 unique proteins as compared to our previous study which merit further investigation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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