One of the interesting trends in genome research is the study about epigenetic modification above single gene level. Epigenetics refers study about heritable change in the genome, which accompany modification in DNA or Chromatin besides DNA sequence alteration. We used to have the idea that the coding potential of the genome lies within the arrangement of the four bases A, T, G, C; However, additional information that affects phenotype is stored in the distribution of the modified base 5-methylcytosine. This form of information storage is flexible enough to be adapted for different somatic cell types, yet is stable enough to be retained during mitosis and/or meiosis. Epigenetic modification is a modification of the genome, as opposed to being part of the genome, so is known as "epigenetics"(Greek for "upon" genetics). This modification could be methylation on Cytosine base or post translational modification on histone protein(methylation, acetylation, phosphorylation, Sumoylation)($Dimitrijevi\hat{E}$ et al 2005). In this review, we would like to focus on the relationship of DNA methylation and cancer.
Histone methylation plays important roles in regulating chromatin dynamics and transcription in eukaryotes. Implication of histone modifications in fungal pathogenesis is, however, beginning to emerge. Here, we report identification and functional analysis of a putative JmjC-domain-containing histone demethylase in Magnaporthe oryzae. Through bioinformatics analysis, we identified seven genes, which encode putative histone demethylases containing JmjC domain. Deletion of one gene, MoJMJ1, belonging to JARID group, resulted in defects in vegetative growth, asexual reproduction, appressorium formation as well as invasive growth in the fungus. Western blot analysis showed that global H3K4me3 level increased in the deletion mutant, compared to wild-type strain, indicating histone demethylase activity of MoJMJ1. Introduction of MoJMJ1 gene into ${\Delta}Mojmj1$ restored defects in pre-penetration developments including appressorium formation, indicating the importance of histone demethylation through MoJMJ1 during infection-specific morphogenesis. However, defects in penetration and invasive growth were not complemented. We discuss such incomplete complementation in detail here. Our work on MoJMJ1 provides insights into H3K4me3-mediated regulation of infection-specific development in the plant pathogenic fungus.
Chromatin structure and dynamics that are influenced by epigenetic marks, such as histone modification and DNA methylation, play a crucial role in modulating gene transcription. To understand the relationship between histone modifications and regulatory elements in breast cancer cells, we compared our chromatin immunoprecipitation sequencing (ChIP-Seq) histone modification patterns for histone H3K4me1, H3K4me3, H3K9/16ac, and H3K27me3 in MCF-7 cells with publicly available formaldehyde-assisted isolation of regulatory elements (FAIRE)-chip signals in human chromosomes 8, 11, and 12, identified by a method called FAIRE. Active regulatory elements defined by FAIRE were highly associated with active histone modifications, like H3K4me3 and H3K9/16ac, especially near transcription start sites. The H3K9/16ac-enriched genes that overlapped with FAIRE signals (FAIRE-H3K9/14ac) were moderately correlated with gene expression levels. We also identified functional sequence motifs at H3K4me1-enriched FAIRE sites upstream of putative promoters, suggesting that regulatory elements could be associated with H3K4me1 to be regarded as distal regulatory elements. Our results might provide an insight into epigenetic regulatory mechanisms explaining the association of histone modifications with open chromatin structure in breast cancer cells.
Special AT-rich sequence binding protein 1 (SATB1) is a nuclear matrix-associated DNA-binding protein that functions as a chromatin organizer. SATB1 is highly expressed in aggressive breast cancer cells and promotes growth and metastasis by reprograming gene expression. Through genome-wide cross-examination of gene expression and histone methylation, we identified SATB1 target genes for which expression is associated with altered epigenetic marks. Among the identified genes, long noncoding RNA urothelial carcinoma-associated 1 (UCA1) was upregulated by SATB1 depletion. Upregulation of UCA1 coincided with increased H3K4 trimethylation (H3K4me3) levels and decreased H3K27 trimethylation (H3K27me3) levels. Our study showed that SATB1 binds to the upstream region of UCA1 in vivo, and that its promoter activity increases with SATB1 depletion. Furthermore, simultaneous depletion of SATB1 and UCA1 potentiated suppression of tumor growth and cell survival. Thus, SATB1 repressed the expression of oncogenic UCA1, suppressing growth and survival of breast cancer cells.
It is well established that there is a heritable element of susceptibility to chronic human ailments, yet there is compelling evidence that some components of such heritability are transmitted through non-genetic factors. Due to the complexity of reproductive processes, identifying the inheritance patterns of these factors is not easy. But little doubt exists that besides the genomic backbone, a range of epigenetic cues affect our genetic programme. The inter-generational transmission of epigenetic marks is believed to operate via four principal means that dramatically differ in their information content: DNA methylation, histone modifications, microRNAs and nucleosome positioning. These epigenetic signatures influence the cellular machinery through positive and negative feedback mechanisms either alone or interactively. Understanding how these mechanisms work to activate or deactivate parts of our genetic programme not only on a day-to-day basis but also over generations is an important area of reproductive health research.
Genomic instability, which occurs through both genetic mechanisms (underlying inheritable phenotypic variations caused by DNA sequence-dependent alterations, such as mutation, deletion, insertion, inversion, translocation, and chromosomal aneuploidy) and epigenomic aberrations (underlying inheritable phenotypic variations caused by DNA sequence-independent alterations caused by a change of chromatin structure, such as DNA methylation and histone modifications), is known to promote tumorigenesis and tumor progression. Mechanisms involve both genomic instability and epigenomic aberrations that lose or gain the function of genes that impinge on tumor suppression/prevention or oncogenesis. Growing evidence points to an epigenome-wide disruption that involves large-scale DNA hypomethylation but specific hyper-methylation of tumor suppressor genes, large blocks of aberrant histone modifications, and abnormal miRNA expression profile. Emerging molecular details regarding the modulation of these epigenetic events in cancer are used to illustrate the alterations of epigenetic molecules, and their consequent malfunctions could contribute to cancer biology. More recently, intriguing evidence supporting that genetic and epigenetic mechanisms are not separate events in cancer has been emerging; they intertwine and take advantage of each other during tumorigenesis. In addition, we discuss the collusion between epigenetics and genetics mediated by heterochromatin protein 1, a major component of heterochromatin, in order to maintain genome integrity.
Hong, Eun-Hye;Jeong, Young-Min;Ryu, Jee-Youn;Amasino, Richard M.;Noh, Bosl;Noh, Yoo-Sun
Molecules and Cells
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v.27
no.4
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pp.481-490
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2009
Diverse posttranslational modifications of histones, such as acetylation and methylation, play important roles in controlling gene expression. Histone methylation in particular is involved in a broad range of biological processes, including heterochromatin formation, X-chromosome inactivation, genomic imprinting, and transcriptional regulation. Recently, it has been demonstrated that proteins containing the Jumonji (Jmj) C domain can demethylate histones. In Arabidopsis, twenty-one genes encode JmjC domain-containing proteins, which can be clustered into five clades. To address the biological roles of the Arabidopsis genes encoding JmjC-domain proteins, we analyzed the temporal and spatial expression patterns of nine genes. RT-PCR analyses indicate all nine Arabidopsis thaliana Jmj (AtJmj) genes studied are actively expressed in various tissues. Furthermore, studies of transgenic plants harboring AtJmj::${\beta}$-glucuronidase fusion constructs reveal that these nine AtJmj genes are expressed in a developmentally and spatially regulated manner.
Park, Kyunghyuk;Jeon, Min Chul;Kim, Bokyung;Cha, Bukyoung;Kim, Jong-Il
Genomics & Informatics
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v.20
no.1
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pp.2.1-2.11
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2022
The method of single-cell RNA sequencing has been rapidly developed, and numerous experiments have been conducted over the past decade. Their results allow us to recognize various subpopulations and rare cell states in tissues, tumors, and immune systems that are previously unidentified, and guide us to understand fundamental biological processes that determine cell identity based on single-cell gene expression profiles. However, it is still challenging to understand the principle of comprehensive gene regulation that determines the cell fate only with transcriptome, a consequential output of the gene expression program. To elucidate the mechanisms related to the origin and maintenance of comprehensive single-cell transcriptome, we require a corresponding single-cell epigenome, which is a differentiated information of each cell with an identical genome. This review deals with the current development of single-cell epigenomic library construction methods, including multi-omics tools with crucial factors and additional requirements in the future focusing on DNA methylation, chromatin accessibility, and histone post-translational modifications. The study of cellular differentiation and the disease occurrence at a single-cell level has taken the first step with single-cell transcriptome and is now taking the next step with single-cell epigenome.
Soo Hyun, Lee;Yingying, Li;Hanbyeol, Kim;Seounghyun, Eum;Kyumin, Park;Chul-Hwan, Lee
BMB Reports
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v.55
no.12
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pp.595-601
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2022
Polycomb Repressive Complex 2 (PRC2) exhibits key roles in mammalian development through its temporospatial repression of gene expression. EZH1 or EZH2 is the catalytic subunit of PRC2 that mediates the mono-, di- and tri-methylation of histone H3 lysine 27 (H3K27me1/2/3), H3K27me2/me3 being a hallmark of facultative heterochromatin. PRC2 is a chromatin-modifying enzyme that is recruited to a limited number of "nucleation sites", spreads H3K27 methylation and fosters chromatin compaction. EZH1 and EZH2 exhibit differences in their expression patterns, levels of histone methyltransferase activity (HMT) in the context of PRC2, and DNA/nucleosome binding activity. This suggests that their roles in heterochromatin formation are disparate. Dysregulation of PRC2 activity leads to aberrant gene expression and is implicated in cancer and developmental diseases. In this review, we discuss the distinct function of PRC2/EZH1 and PRC2/EZH2 in the early and late developmental stages. We then discuss the cancers associated with PRC2/EZH1 and PRC2/EZH2.
Chromatin remodeling regulates gene expression through epigenetic mechanisms. Aberrations in histone modification have been associated with depression-like behaviors in animal models. Additionally, growing evidence also indicates that epigenetic modification is associated with depression. p11 (S100A10) has been implicated in the pathophysiology of depression both in human and rodent models. In the present study, we investigated alterations in histone acetylation and methylation at the promoter of the p11 gene in the hippocampus of mice subjected to chronic unpredictable stress (CUS). C57BL/6 mice were exposed to CUS daily for 3 weeks. Depression-like behaviors were measured with the forced swimming test (FST). The levels of hippocampal p11 expression were analyzed by quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR) and Western blotting. The levels of acetylated and methylated histone H3 at the promoter of p11 were measured by chromatin immunoprecipitation followed by real-time PCR. CUS-exposed mice displayed depression-like behaviors with prolonged immobility in FST. CUS led to significant decreases in the expression of p11 at both protein and mRNA levels. Meanwhile, there was a decrease in histone H3 acetylation (Ac-H3) and H3-K4 trimethylation (H3K4met3) and an increase in H3-K27 trimethylation (H3K27met3) at the p11 promoter. These results indicate that chronic stress causes the epigenetic suppression of p11 expression in the hippocampus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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