In vitro high-frequency plant regeneration of Muscari comosum var. plumosum through somatic embryogenesis was obtained via two developmental pathways: direct embryos and multiple shoots regenerated from embryogenic callus. Flower bud with pedicel, receptacle, petal and ovary wall, floral stalk and leaf as explants were cultured in MS medium supplemented with various plant growth regulators. Embryos formed directly from pedicel, receptacle and floral stalk. Depending on explant sources, the optimal medium was MS medium supplemented with 0.2 mg/L IBA and 0.3 mg/L BA, 3.0 mg/L IBA and 3.0 mg/L BA, and MS-free medium for pedicel, receptacle, and floral stalk, respectively. Multiple shoots regenerated from embryogenic cal]i which was initiated from petal, ovary and leaf were observed in MS medium with different concentrations and combinations of hormone. The most suitable medium for each type of explant was 3.0 mg/L IBA and 3.0 mg/L BA(petal and ovary) and 5.0 mg/L IBA and 5.0 mg/L BA (leaf) Furthermore, the combination of 0.1 mg/L 2,4-D and 1.0 mg/L BA was also good for all sources of explants not only for direct embryo formation, but also, for embryogenic callus induction.
This study aimed to get the basic data on the breeding of good varieties in Hypericum patulum Thunberg. The optimum materials, concentration and soaking time were examined to identify the effective approach to induce tetraploid plant by colchicine treatment to cultivate the varieties. For the seed germination rate of seed by colchicine treatment, the higher colchicine concentration was and the longer soaking time was, the more the germination rate decreased. While individuals were germinated in 16 test groups except control group (no treatment group), all the plants were diploid and no tetraploid was induced. For the plant regeneration rate by colchicine treatment on the explant of Hypericum patulum Thunberg that was under in vitro culture, the higher the colchicine concentration increased, the ress the regeneration rate. While total 147 individuals were regenerated in all treatment, when the explant was soaking treatment in more than 0.05% for over 6 hours, tetraploid could be obtained. In the soaking treatment of 0.05% for over 6 hours, tetraploid could be obtained. In particular, for the soaking treatment in 0.05% for 12 hours, 8 tetraploids were induced, which was about 47.1% of the number of plant regenerated. In accordance with the observation on doubling of DNA contents in leaf in order to identify polyploidy, the peak DNA content of G1 phase was 94.5 for diploid and 192.5 for tetraploid. It confirmed doubling of DNA content. Furthermore, the number of chloroplasts per guard cell depending on polyploid was around 10 in diploid and 17 to 19 in tetraploid, which were around 1.7 to 1.9 times as much as diploid.
A study was under taken to investigate the appropriate explant sources of flower organ and suitable cultural conditions such as light, temperature, and sucrose in plant regeneration of Iris ensata culture. Explants of perianth, ovary, pedicel, and peduncle of Iris ensata were cultured at different daylength (0, 8, 16, 24 hour), different temperatures (10, 15, 25, 3$0^{\circ}C$), and sucrose concentrations (1, 3, 6, 9%) on MS medium. Formation of adventitious roots from explants of Iris ensata was effective in the dark, while that of adventitous shoots was effective in the light. The optimum daylength for young plant regeneration was 16 hours. The optimum temperature for shoot formation of Iris ensata explants was $25^{\circ}C$ but the formation at 10 and 15$^{\circ}C$ was ineffective. Especi-ally, perianth and ovary was effective in shoot formation from flower organ expants. T-he optimum concentration of sucrose for shoots and roots formation of Iris ensata explants was 3 and 6%, respectively.
Kim Myung Jun;Kim Young Sook;Kim Hyun Soon;Ko Jeong Ae
Korean Journal of Plant Resources
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v.18
no.3
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pp.382-389
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2005
This study was conducted to establish the system of effective in vitro propagation by various explant sources culture of Bippeastrum hybridum Hort, 'Dazzler'. We tested the effects of optimal explant source, plant growth regulators on bulblet formation and plant regeneration. Callus was readily produced on the different tissues excised from floral buds whereas, bulbs and shoots were formed only on pedicel explants as compared with anthers, styles and ovaries. Pedicel is the best optimal explant for in vitro propagation. Two distinct pathways, organogenesis through callus and direct bulblet formation, could be recognized in pedicel culture. Up to the $80-100\%$ of bulblet formation and shoot organogenesis from the pedicel in fifteen days before anthesis were effectively induced by MS medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA. Plantlet regeneration was successfully achieved from pedicel-derived callus, via shoot bud induction or direct bulblet formation. The bulblets with blooming flower were produced within 2 years.
This study was carried out to establish the micropropagation system of Bupleurum latissimum Nakai that is a Korean native endangered species. Callus were induced from the leaf, petiole and floral bud and the percentage of callus formation was highest in the floral bud on the MS medium containing 2.0 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ 2,4-D. Especially, callus induced from floral bud was formed 77.8% and the percentage of shoot formation was 42.6% on the MS medium containing 2.0 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ 2,4-D plus 1.0 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ TDZ. For simultaneously callus formation and shoot regeneration, 1/2 MS medium was more effective than MS medium. The percentage callus formation, shoot regeneration and rooting were 46.3%, 13.0%, 13.0% in 1/2 MS medium, respectively. Soot regeneration from callus was good in 1/2 MS medium supplemented with 2.0 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ 2,4-D plus 1.0 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ BA where percentage of shoot regeneration was 74.1 %, and the number of shoot per explant was 2.4. The percentage of rooting was lowest (57.8%) in control while it was highest (97.8%) in 1.5 mg ${\cdot}$$L^{-1}$ NAA. In acclimatization of regenerated plantlets, the percentage of survived plantlets was highest (86.1%), and plant height, root length and fresh weight were good in the soil for horticulture.
This study was carried out to determine the optimal medium composition and growth regulators for the micropropagation of Platycodon grandiflorum (Jacq.) A. DC. Nodes containing yellow green petals were used as plant materials to execute the study. The best performance of adventitious root development was found in 1/4 strength of MS basal salt and the growth was satisfactory in the concentration of 1/2 MS medium. The best condition for adventitious root development and growth was observed in the higher concentration (5%) of sucrose and activated charcoal free 1/4MS medium respectively. Adventitious roots were developed at the controlled culture medium at pH 4.8 with a tendency of suppression with higher levels of pH. However, it was prevailed that the development and growth depended on the concentration of agar. The lower concentration of agar (0.4%) was performed better than that of higher concentration (1.2%), whereas the agar concentration (0.4%) showed the best performance for the development and growth of adventitious roots. For the development of shoots containing node, BA combined with IAA was more effective than kinetin with IAA or NAA. The highest shoot development (3.9 shoots per explant) was performed on MS medium supplemented with 0.1 mg/L BA and 0.5 mg/L IAA.
In vitro plant regeneration of inbred breeding line of hot pepper (Capsicum annuum L.) was established using leaf and petiole segments as explants. About 28 days old plants were excised and cultured on MS medium supplemented with TDZ and NAA or in combination with Zeatin. In all of the media compositions tested, combination of TDZ 0.5 mg/L, Zeatin 0.5 mg/L, and NAA 0.1 mg/L was found to be the best medium for shoot bud initiation. Young petiole was the most appropriate explant type for the plant regeneration as well as genetic transformation in hot pepper. In this study, HpMADS1 gene isolated from hot pepper was introduced using Agrobacterium-mediated transformation system. Based on the analysis of Southern blot and RT-PCR, HpMADS1 gene was integrated in the hot pepper genome. It has been known that floral organ development is controlled by a group of regulatory factors containing the MADS domain. Morphological characteristics in these transgenic plants, especially flowering habit, however, were not significantly altered, indicating this MADS gene, HpMADS1 may be non-functional in this case.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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