Intense pulsed light (IPL), a nonthermal technology, has attracted increasing interest as a food processing technology. However, its efficacy in inactivating microorganisms has not been evaluated thoroughly. In this study, we investigated the influence of IPL treatment on the inactivation of Escherichia coli O157:H7 depending on light intensity, treatment time, and pulse number. Increased light intensity from 500 V to 1,000 V, raised the inactivation rate at room temperature. At 1000 V, the cell numbers were reduced by 7.1 log cycles within 120 s. In addition, increased pulse number or decreased distance between the light source and sample surface also led to an increase in the inactivation rate. IPL exposure caused a significant increase in the absorption at 260 nm of the suspending agent used in our experiments. This indicates that IPL-treated cells were damaged, consequently releasing intracellular materials. The growth of IPL-irradiated cells were delayed by about 5 h. The degree of damage to the cells after IPL treatment was confimed by transmission electron microscopy.
A lactic acid bacterium showing growth inhibitory activity against Enterobacter sakazakii was isolated from bovine intestinal tracts. From biochemical and molecular biological studies, the isolate was identified and named as Enterococcus faecium JH95. This strain was resistant to kanamycin and streptomycin at a concentration of $100{\mu}g/mL$. E. faecium JH95 had high antimicrobial activity against food-borne pathogens such as Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus, and Clostridium perfrigens. The culture supernatant of this strain did not have antimicrobial activity. The culture broth of this strain failed to show the antimicrobial activity by heat treatment at $100^{\circ}C$ for 5 min or by pretense treatments for 2 hr. This result suggested that the putative antimicrobial substance produced by E. faecium JH95 is likely a protein which is not secreted into culture medium.
This survey was conducted to evaluate the microbiological quality and to detect of pathogenic microorganisms on the surface of slaughtered beef and pork products in two abattoirs located in Seoul from January 2001 through December 2001. Two hundred and twenty-five beef and 215 hog were surveyed for microbiological quality and 630 beef and 625 hog were detected for pathogenic microorgainsms. 1. The prevalence level on number of standard plate count(SPC) less than $10^4$cfu/$cm^2$in beef and hog were 89.8% and 90.7%, respectively. 2. Escherichia coli less than $10^2$cfu/$cm^2$ in beef and less than $10^3$cfu/$cm^2$ in hog were 98.2% and 99% 3. E coli 0157:H7 was recovered from 2 beef carcasses(0.32%), and Staphylococcus aureus from 12 pork carcasses(1.90%), Listeria monocytogenes from 1 beef and 4 pork carcasses (0.15%, 0.64%) and clostridium perfringens from 14 beef and 11 pork carcasses(2.22%, 1.76%), respectively.
Antibiotic resistance of foodborne pathogens adapted to garlic (Allium sativum Linn.) was determined in order to understand the relationship between antibiotic resistance and garlic. The Gram (-) strains of Escherichia coli and Salmonella typhimurium and the Gram (+) strains of Bacillus cereus and Staphylococcus aureus were subcultured consecutively in a garlic broth, and the surviving colonies on the agar were selected as the adapted strains. Minimal inhibitory concentrations (MIC) for 15 antibiotics on the adapted strains were determined on Muller-Hinton Infusion agar. Adaptation to 1.3%(v/v) garlic juice increased MIC for vancomycin, aminoglycoside, and erythromycin on B. cereus, and for ampicillin and erythromycin on E. coli O157:H7. MIC of aminoglycosides, chloramphenicol, and vancomycin on the adapted S. aureus increased. The adapted S. typhimurium was more resistant to penicillin and vancomycin than the non-treated strain. The adapted S. typhimurium and S. aureus lost their antibiotic resistance in non-garlic stress conditions. However, the adapted B. cereus was still resistant to erythromycin and vancomycin, and the adapted E. coli was also resistant to erythromycin. Antibacterial garlic might increase the antibiotic resistance of E. coli, B. cereus, S. aureus, and S. typhimurium and this resistance can continue even without the stress of garlic. Therefore, garlic as a food seasoning could influence the resistance of such pathogens to these antibiotics temporarily or permanently.
Kim, Won-Il;Kim, Sun Young;Kim, In-Seon;Han, Sanghyun;Kim, Se-Ri;Yun, Bohyun;Ryu, Jae-Gee;Kim, Hyeon-Ju
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.31
no.6
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pp.465-470
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2016
Sample preparation methods were evaluated for effectiveness in detecting foodborne pathogens from sprout seeds. The methods included: Rinse.-Test portions were rinsed with 0.1% peptone water, and the pellet after centrifugation was inoculated into pre-enrichment media; and Sprouting.-Seed samples were sprouted before pre-enrichment and sprouted seeds were inoculated into pre-enrichment media. In rinse method, E. coli was isolated from 13 of 280 sample units. In sprouting method, E. coli was isolated from 12 of 135 sample units. E. coli O157:H7, Salmonella spp., and L. monocytogenes were not detected in any of the samples. In the trials for recovering Salmonella enterica from artificially contaminated alfalfa seeds, the soak, rinse, and sprouting methods were evaluated. The detection rates of S. enterica were statistically different according to the amount of the sample tested and selective medium type (P < 0.05).
Compost is used mainly as an organic fertilizer, but it is also used as bedding material for cattle. Dairy cattle have been identified as a main reservoir of pathogenic Escherichia coli O157:H7. Further, E. coli is regarded as an environmental pathogen that causes bovine clinical mastitis. Hence, its growth in compost spread or compost bedding should be avoided. Physical and chemical conditions, available nutrients and microflora in compost change greatly during the composting process. Since pathogen growth in compost seems to be related to these changes, we assessed the possibility of E. coli growth in compost samples collected at 0, 7, 13, 22, 41, 190 and 360 d. Cattle waste composts with and without added tofu residue were collected from static piles and immediately air-dried. Compost samples were inoculated with a pure culture of E. coli, the moisture content was adjusted to 50%, and the samples were incubated for 5 d at $30^{\circ}C$. The numbers of E. coli in compost before and after incubation were determined by direct plating on Chromocult coliform agar. Almost all compost samples supported E. coli growth. Samples collected during or immediately after the thermophilic phase (day 7) showed the highest growth. Growth in samples more than 13 d old were not significantly different from those of aged compost samples. The addition of tofu residue gave a higher growth than its absence in younger samples collected prior to 13 d. To minimize the risk of environmental mastitis, the use of compost in the initial stage of the process is better avoided.
Song, Ye Ji;Yu, Hwan Hee;Kim, Yeon Jin;Lee, Na-Kyoung;Paik, Hyun-Dong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.8
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pp.1177-1183
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2019
Grapefruit seed extract (GSE) is a safe and effective preservative that is used widely in the food industry. However, there are few studies addressing the anti-biofilm effect of GSE. In this study, the anti-biofilm effect of GSE was investigated against biofilm-forming strains of Staphylococcus aureus and Escherichia coli. The GSE minimum inhibitory concentration (MIC) for S. aureus and E. coli were $25{\mu}g/ml$ and $250{\mu}g/ml$, respectively. To investigate biofilm inhibition and degradation effect, crystal violet assay and stainless steel were used. Biofilm formation rates of four strains (S. aureus 7, S. aureus 8, E. coli ATCC 25922, and E. coli O157:H4 FRIK 125) were 55.8%, 70.2%, 55.4%, and 20.6% at $1/2{\times}MIC$ of GSE, respectively. The degradation effect of GSE on biofilms attached to stainless steel coupons was observed (${\geq}1$ log CFU/coupon) after exposure to concentrations above the MIC for all strains and $1/2{\times}MIC$ for S. aureus 7. In addition, the specific mechanisms of this anti-biofilm effect were investigated by evaluating hydrophobicity, auto-aggregation, exopolysaccharide (EPS) production rate, and motility. Significant changes in EPS production rate and motility were observed in both S. aureus and E. coli in the presence of GSE, while changes in hydrophobicity were observed only in E. coli. No relationship was seen between auto-aggregation and biofilm formation. Therefore, our results suggest that GSE might be used as an anti-biofilm agent that is effective against S. aureus and E. coli.
Purpose : Infection with Shiga-like toxin (SLT)-producing Escherichia coli, an emerging human pathogen found particularly in young children under 5 years of age, causes a spectrum of illnesses with high morbidity and mortality, ranging from diarrhea to hemorrhagic colitis and hemolytic uremic syndrome. Host mediators play an important role in the pathogenesis of SLT-I toxicity. The experiments described here were designed to investigate the effect of SLT-I on TNF-${\alpha}$ production and to understand the effect of TNF-${\alpha}$ on GB3 expression. We also further examine the relationship between the Gb3 level and the differential susceptibility of cells to the cytotoxic action of SLT-I. Methods : The effect of purified SLT-1 from E. coli O157 : H7 (ATCC 43890) on tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$) production in Raw264.7 cells was investigated. Many mediators regulate endothelial cell membrane expression of the glycolipid globotriaosyleramide (Gb3), which serves as the toxin receptor, suggesting that the host response to the toxin or other bacterial products may contribute to pathogenesis by regulating target cell sensitivity to the toxins. Therefore, the relationships between Gb3 expression and cytotoxicity against SLT-I on three types of cells were evaluated. Results : Detectable levels of TNF-${\alpha}$ were produced as early as six hours after induction and continued to increase during 48 hours by SLT-I. It was also found that Vero cells and dendritic cells (DC2.4 cells) expressed high levels of Gb3, 83% and 68%, respectively, and that Raw264.7 cells had a low level of Gb3 (29%) and appeared refractory to cytotoxicity against SLT-I. Vero cells and DC2.4 cells expressing high levels of Gb3 were highly susceptible to SLT-I. Furthermore, macrophages showed a resistance to SLT-I cytotoxicity, despite the fact that Gb3 expression was enhanced. Conclusion : These results strongly suggest that the expression of Gb3 is necessary but not sufficient to confer sensitivity of macrophages to SLT-I and further underpin the important role of SLT-I and its Gb3 receptors in the pathogenesis of E. coli O157 infection.
Gho, Ju Young;Lee, Jiyeon;Choi, Hanhee;Park, Sun Woo;Kang, Seok-Seong
Journal of Dairy Science and Biotechnology
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v.39
no.3
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pp.121-127
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2021
Yogurt is produced by bacterial fermentation of milk and contains lactic acid bacteria (LAB), which produce various metabolites such as organic acid, hydrogen peroxide, and bacteriocin. This study aimed to investigate cell-free supernatants (CFS) of LAB isolated from Tibetan yogurt. CFS (TY1, TY2, TY3, TY4, TY5, TY6, and TY7) from selected strains of LAB were co-incubated with four different foodborne pathogenic bacteria, namely E. coli O157:H7, Listeria monocytogenes, Salmonella typhimurium, and Staphylococcus aureus. Inhibition of foodborne pathogenic bacterial growth was not affected in the presence of CFS (pH 6.5). In contrast, CFS without neutralization completely inhibited the growth of the bacteria. Furthermore, when the concentration of CFS (without neutralization) was changed to 1:4 and 1:8, a difference in inhibition was observed between Gram-positive and Gram-negative bacteria. CFS more effectively inhibited the growth of Gram-negative E. coli O157:H7 and S. Typhimurium than Gram-positive L. monocytogenes and S. aureus. These results suggest that organic acids in LAB may inhibit the growth of foodborne pathogenic bacteria, particularly Gram-negative bacteria.
his study assessed microbial contamination of leeks and leek-cultivated soil. Leeks and leek-cultivated soil were collected in A and B regions and accounted for 39 and 33 samples, respectively. All of the samples were analyzed for the presence of sanitary indicator bacteria (total aerobic bacteria, coliforms and Escherichia coli), Salmonella spp., E. coli O157:H7, Listeria monocytogenes, and Bacillus cereus. In A and B region, the total aerobic bacteria was in the range of 5.87-8.78 log CFU/g for leeks and 5.94-8.45 log CFU/g for leek-cultivated soil. The coliform in leeks and leek-cultivated soil was in the range of 1.20-7.36 log CFU/g and 2.45-5.87 log CFU/g, respectively. B. cereus was detected from some of the samples while other pathogens were not detected. This study provides important background information on the microbiological safety of fresh vegetable cultivation environments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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