Kim, Juhan;Lee, Sangjae;Oh, Mi Kyung;Kang, Yousung
Electronics and Telecommunications Trends
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v.35
no.1
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pp.25-33
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2020
Just as it is possible to distinguish people by using physical features, such as fingerprints, irises, veins, and faces, and behavioral features, such as voice, gait, keyboard input pattern, and signatures, the an IoT device includes various features that cannot be replicated. For example, there are differences in the physical structure of the chip, differences in computation time of the devices or circuits, differences in residual data when the SDRAM is turned on and off, and minute differences in sensor sensing results. Because of these differences, Sensor data can be collected and analyzed, based on these differences, to identify features that can classify the sensors and define them as sensor-based device DNA technology. As Similar to the biometrics, such as human fingerprints and irises, can be authenticatedused for authentication, sensor-based device DNA can be used to authenticate sensors and generate cryptographic keys that can be used for security.
Biodevices composed of biomolecular layer have been developed in various fields such as medical diagnosis, pharmaceutical screening, electronic device, photonic device, environmental pollution detection device, and etc. The biomolecules such as protein, DNA and pigment, and cells have been used to construct the biodevices such as biomolecular diode, biostorage device, bioelectroluminescence device, protein chip, DNA chip, and cell chip. Substantial interest has focused upon thin film fabrication or the formation of biomaterials mono- or multi-layers on the solid surfaces to construct the biodevices. Based on the development of nanotechnology, nanoscale fabrication technology for biofilm has been emerged and applied to biodevices due to the various advantages such as high density immobilization and orientation control of immoblized biomolecules. This review described the nanoscale fabrication of biomolecular film and its application to bioelectronic devices and biochips.
This study compared two methods for preparing ancient DNA (aDNA) for the construction of successful shotgun libraries that may be applied to massive parallel sequencing. For the comparative analysis, the DNA of prehistoric rib samples from Hungary was extracted using either a manually prepared silica suspension or the Amicon Ultracel-15 10K ultracentrifugal device (Millipore). After the extraction of the same amount of bone powder (about 150 mg) from three samples by each method, the amount of extracted double-stranded DNA and the subsequent degree of construction of the shotgun library were analyzed. The Amicon device method was rapid and easier to perform and resulted in an approximately 11-fold higher DNA recovery than that obtained using the silica suspension. The shotgun library constructed using DNA templates prepared by the Amicon device was more successful than that constructed from templates isolated using the silica suspension. The comparative study of these two aDNA extraction methods showed that the Amicon device has the advantages of saving time, process simplicity, and high efficiency.
This study exploits the robot system which is necessary in gene study and bio-technology industry. As well, a DNA chip, which of use has been increased recently, can be manufactured with this system. The robot consists of a device spotting DNA on the silylated slide, a well plate, a bed for fixing well plates, devices of washing and drying the pin in DNA spotting .device, a distillation-water vessel, and a discharge vessel of wash water. We made the period of sticking DNA to the pin on the well plate to be 15 seconds. The spot size of DNA was set to be 0.28 mm on the average by bringing the slide into contact with pin during 1 second. If DNA is spotted in minimum space possible about 0.32mm, this system can stick about 8,100 DNA spots on the well plate with this rate. Analyzing the procedure: Movement starts, Pin washes, dries, and smears DNA on the well plate. Spotting DNA onto 12 chips took 2 minutes and 50 seconds.
This study exploits the robot system which is necessary in gene study, bio-technology industry. As well, it can achieve the job of DNA chip manufacturing whose use rate has been increased recently. The robot consists of DNA spotting device for spotting DNA on the silylated slide and well plate, bed for fixing well-plate, washing & drying device of washing and drying the pin part of DNA spotting device, distillation-water vessel, and discharge vessel of wash water. We made the term of sticking DNA to the pin on well plate to be 15 seconds. The spot size of DNA was set to be 0.28 mm on the average by bringing the slide into contact with pin for 1 second. At this rate, if DNA is spotted in the minimum space possible of about 0.32mm, it can stick about 8,100 DNA spots on the well plate. Analyzing the procedure: Movement starts. Pin washes, dries, and smears DNA on the well plate. Spots DNA onto 12 chips takes 2 minutes and 50 seconds.
Transactions of the Korean Society of Mechanical Engineers A
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v.27
no.7
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pp.1071-1075
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2003
In this paper, we present a DNA manipulation device in the reaction chamber, which consists of a center electrode and circular outer electrodes of a reaction unit. The charged bio-molecules, DNA, are manipulated by the charge of the electrode in reaction unit. Controlling the induced dynamic electric field between the center electrode and the outer electrodes, concentration / repulsion / manipulation of bio-molecules are enabled at a periphery of electrode. Concentration of the fluorescent DNA at the center electrode is observed by applying +2V. Subsequently, applying -2V, the concentrated DNA is repelled rapidly from the center electrode, which makes dispersion completely in 0.5second. Furthermore, repeated applying +1V/-1V every 5 seconds at each outer electrode, we can circulate the DNA. We also investigate a micro-heater and sensor for DNA manipulation and reaction temperature. The coefficient of heat-resistance and heater temperature characteristic is 0.0043 and 100$^{\circ}C$/sec, respectively.
End-Labeled Free-Solution Electrophoresis (ELFSE) is a new technique that is a promising bioconjugate method for DNA sequencing (or separation) and genotyping by both capillary and microfluidic device electrophoresis. Because ELFSE enables high-resolution electrophoretic separation in aqueous buffer alone (i.e., without a polymer matrix), it eliminates the need to load viscous polymer networks into electrophoresis microchannels. To achieve microchannel DNA separations with high performance, ELFSE requires monodisperse perturbing entities (i.e., drag-tags), which create a large amount of frictional drag when pulled behind DNA during free-solution electrophoresis, and which have other properties suitable for microchannel electrophoresis. In this article, the theoretical concepts of ELFSE and the required characteristics of the drag-tag molecules for the ultimate performance of ELFSE are reviewed. Additionally, the merits and limitations of current drag-tags are also discussed in the context of recent experimental data of ELFSE separation (or sequencing).
Purpose: This study was conducted to assess the agreement and differences between cervical self-sampling with a Kato device (KSSD) and gynecologist sampling for Pap cytology and human papillomavirus DNA (HPV DNA) detection. Materials and Methods: Women underwent self-sampling followed by gynecologist sampling during screening at two primary health clinics. Pap cytology of cervical specimens was evaluated for specimen adequacy, presence of endocervical cells or transformation zone cells and cytological interpretation for cells abnormalities. Cervical specimens were also extracted and tested for HPV DNA detection. Positive HPV smears underwent gene sequencing and HPV genotyping by referring to the online NCBI gene bank. Results were compared between samplings by Kappa agreement and McNemar test. Results: For Pap specimen adequacy, KSSD showed 100% agreement with gynecologist sampling but had only 32.3% agreement for presence of endocervical cells. Both sampling showed 100% agreement with only 1 case detected HSIL favouring CIN2 for cytology result. HPV DNA detection showed 86.2%agreement (K=0.64, 95% CI 0.524-0.756, p=0.001) between samplings. KSSD and gynaecologist sampling identified high risk HPV in 17.3% and 23.9% respectively (p=0.014). Conclusion: The self-sampling using Kato device can serve as a tool in Pap cytology and HPV DNA detection in low resource settings in Malaysia. Self-sampling devices such as KSSD can be used as an alternative technique to gynaecologist sampling for cervical cancer screening among rural populations in Malaysia.
Proceedings of the Korea Information Processing Society Conference
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2019.05a
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pp.178-181
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2019
IoT 기술은 대규모의 IoT 네트워크가 디바이스들로부터 수집되는 데이터들을 이용해 서비스를 제공하는 기술이다. 이러한 IoT 네트워크는 디바이스 상호 간 연결되어 있어 네트워크에 포함 되어있는 하나의 디바이스가 가지고 있는 취약점을 이용하면 IoT 네트워크 전체가 공격받을 수 있다. 따라서, IoT 디바이스는 사양의 높고 낮음에 관계없이 전체 네트워크의 보안 수준에 맞추어 보안 강도를 보장받아야 한다. 본 논문에서는 근래에 새롭게 제시된 "디바이스 DNA"를 이용하여 새로운 디바이스 인증 기술을 개발하는 것에 초점을 맞추어, "디바이스 DNA"로 디바이스 상에서 측정되는 Wi-Fi 신호강도(RSSI; Received Signal Strength Indication)를 사용할 수 있는 가능성을 보인다.
Ha, Seung-Mo;Cho, Woong;Ahn, Yoo-Min;Hwang, Seung-Yong
Transactions of the Korean Society of Mechanical Engineers A
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v.34
no.12
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pp.1785-1791
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2010
This paper describes a separable microfluidic device fabricated with PDMS (polydimethylsiloxane) and glass. The device is used for sample preparation involving cell lysis and the DNA purification process. The cell lysis was performed for 2 min at $80^{\circ}C$ in a serpentine-type microreactor ($20 {\mu}l$) using a Au microheater that was integrated with a thermal microsensor on a glass substrate. The DNA that was mixed with other residual products during the cell lysis process was then filtered through a new filtration system composed of microbeads (diameter: $50 {\mu}m$) and PDMS pillars. Since the entire process (sample loading, cell lysis reaction, DNA purification, and sample extraction) was performed within 5 min in a microchip, we could reduce the sample preparation time in comparison with that for the conventional methods used in biochemistry laboratories. Finally, we verified the performance of the sample preparation chip by conducting PCR (polymerase chain reaction) analysis of the chip product.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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