Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.34
no.4
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pp.419-427
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2008
The present study aimed to investigate the osteogenic potentials of differentiated osteoblast-like cells (DOCs) induced from bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) on ${\beta}-tricalcium$ phosphate (${\beta}-TCP$) with recombinant human bone morphogenetic protein (rhBMP-2) in vitro. Osteoblast differentiation was induced in confluent cultures by adding 100 nM dexamethasone, 10 mM ${\beta}$-glycerophosphate, 50 mM L-ascorbic acid. The Alizarin red S staining and reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) were perfomed to examine the mRNA expression of alkaline phosphatase (ALP), bone sialoprotein (BSP), osteocalcin (OCN), receptor activator for nuclear factor ${\kappa}B$ ligand (RANKL), runt-related transcription factor 2 (RUNX2), collagen-Ⅰ (COL-Ⅰ). There were no significant differences in the osteogenic potentials of DOCs induced from MSCs on ${\beta}-TCP(+/-)$. According to the incubation period, there were significant increasing of Alizadin red S staining in the induction 3 weeks. The mRNA expression of ALP, RUNX2, and RANKL were higher in DOCs/${\beta}-TCP(-)$ than DOCs/${\beta}-TCP(+)$. According to rhBMP-2 concentrations, the mRNA expression of BSP was significantly increased in DOCs/${\beta}-TCP(+)$ compared to that of DOCs/${\beta}-TCP(-)$ on rhBMP 10 ng/ml. Our study presented the ${\beta}-TCP$ will have the possibility that calcium phosphate directly affect the osteoblastic differentiation of the bone marrowderived MSCs.
Embryonic stem cells have a pluripotency and a potential to differentiate to all type of cells. In our previous study, we have shown that embryonic stem cells (ESCs) lines can be generated from murine parthenogenetic embryos. This parthenogenetic ESCs line can be a useful stem cell source for tissue repair and regeneration. The defect in full-term development of parthenogenetic ESCs line enables researchers to avoid the ethical concerns related with ESCs research. In this study, we presented the results demonstrating that parthenogenetic ESCs can be induced into osteogenic cells by supplementing culture media with ascorbic acid and $\beta$-glycerophosphate. These cells showed morphologies of osteogenic cells and it was proven by Von Kossa staining and Alizarin Red staining. Expression of marker genes for osteogenic cells (osteopontin, osteonectin, alkaline phosphatase, osteocalcin, bone-sialoprotein, collagen type1, and Cbfa1) also confirmed osteogenic potential of these cells. These results demonstrate that osteogenic cells can be generated from parthenogenetic ESCs in vitro.
Purpose: Capseal I and Capseal II are calcium silicate and calcium phosphate based experimental root canal sealers. This study sought to evaluate the biocompatibility and mineralization potential of Capseal I and Capseal II. Materials and Methods: The biocompatibility and mineralization related gene expression (alkaline phosphatase [ALP], bone sialoprotein [BSP], and osteocalcin) of Capseal I and Capseal II were compared using methylthiazol tetrazolium assay and reverse transcription-polymerization chain reaction analysis, respectively. The results were analyzed by Kruskal-Wallis test. A P-value of <0.05 was considered significant. Result: Both Capseal I and Capseal II were favorable in terms of biocompatibility, influencing the messenger RNA expression of ALP and BSP. Conclusion: Within the limitation of this study, Capseal is biocompatible, with mineralization promoting potential; thus, it could be a promising root canal sealer.
Substance P (SP) is known to be expressed in the nerve fibers of dental pulp and periodontal tissues. It was recently reported that SP expression increased in response to orthodontic force. In the present study, we investigated the effect of SP on expression of mineralization markers and heme oxygenase-1 (HO-1) in human immortalized periodontal ligament (IPDL) cells. Cell viability was measured using a 3,4,5-dimethylthiazol-2-yl-2,5-diphenyl tetrazolium bromide (MTT) assay. The expression of mineralization markers, including alkaline phosphatase (ALP), osteonectin (ON) and bone sialoprotein (BSP), and heme oxygenase-1 (HO-1) was assessed by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and Western blot analysis. SP did not significantly change human IPDL cell viability, with the exception of the 24 hour treatment group. Treatment of human IPDL cells with $10^{-10}$ to $10^{-4}M$ SP upregulated mineralization marker and HO-1 expression in a time- and concentration-dependent manner. Our results suggest that SP may modulate osteoblastic cell differentiation of human IPDL cells through a mechanism involving HO-1 expression.
Osteoblasts are specialized mesenchymal cells that are responsible for bone formation. In this study, we examine the role of GATA4 in osteoblast differentiation. GATA4 was abundantly expressed in preosteoblast cells and gradually down-regulated during osteoblast differentiation. Overexpression of GATA4 in osteoblastic cells inhibited alkaline phosphatase activity and nodule formation in osteogenic conditioned cell culture system. In addition, overexpression of GATA4 attenuated expression of osteogenic marker genes, including Runx2, alkaline phosphatase, bone sialoprotein, and osteocalcin, all of which are important for osteoblast differentiation and function. Overexpression of GATA4 attenuated Runx2 promoter activity, whereas silencing of GATA4 increased Runx2 induction. We found that GATA4 interacted with Dlx5 and subsequently decreased Dlx5 binding activity to Runx2 promoter region. Our data suggest that GATA4 acts as a negative regulator in osteoblast differentiation by downregulation of Runx2.
Kim, Hyeon-Jong;Choi, Sang-Mook;Ku, Young;Rhyu, In-Chul;Chung, Chong-Pyoung;Han, Soo-Boo;Lee, Yong-Moo
Journal of Periodontal and Implant Science
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v.32
no.2
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pp.389-402
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2002
BMP can induce ectopic bone formation when implanted into sites such as rat muscle and can greatly enhance healing of bony defects when applied exogenously. In addition, BMP stimulated osteoblastic differentiation in vitro in various types of cells. The aim of this study was to investigate the effect of recombinant human bone morphogenetic protein(rhBMP-2) on the proliferation and osteoblastic differentiation of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts. The cell number and alkaline phosphatase activity were measured in 3 experimental groups of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts (control group, rhBMP-2 50ng/ml group, and rhBMP-2 100ng/ml group) at 1 and 2 weeks after culture. At the same time, total RNA of cultured cells were extracted and reverse trascription polymerase chain reaction(RT-PCR) was performed to determine the expression of mRNA of bone matrix protein. RhBMP-2 had no effect on the cell proliferation of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts. Alkaline phosphatase activity was elevated significantly by rhBMP-2 in both cells. And periodontal ligament cells showed significantly higher alkaline phosphatase activity than gingival fibroblasts. ${\beta}$-actin, type I collagen, alkaline phosphatase, BMP-2 mRNA were expressed in all of the samples. Osteopontin, osteocalcin mRNA were expressed in all periodontal ligament cell groups, and rhBMP-2 50ng/ml group, rhBMP-2 100ng/ml group of 2 week culture period of gingival fibroblasts. Bone sialoprotein mRNA was only expressed in rhBMP-2 50ng/ml group and rhBMP-2 100ng/ml group of 2-week culture period. These results suggest that rhBMP-2 stimulates osteoblastic differentiation in human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts in vitro.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.35
no.1
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pp.30-38
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2008
Dental pulp cells are assumed to possess the capacity to elaborate both bone and dentin matrix under the pathological conditions following tooth injury. The purpose of this study is to examine the effects of mineral trioxide aggregate (MTA) on various gene expression regarding dentinogenesis and cell viability assay in cultured primary human dental pulp cells. The author also examined the effects of this material on cellular alkaline phosphatase activity as a potential indicator of dentinogenesis. For gene expression on MTA, reverse transcriptase polymerase chain reaction was performed using primer sets of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, type I collagen, alkaline phosphatase(ALP), osteonectin, and dentin sialoprotein after 2 and 4 days. Cell viability assay showed that the proportion of MTA-treated pulp cells which had been exposed for 5 days to MTA was higher than that of the control cells. Among the genes investigated in this study, ALP and osteonectin(SPARC) were increased in MTA treated group than in control. These findings suggest that this dental pulp culture system may be useful in the future as a model for studying the mechanisms underlying dentin regeneration after the treatment with MTA. Exposure to MTA material would not induce cytotoxic response in the dental pulp cells. In addition, MTA could influence the behavior of human pulp cells by increasing the ALP activity and SPARC synthesis.
PURPOSE. The purpose of this study was to assess the surface characteristics and the biocompatibility of zirconium (Zr) coating on Ti-6Al-4V alloy surface by radio frequency (RF) magnetron sputtering method. MATERIALS AND METHODS. The zirconium films were developed on Ti-6Al-4V discs using RF magnetron sputtering method. Surface profile, surface composition, surface roughness and surface energy were evaluated. Electrochemical test was performed to evaluate the corrosion behavior. Cell proliferation, alkaline phosphatase (ALP) activity and gene expression of mineralized matrix markers were measured. RESULTS. SEM and EDS analysis showed that zirconium deposition was performed successfully on Ti-6Al-4V alloy substrate. Ti-6Al-4V group and Zr-coating group showed no significant difference in surface roughness (P>.05). Surface energy was significantly higher in Zr-coating group than in Ti-6Al-4V group (P<.05). No difference in cell morphology was observed between Ti-6Al-4V group and Zr-coating group. Cell proliferation was higher in Zr-coating group than Ti-6Al-4V group at 1, 3 and 5 days (P<.05). Zr-coating group showed higher ALP activity level than Ti-6Al-4V group (P<.05). The mRNA expressions of bone sialoprotein (BSP) and osteocalcin (OCN) on Zr-coating group increased approximately 1.2-fold and 2.1-fold respectively, compared to that of Ti-6Al-4V group. CONCLUSION. These results suggest that zirconium coating on Ti-6Al-4V alloy could enhance the early osteoblast responses. This property could make non-toxic metal coatings on Ti-6Al-4V alloy suitable for orthopedic and dental implants.
Objective. To investigate the effects of the hypoxia inducible factor-1 (HIF-1) activation-mimicking agent cobalt chloride ($CoCl_2$) on the osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells (hMSCs) and elucidate the underlying molecular mechanisms. Study design. The dose and exposure periods for $CoCl_2$ in hMSCs were optimized by cell viability assays. After confirmation of $CoCl_2$-induced HIF-$1{\alpha}$ and vascular endothelial growth factor expression in these cells by RT-PCR, the effects of temporary preconditioning with $CoCl_2$ on hMSC osteogenic differentiation were evaluated by RT-PCR analysis of osteogenic gene expression, an alkaline phosphatase (ALP) activity assay and by alizarin red S staining. Results. Variable $CoCl_2$ dosages (up to $500{\mu}M$) and exposure times (up to 7 days) on hMSC had little effect on hMSC survival. After $CoCl_2$ treatment of hMSCs at $100{\mu}M$ for 24 or 48 hours, followed by culture in osteogenic differentiating media, several osteogenic markers such as Runx-2, osteocalcin and osteopontin, bone sialoprotein mRNA expression level were found to be up-regulated. Moreover, ALP activity was increased in these treated cells in which an accelerated osteogenic capacity was also verified by alizarin red S staining. Conclusions. The osteogenic differentiation potential of hMSCs could be preserved and even enhanced by $CoCl_2$ treatment.
Nuclear factor I-C (NFI-C) null mice demonstrated aberrant odontoblast differentiation and abnormal dentin formation. In order to elucidate the mechanisms responsible for these changes, we evaluated the expression of dentin matrix gene after over-expression and inactivation of NFI-C in MDPC-23 cells by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Collagen type I (Col I), osteocalcin (OC), and dentin sialophosphoprotein (DSPP) expression was decreased after inactivation of NFI-C. However, bone sialoprotein (BSP) expression was dramatically increased after inactivation of NFI-C. ALP and DMP4 expression was not changed after inactivation of NFI-C. The expression of alkaline phoshatase (ALP) and dentin matrix protein 4 (DMP4) was increased after over-expression of NFI-C, while Col I, OC, DSPP, and BSP expression was decreased. These findings suggest that odontoblasts after loss of NFI-C lost the phenotype of odontoblasts and acquired those of osteoblasts.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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