Background: KG-135, a standardized formulation enriched with Rk1, Rg3, and Rg5 ginsenosides, has been shown to inhibit various types of cancer cells; however, the underlying mechanisms are not fully understood. In this study, we explored its effects in A549 human lung cancer cells to investigate the induction of Forkhead Class box O3a (FOXO3a) and autophagy. Methods: Cell viability was determined by sulforhodamine B staining. Apoptosis and cell cycle distribution were analyzed using flow cytometry. The changes of protein levels were determined using Western blot analysis. Autophagy induction was monitored by the formation of acidic vesicular organelles stained with acridine orange. Results: KG-135 effectively arrested the cells in G1 phase with limited apoptosis. Accordingly, a decrease of cyclin-dependent kinase-4, cyclin-dependent kinase-6, cyclin D1, and phospho-retinoblastoma protein, and an increase of p27 and p18 proteins were observed. Intriguingly, KG-135 increased the tumor suppressor FOXO3a and induced the accumulation of autophagy hallmark LC3-II and acidic vesicular organelles without an increase of the upstream marker Beclin-1. Unconventionally, the autophagy adaptor protein p62 (sequestosome 1) was increased rather than decreased. Blockade of autophagy by hydroxychloroquine dramatically potentiated KG-135-induced FOXO3a and its downstream (FasL) ligand accompanied by the cleavage of caspase-8. Meanwhile, the decrease of Bcl-2 and survivin, as well as the cleavage of caspase-9, were also drastically enhanced, resulting in massive apoptosis. Conclusion: Besides arresting the cells in G1 phase, KG-135 increased FOXO3a and induced an unconventional autophagy in A549 cells. Both the KG-135-activated extrinsic FOXO3a/FasL/caspase-8 and intrinsic caspase-9 apoptotic pathways were potentiated by blockade of autophagy. Combination of KG-135 and autophagy inhibitor may be a novel strategy as an integrative treatment for cancers.
Background: The phosphoinositide 3-kinase (PI3K)/Akt/mammalian target of rapamycin (mTOR) signaling axis has emerged as a novel target for cancer therapy. Agents that inhibit this pathway are currently under development for lung cancer treatment. In the present study, we have tested whether dual inhibition of PI3K/Akt/mTOR signaling can lead to enahnced antitumor effects. We have also examined the role of autophagy during this process. Methods: We analyzed the combination effect of the mTOR inhibitor, temsirolimus, and the Akt inhibitor, GSK690693, on the survival of NCI-H460 and A549 non-small cell lung cancer cells. Cell proliferation was determined by MTT assay and apoptosis induction was evaluated by flow cytometry and terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling assay. Autophagy induction was also evaluated by acridine orange staining. Changes of apoptosis or autophagy-related proteins were evaluated by western blot analysis. Results: Combination treatment with temsirolimus and GSK690693 caused synergistically increased cell death in NCI-H460 and A549 cells. This was attributable to increased induction of apoptosis. Caspase 3 activation and poly(ADP-ribose) polymerase cleavage accompanied these findings. Autophagy also increased and inhibition of autophagy resulted in increased cell death, suggesting its cytoprotective role during this process. Conclusion: Taken together, our results suggest that the combination of temsirolimus and GSK690693 could be a novel strategy for lung cancer therapy. Inhibition of autophagy could also be a promising method of enhancing the combination effect of these drugs.
Most patients with mutant B-Raf melanomas respond to inhibitors of oncogenic B-Raf but resistance eventually emerges. To better understand the mechanisms that determine the long-term responses of mutant B-Raf melanoma cells to B-Raf inhibitor, we used chronic selection to establish B-Raf (V600E) melanoma clones with acquired resistance to the new oncogenic B-Raf inhibitor UI-152. Whereas the parental A375P cells were highly sensitive to UI-152 ($IC_{50}$ < $0.5{\mu}M$), the resistant sub-line (A375P/Mdr) displayed strong resistance to UI-152 ($IC_{50}$ < $20{\mu}M$). Immunofluorescence analysis indicated the absence of an increase in the levels of P-glycoprotein multidrug resistance (MDR) transporter in A375P/Mdr cells, suggesting that resistance was not attributable to P-glycoprotein overexpression. In UI-152-sensitive A375P cells, the anti-proliferative activity of UI-152 appeared to be due to cell-cycle arrest at $G_0/G_1$ with the induction of apoptosis. However, we found that A375P/Mdr cells were resistant to the apoptosis induced by UI-152. Interestingly, UI-152 preferentially induced autophagy in A375P/Mdr cells but not in A375P cells, as determined by GFP-LC3 puncta/cell counts. Further, autophagy inhibition with 3-methyladenine (3-MA) partially augmented growth inhibition of A375P/Mdr cells by UI-152, which implies that a high level of autophagy may protect UI-152-treated cells from undergoing growth inhibition. Together, our data implicate high rates of autophagy as a key mechanism of acquired resistance to the oncogenic B-Raf inhibitor, in support of clinical studies in which combination therapy with autophagy targeted drugs is being designed to overcome resistance.
Wound healing is delayed in diabetic patients. Increased apoptosis and endothelial progenitor cell (EPC) dysfunction are implicated in delayed diabetic wound healing. Melatonin, a major secretory product of the pineal gland, promotes diabetic wound healing; however, its mechanism of action remains unclear. Here, EPCs were isolated from the bone marrow of mice. Treatment of EPCs with melatonin alleviated advanced glycation end product (AGE)-induced apoptosis and cellular dysfunction. We further examined autophagy flux after melatonin treatment and found increased light chain 3 (LC3) and p62 protein levels in AGE-treated EPCs. However, lysosome-associated membrane protein 2 expression was decreased, indicating that autophagy flux was impaired in EPCs treated with AGEs. We then evaluated autophagy flux after melatonin treatment and found that melatonin increased the LC3 levels, but attenuated the accumulation of p62, suggesting a stimulatory effect of melatonin on autophagy flux. Blockage of autophagy flux by chloroquine partially abolished the protective effects of melatonin, indicating that autophagy flux is involved in the protective effects of melatonin. Furthermore, we found that the AMPK/mTOR signaling pathway is involved in autophagy flux stimulation by melatonin. An in vivo study also illustrated that melatonin treatment ameliorated impaired wound healing in a streptozotocin-induced diabetic wound healing model. Thus, our study shows that melatonin protects EPCs against apoptosis and dysfunction via autophagy flux stimulation and ameliorates impaired wound healing in vivo, providing insight into its mechanism of action in diabetic wound healing.
Purpose: To investigate the anticancer effects and underlying mechanisms of parthenolide on HepG2 human hepatocellular carcinoma cells. Materials and Methods: Cell viability was assessed by MTT assay and cell apoptosis through DAPI, TUNEL staining and Western blotting. Monodansylcadaverin(MDC) and AO staining were used to detect cell autophagy. Cell proliferation was assessed by Ki67 immunofluorescence staining. Results: Parthenolide induced growth inhibition in HepG2 cells. DAPI and TUNEL staining showed that parthenolide could increase the number of apoptotic nuclei, while reducing the expression of the anti-apoptotic protein Bcl-2 and elevating the expression of related proteins, like p53, Bax, cleaved caspase9 and cleaved caspase3. Parthenolide could induce autophagy in HepG2 cells and inhibited the expression of proliferation-related gene, Ki-67. Conclusions: Parthenolide can exert anti-cancer effects by inducing cell apoptosis, activating autophagy and inhibiting cell proliferation.
Background: It is well established that mutations in the BRCA1 gene are a major risk factor for breast cancer. Induction of cancer cell death and inhibition of survival are the main principles of cancer therapy. In this context, autophagy may have dual roles in cancer, acting on the one hand as a tumor suppressor and on the other as a mechanism of cell survival that can promote the growth of established tumors. Therefore, understanding the role of autophagy in cancer treatment is critical. Moreover, defects in apoptosis, programmed cell death, may lead to increased resistance to chemotherapy. Purpose: The aim of the present study was to detect BRCA1 gene mutations in order to throw more light on their roles as risk factors for breast cancer in Egypt. Secondly the role of autophagy and apoptosis in determining response to a fluorouracil, doxorubicin, cyclophosphamide (FAC) regimen was investigated. Materials and Methods: Forty-five female breast cancer cases and thirty apparently healthy females were enrolled in the present study. Serum levels of autophagic biomarkers, Beclin 1 and LC3 as well as the serum levels of apoptosis biomarkers Bcl-2 and Caspase-3 were measured before and after chemotherapy. Results: BRCA1 mutations were found in 5 (16.7%) and 44 (99.8%) of the controls and cancer patients, the most frequent being 5382insC followed by C61G and 185 delAG. The results revealed that chemotherapy caused elevation in serum concentration levels of the autophagic biomarkers (Beclin 1 and LC3). This elevation was associated with a significant decrease in serum concentration levels of Bcl-2 and significant increase in caspase-3 concentration levels (apoptotic markers). Conclusions: The results of the present study indicate a very high level of BRCA mutations in breast cancer cases in Egypt and point to involvement of autophagic and apoptotic machinery activation in response to FAC chemotherapy.
Objective: To investigate the effects of gambogic acid (GA) on the growth of human malignant glioma cells. Methods: U251MG and U87MG human glioma cell lines were treated with GA and growth and proliferation were investigated by MTT and colony formation assays. Cell apoptosis was analyzed by annexin V FITC/PI flow cytometry, mitochondrial membrane potential assays and DAPI nuclear staining. Monodansylcadaverine (MDC) staining and GFP-LC3 localisation were used to detect autophagy. Western blotting was used to investigate the molecular changes that occurred in the course of GA treatment. Results: GA treatment significantly suppressed cell proliferation and colony formation, induced apoptosis in U251 and U87MG glioblastoma cells in a time- and dose-dependent manner. GA treatment also lead to the accumulation of monodansylcadaverine (MDC) in autophagic vacuoles, upregulated expressions of Atg5, Beclin 1 and LC3-II, and the increase of punctate fluorescent signals in glioblastoma cells pre-transfected with GFP-tagged LC3 plasmid. After the combination treatment of autophagy inhitors and GA, GA mediated growth inhibition and apoptotic cell death was further potentiated. Conclusion: Our results suggested that autophagic responses play roles as a self-protective mechanism in GA-treated glioblastoma cells, and autophagy inhibition could be a novel adjunctive strategy for enhancing chemotherapeutic effect of GA as an anti-malignant glioma agent.
The objective of this study was to examine the effects of high concentrations of glucose on porcine parthenotes developing in vitro. Addition of 55 mM glucose to the culture medium of embryos at the four-cell-stage significantly inhibited blastocyst formation, resulting in fewer cells in blastocyst-stage embryos and increased levels of apoptosis and autophagy compared to control. Quantitative reverse transcriptase (RT) PCR analysis revealed that the expression of pro-apoptotic genes (Caspase 3, Bax and Bak) and autophagy genes (Atg6 and Atg8/Lc3) were increased significantly by the addition of 55 mM glucose to the culture medium compared to control. MitoTracker Green fluorescence revealed a decrease in the overall mitochondrial mass compared to control. However, the addition of 55 mM glucose had no effect on mRNA expression of the nuclear DNA-encoded mitochondrial-related genes, cytochrome oxidase (Cox) 5a, Cox5b and Cox6b1. These results suggest that hyperglycemia reduced the mitochondrial content of porcine embryos developing in vitro and that this may hinder embryonic development to the blastocyst stage and embryo quality by increasing apoptosis and autophagy in these embryos.
Autophagy is a complex signaling process and has been implicated in tumor suppression and anticancer therapy resistance. Autophagy can produce tumor-suppressive effect by inducing autophagic cell death, either in collaboration with apoptosis. In this current study, we found that celecoxib (CCB), a nonsteroidal anti-inflammatory drug (NSAID) with multifaceted effects, induced autophagy including enhanced LC3 conversion (LC3-I to LC3-II) and reduced autophagy substrate protein p62 level in multidrug-resistant (MDR) cancer cells. CCB sensitized human multidrug resistant (MDR) cancer cells to the ansamycin-based HSP90 inhibitor 17-allylamino-17-demethoxygeldanamycin (17-AAG), a benzoquinoid ansamycin, which causes the degradation of several oncogenic and signaling proteins, by inducing autophagic cell death and apoptosis. CCB significantly augmented 17-AAG-mediated level of LC3-II/LC-I, indicating the combined effect of 17-AAG and CCB on the induction of autophagy. Autophagic degradation of mutant p53 (mutp53) and activation of caspase-3 in 17-AAG-treated MDR cells were accelerated by CCB. Inhibition of caspase-3-mediated apoptotic pathway by Z-DEVD-FMK, a caspase-3 inhibitor, did not completely block CCB-induced cell death in MCF7-MDR cells. In addition, treatment of MDR cells with Z-DEVD-FMK failed to prevent activation of autophagy by combined treatment with 17-AAG and CCB. Based on our findings, the ability of clinically used drug CCB to induce autophagy has important implications for its development as a sensitizing agent in combination with Hsp90 inhibitor of MDR cancer.
Oxidative stress induces apoptosis in many cellular systems including glioblastoma cells, with caspase-8 activation was regarded as a major contribution to $H_2O_2$-induced cell death. This study focused on the role of the autophagic protein p62 in $H_2O_2$-induced apoptosis in U87MG cells. Oxidative stress was applied with $H_2O_2$, and cell apoptosis and viability were measured with use of caspase inhibitors or autophagic mediators or siRNA p62, GFP-p62 and GFP-p62-UBA (del) transfection. We found that $H_2O_2$-induced U87MG cell death was correlated with caspase-8. To understand the role of p62 in MG132-induced cell death, the levels of p62/SQSTM1 or autophagy in U87MG cells were modulated with biochemical or genetic methods. The results showed that the over-expression of wild type p62/SQSTM1 significantly reduced $H_2O_2$ induced cell death, but knockdown of p62 aggravated the process. In addition, inhibition of autophagy promoted p62 and active caspase-8 increasing $H_2O_2$-induced apoptosis while induction of autophagy manifested the opposite effect. We further demonstrated that the function of p62/SQSTM1 required its C-terminus UBA domain to attenuate $H_2O_2$ cytotoxity by inhibition of caspase-8 activity. Our results indicated that p62/SQSTM1 was a potential contributor to mediate caspase-8 activation by autophagy in oxidative stress process.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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