Rosas-Garcia, Ninfa M.;Avalos-de-Leon, Osvaldo;Villegas-Mendoza, Jesus M.;Mireles-Martinez, Maribel;Barboza-Corona, J.E.;Castaneda-Ramirez, J.C.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제24권11호
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pp.1495-1502
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2014
Metarhizium anisopliae is a widely studied model to understand the virulence factors that participate in pathogenicity. Proteases such as subtilisin-like enzymes (Pr1) and trypsin-like enzymes (Pr2) are considered important factors for insect cuticle degradation. In four M. anisopliae strains (798, 6342, 6345, and 6347), the presence of pr1 and pr2 genes, as well as the enzymatic activity of these genes, was correlated with their virulence against two different insect pests. The 11 pr1 genes (A, B, C, D, E, F, G, H, I, J, and K) and pr2 gene were found in all strains. The activity of individual Pr1 and Pr2 proteases exhibited variation in time (24, 48, 72, and 96 h) and in the presence or absence of chitin as the inductor. The highest Pr1 enzymatic activity was shown by strain 798 at 48 h with chitin. The highest Pr2 enzymatic activity was exhibited by the 6342 and 6347 strains, both grown with chitin at 24 and 48 h, respectively. Highest mortality on S. exigua was caused by strain 6342 at 48 h, and strains 6342, 6345, and 6347 caused the highest mortality 7 days later. Mortality on Prosapia reached 30% without variation. The presence of subtilisin and trypsin genes and the activity of these proteases in M. anisopliae strains cannot be associated with the virulence against the two insect pests. Probably, subtilisin and trypsin enzyme production is not a vital factor for pathogenicity, but its contribution is important to the pathogenicity process.
Fibrinolytic proteases, piscivorase I (PI) and piscivorase II (PII), were isolated from Agkistrodon piscivorus piscivorus (eastern cotonmouth moccasin) venom using gel filtration on Bio-Gel P100 and ion-exchange chromatography on CM-Sepharose. The molecular welghts of two proteases were approximately 23400 and 29000. Their isoelectric points 6.6 and 8.5, respectively. The partial amino acid sequences of PI were characterized by tryptic digestion. PI readily cleaves the A${\alpha}$-and B${\beta}$-chaln of fibronogen, but PII rapidly cleaves A${\alpha}$-chain and more slowly the B${\beta}$-chain, They were activated by Ca$\^$2+/, Mg$\^$2+/ and Ba$\^$2+/, but inhibited by Zn$\^$2+/, Cu$\^$2+/ and Mn$\^$2+/. Two enzymes were also inhibited by cysten, ${\beta}$-mercapto -ethanol, and by metal chelators such as EDTA and EGTA, but not by benzamidine, PMSF, soybean trypsin inhibitor and aprotinin. They did not act like thrombin, plasmin and kallikrein, using specific chromogenllc substrates. Two protease did not induce platelet aggregation. PI showed low hemorrhagic activity at dosage of 50 $\mu\textrm{g}$.
Lactococcus lactis NK34, isolated from jeotgal (Korean traditional fermented fish), produces bacteriocin against bovine mastitis pathogens such as Staphylococcus aureus 7, S. aureus 8, Staphylococcus chromogenes 10, S. chromogenes 19, Staphylococcus hominis 9, Streptococcus uberis E290, Enterococcus faecium E372, Streptococcus agalactiae ATCC 13813, Pseudonocardia autotrophia KCTC 9455, and Staphylococcus simulans 78. Lacticin NK34 was inactivated by protease XIV but not by protease IX, protease XIII, proteinase K, $\acute{a}$-chymotrypsin, trypsin, and pepsin. Also, lacticin NK34 was stable over a pH range of 2 to 9 for 4 hr and withstood exposure to temperatures of 30-$100^{\circ}C$ for 30 min. Lacticin NK34 showed bactericidal effects against S. simulans 78. This bacteriocin was purified using ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography, ultrafiltration, and hydrophobic chromatography. Tricin-SDS-PAGE of purified bacteriocin gave the same molecular weight (3.5 kDa) as nisin. The gene encoding this bacteriocin was amplified by PCR using nisin gene-specific primers. It showed similar sequences to this nisin Z gene. These results indicate that lacticin NK34 is a nisin-like bacteriocin, and could be used as an antimicrobial alternative for livestock.
Transglutaminase from Streptomyces mobaraensis is an enzyme of unknown function that cross-links proteins to high molecular weight aggregates. Previously, we characterized two intrinsic transglutaminase substrates with inactivating activities against subtilisin and dispase. This report now describes a novel substrate that inhibits papain, bromelain, and trypsin. Papain was the most sensitive protease; thus, the protein was designated Streptomyces papain inhibitor (SPI). To avoid transglutaminase-mediated glutamine deamidation during culture, SPI was produced by Streptomyces mobaraensis at various growth temperatures. The best results were achieved by culturing for 30-50 h at $42^{\circ}C$, which yielded high SPI concentrations and negligibly small amounts of mature transglutaminase. Transglutaminasespecific biotinylation displayed largely unmodified glutamine and lysine residues. In contrast, purified SPI from the $28^{\circ}C$ culture lost the potential to be cross-linked, but exhibited higher inhibitory activity as indicated by a significantly lower $K_i$ (60 nM vs. 140 nM). Despite similarities in molecular mass (12 kDa) and high thermostability, SPI exhibits clear differences in comparison with all members of the wellknown family of Streptomyces subtilisin inhibitors. The neutral protein (pI of 7.3) shares sequence homology with a putative protein from Streptomyces lavendulae, whose conformation is most likely stabilized by two disulfide bridges. However, cysteine residues are not localized in the typical regions of subtilisin inhibitors. SPI and the formerly characterized dispase-inactivating substrate are unique proteins of distinct Streptomycetes such as Streptomyces mobaraensis. Along with the subtilisin inhibitory protein, they could play a crucial role in the defense of vulnerable protein layers that are solidified by transglutaminase.
한국산(韓國産) 대두(大豆) 4품종(品種)을 $25^{\circ}C$에서 1일(日)에서 7일(日)까지 자연발효(自然醱酵)시키며, 영양가와 효소활성의 변화 및 수분활성도(水分活性度)를 조사하고 식미검사(食味檢査)를 하였다. 대두(大豆)의 자연발효 중 pH는 6.48에서 3.93으로 떨어졌고, 적정산도는 0.3%에서 1.94%로 증가하였다. 또는 riboflavin, relative nutritive value, available lysine 함량(含量)은 각각 98에서 $309.4{\mu}g/$/100g D. B, 78.66에서 94.59%, 6.56에서 7.38mg/gN으로 상당한 증가를 나타내었다. 프로테아제(protease) 역가(力價)는 $2{\sim}3$일(日) 후 급격한 증가를 보였으며 리파아제(lipase) 역가도 거의 직선적으로 증가하였는데 반(反)하여 trypsin inhibitor와 리폭시게나아제(lipoxygenase)의 역가는 발효가 진행됨에 따라 현저하게 감소하였다. 발효대두의 등온흡습곡선(等溫吸濕曲線)을 실험에 의해 구하였고 발효에 의한 단백질 분해정도가 증가함에 따라 수분흡수능(水分吸收能)이 증가하였다. 발효대두를 이용하여 제조한 과자류 및 국수류의 식미검사 결과 성적이 양호하였으나 신맛의 개선이 요구되었고 5조의 농촌형식품(農村型食品)은 농민들의 좋은 반응을 얻었다.
동치미로부터 분리한 유산균 (68 균주) 중 Escherichia coli O157에 대한 항균 효과를 나타내는 균주는 Lactobacillus plantarum K11로 동정되었다. 분리균주 La. piantarum K11이 생산한 박테리오신의 항균 활성은 대수증식기 후반부에 12,800 BU/mL로 최대 활성에 이르렀다. 항균 활성은 pepsin, protease, proteinase K, papain, chymotrypsin 및 trypsin 처리에 의해 완전히 소실되었으나, catalase, ${\alpha}-amylase$, lysozyme 및 lipase에 의해서는 영향을 받지 않았으므로 단백질성 물질임을 확인하였다. 게다가, 이 활성은 pH 3.0-9.0의 조건하에서나 -20, 4 및 $25^{\circ}C$에서 30일간의 저장 동안에도 안정하였다. 또한 $100^{\circ}C$에서 30분간 가열처리에도 비교적 안정한 편이었고, chloroform이나 hexane 처리에도 활성에 변함이 없었다. 분리 균주의 박테리오신은 Bacillus spp., Listeria spp. 및 Staphylococcus spp. 등의 일부 식중독균의 억제효과는 나타나지 않았으나, Enterobacter aerogenes와 E. coli 등의 장내세균의 억제에는 효과적이었으며, 특히 640 BU/mL의 박테리오신 처리에 의해서 10시간 배양만에 E. coli O157이 완전하게 사멸되었다.
피부암의 형성과 피부 조직에서 나타나는 단백질 분해활성의 변화와의 상과관계를 조사하기 위하여, 쥐의 피부에 7,12-dimethylbenzanthracene과 photbor ester를 차례로 처리하였다. 이 결과, 암이 유발된 피부 조직에서는 대조군에 비하여 plasminogen Activator(PA)의 활성도는 약 3배가 높게 나타났다. 더우기, PA의 활성도는 암 유발전(proteolytic activity)의 조직에서도 약6배가 정도 증가하였다. 반면,casein과 insulin의 분해활성도는 암조직에서 현저히 감소되었고 anti-trypsin의 활성도는 대조군의 것과 거의 비슷하게 나타났다. 따라서, PA 및 PLP활성도의 증가현상은 피부암에서 특징적으로 나타나는 것으로 보이며, 이 암의 전이 및 침투에 밀접한 관계가 있는 것으로 사료된다.
Mitochondrial serine protease로 알려진 human HtrA2 (hHtrA2)는 apoptosis 유도 과정에서 중요한 역할을 담당하고 있을 뿐만 아니라 hHtrA2가 motor neuron degeneration과 관련이 있다는 최근 연구 결과가 있으나, hHtrA2의 생리적 기능은 아직 명확하게 밝혀져 있지 않다. 이와 같이 생체내에서 필수적인 업무를 담당하는 hHtrA2의 기능을 심도 있게 연구하기 위해서는 적절한 동물모델 시스템이 필요하나 이에 대한 연구도 미흡한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 hHtrA2의 기능 분석을 위한 기본적인 실험으로 zebrafish라는 동물모델을 선택하여 hHtrA2의 발현 시스템을 정립하였다. 먼저 zebrafish에 hHtrA2를 발현시키기 위하여 zebrafish에서 일반적으로 사용되는 발현 시스템인 pCS2+ vector에 hHtrA2와 GFP를 cloning하고 plasmid를 HEK293 cell에 transfection한 후, hHtrA2-GFP fusion 단백질의 발현을 immunoblot과 immunofluorescence staining assay로 확인한 바 약 64 kDa의 hHtrA2 단백질의 발현을 확인할 수 있었다. Zebrafish에서 hHtrA2-GFP fusion 단백질의 발현양상은 immunofluorescence microscope으로 확인하였다. hHtrA2-GFP DNA와 mRNA를 zebrafish embyro에 microinjection하여 두 가지 component의 발현을 비교 분석한 결과, DNA는 dot 형태로 mRNA는 몸 전체에 퍼져보이는 형태로 발현 양상의 차이는 있었으나 둘 다 zebrafish embryo에서 잘 발현되는 것을 알 수 있다. 다음 DNA를 주 component로 microinjection하여 zebrafish embryo에서 발현을 확인한 결과 hHtrA2는 72 hpf 까지 발현이 지속되는 것을 확인하였다. 본 연구에서 정립한 hHtrA2의 zebrafish 발현 조건은 앞으로 zebrafish에서 hHtrA2의 생리적 기능을 심도있고 정확하게 연구하는 데 있어 기본적인 자료로 활용 할 수 있을 것이다.
저염분 순치기간에 먹이를 섭취함으로서 얻을 수 있는 초기 유생의 생리적 변화는 다음과 같이 요약할 수 있다. 하루 동안의 순치기간에 염분농도에 따른 유생의 생존율은 차이를 보였지만 각 염분구간별 먹이섭취 유무에 따른 생존효과는 유사하였다. 그러나 먹이섭취 시 유생이 에너지원으로 활용할 수 있는 cholesterol, triglyceride의 증가가 있었으며 삼투압에 영향을 미칠 수 있는 glucose 농도가 유의적으로 증가하였다. 또한 저염분 순치기간 동안에 스트레스, 조직손상 및 대사작용의 지표가 되는 BUN과 creatine의 감소가 있었다. 먹이섭취로 인한 소화효소의 활성이 먹이를 섭취한 실험구 모두에서 증가하였다. 그러므로 유생발달과 함께 중요한 소화, 순환, 생식기관이 형성되며 탈피 성장을 위한 신진대사가 빠르게 진행되는 유생시기에 저염분 순치가 효율적으로 이루어져 향후 지속적인 성장을 유도하기 위해서는 먹이를 섭취하는 것이 더 효과적인 것으로 판단되었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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