T7 RNA polymerase is a single subunit RNA polymerase able to accomplish whole transcription process without auxiliary factors. In order to study transcription elongation mechanism of phage T7 RNA polymerse, stepwise walking of RNA polymerase was established by immobilizing biotinylated DNA template with streptavidin bead, series of active and stable elongation complexes were obtained, Transcripts were radio isotope labeled at the 16thm 17th and 18th nucleotide residues so stable elongation transcription complex of T7 RNA polymerase containing 22-40 nucleotide residues could be identified. We identified the positions of stablely formed transcription elongation complexes of termination site in intrinsic hairpin-independent PTH terminator sequence through the established stepwise walking of wild-type of mutant R173C T7 RNA polymerases. The results suggest that stable elongation transcription complexes were at the site of passing PTH terminator signal by mutant R173C RNA polymerase.
Dhar, Souvik;Kim, Jinkwon;Yoon, Eun Kyung;Jang, Sejeong;Ko, Kangseok;Lim, Jun
Molecules and Cells
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v.45
no.4
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pp.243-256
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2022
Transcriptional regulation, a core component of gene regulatory networks, plays a key role in controlling individual organism's growth and development. To understand how plants modulate cellular processes for growth and development, the identification and characterization of gene regulatory networks are of importance. The SHORT-ROOT (SHR) transcription factor is known for its role in cell divisions in Arabidopsis (Arabidopsis thaliana). However, whether SHR is involved in hypocotyl cell elongation remains unknown. Here, we reveal that SHR controls hypocotyl cell elongation via the transcriptional regulation of XTH18, XTH22, and XTH24, which encode cell wall remodeling enzymes called xyloglucan endotransglucosylase/hydrolases (XTHs). Interestingly, SHR activates transcription of the XTH genes, independently of its partner SCARECROW (SCR), which is different from the known mode of action. In addition, overexpression of the XTH genes can promote cell elongation in the etiolated hypocotyl. Moreover, confinement of SHR protein in the stele still induces cell elongation, despite the aberrant organization in the hypocotyl ground tissue. Therefore, it is likely that SHR-mediated growth is uncoupled from SHR-mediated radial patterning in the etiolated hypocotyl. Our findings also suggest that intertissue communication between stele and endodermis plays a role in coordinating hypocotyl cell elongation of the Arabidopsis seedling. Taken together, our study identifies SHR as a new crucial regulator that is necessary for cell elongation in the etiolated hypocotyl.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2005.04a
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pp.5-14
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2005
Recently, data from several groups have raised the concept of 'checkpoint' in transcription. As capping of nascent RNA transcript is tightly coupled to RNA polymerase II transcription, we seek to obtain direct evidence that transcripiton checkpoint via capping enzyme functions in this early regulatory step. One of temperature sensitive (ts) alleles of ceg1, a guanylyltransferase subunit of the Saccharomyces cerevisiaecapping enzyme, showed 6-azauracil (6AU) sensitivity at the permissive growth temperature, which is a phenotype that is correlated with a transcription elongational defect. This ts allele, ceg1-63 also has an impaired ability to induce PUR5 in response to a 6AU treatment. However, this cellular and molecular defect is not due to the preferential degradation of the transcript attributed from a lack of guanylyltransferase activity. On the contrary, the data suggests that the guanylyltransferase subunit of the capping enzyme plays a role in transcription elongation. First, in addition to the 6AU sensitivity, ceg1-63is synthetically lethal with elongation defective mutations of the largest subunit of RNA polymerase II. Secondly, it exhibited a lower GAL1 mRNA turn-over after glucoseshut off. Third, it decreased the transcription read through a tandem array of promoter proximal pause sites in an orientation dependent manner. Interestingly, this mutant also showed lower pass through a pause site located further downstream of the promoter. Taken together, these results suggest that the capping enzyme plays the role of an early transcription checkpoint possibly in the step of the reversion of repression by stimulating polymerase to escape from the promoter proximal arrest once RNA becomes appropriately capped.
Kim, Jin-A;Yun, Ju;Lee, Minsun;Kim, Youn-Sung;Woo, Jae-Chang;Park, Chung-Mo
Molecules and Cells
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v.19
no.3
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pp.334-341
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2005
Plants are sessile and rely on a wide variety of growth hormones to adjust growth and development in response to internal and external stimuli. We have identified a gene, designated NAN, encoding a basic helix-loop-helix (bHLH) transcription factor that regulates cell elongation and seed germination in plants. NAN has an HLH motif in its C-terminal region but does not have any other discernible homologies to bHLH proteins. A bipartite nuclear localization signal is located close to the HLH motif. An Arabidopsis mutant, nan-1D, in which NAN is activated by the insertion of the 35S enhancer, exhibits growth retardation with short hypocotyls and curled leaves. It is also characterized by reduced seed germination and apical hook formation, symptomatic of GA deficiency or disrupted GA signaling. The phenotypic effects of nan-1D were increased by treatment with paclobutrazol (PAC), an inhibitor of gibberellic acid (GA) biosynthesis. NAN is constitutively expressed throughout the life cycle. Our observations indicate that NAN has a housekeeping role in plant growth and development, particularly in seed germination and cell elongation, and that it may modulate GA signaling.
Escherichia coli protein Rho is required for the factor-dependent transcription termination by an RNA polymerase and is essential for the viability of the cell. It is a homohexameric protein that recognizes and binds preferably to C-rich sites in the transcribed RNA. Once bound to RNA, it utilizes RNA-dependent ATPase activity and subsequently ATPase-dependent helicase activity to unwind RNA-DNA hybrids and release RNA from a transcribing elongation complex. Studies over the past few decades have highlighted Rho as a molecule and have revealed much of its mechanistic properties. The recently solved crystal structure could explain many of its physiological functions in terms of its structure. Despite all these efforts, many of the fundamental questions pertaining to Rho recognition sites, differential ATPase activity in response to different RNAs, translocation of Rho along the nascent transcript, interactions with elongation complex and finally unwinding and release of RNA remain obscure. In the present review we have attempted to summarize 'the knowns' and 'the unknowns' of the Rho protein revealed by the recent developments in this field. An attempt has also been made to understand the physiology of Rho in the light of its phylogeny.
Histone acetylation and deacetylation play central roles in the regulation of chromatin structure and transcription by RNA polymerase II (RNA Pol II). Although Hda1 histone deacetylase complex (Hda1C) is known to selectively deacetylate histone H3 and H2B to repress transcription, previous studies have suggested its potential roles in histone H4 deacetylation. Recently, we have shown that Hda1C has two distinct functions in histone deacetylation and transcription. Histone H4-specific deacetylation at highly transcribed genes negatively regulates RNA Pol II elongation and H3 deacetylation at inactive genes fine-tunes the kinetics of gene induction upon environmental changes. Here, we review the recent understandings of transcriptional regulation via histone deacetylation by Hda1C. In addition, we discuss the potential mechanisms for histone substrate switching by Hda1C, depending on transcriptional frequency and activity.
As sessile organisms, plants must be able to adapt to the environment. Plants respond to the environment by adjusting their growth and development, which is mediated by sophisticated signaling networks that integrate multiple environmental and endogenous signals. Recently, increasing evidence has shown that a bHLH transcription factor PIF4 plays a major role in the multiple signal integration for plant growth regulation. PIF4 is a positive regulator in cell elongation and its activity is regulated by various environmental signals, including light and temperature, and hormonal signals, including auxin, gibberellic acid and brassinosteroid, both transcriptionally and post-translationally. Moreover, recent studies have shown that the circadian clock and metabolic status regulate endogenous PIF4 level. The PIF4 transcription factor cooperatively regulates the target genes involved in cell elongation with hormone-regulated transcription factors. Therefore, PIF4 is a key integrator of multiple signaling pathways, which optimizes growth in the environment. This review will discuss our current understanding of the PIF4-mediated signaling networks that control plant growth.
T7 RNA polymerase is a single subunit RNA polymerase able to accomplish whole transcription process without auxiliary factors. T7 phage lysozyme involcing in destruction of host cell wall repress T7 transcription and affects transcription termination process. Therefore expression vector pT7lys containing T7 phage lysozyme gene was constructed and expressed. T7 phage lysozyme protein was purified to homogeneity by Ni-NTA column chromatography. Also amidase activity of the purified lysozyme was identified. In order to understand the effect of the lysozyme on the sequence specific transcription termination. T7 transcription elongation complexes at the site rrnB T1 transcription termination signal were made in the presence the lysozyme. The results shows that the transcription elongation complexes are unstable in the presence of T7 phage lysozyme.
Kubinski, Konrad;Zielinski, Rafal;Hellman, Ulf;Mazur, Elzbieta;Szyszka, Ryszard
BMB Reports
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v.39
no.3
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pp.311-318
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2006
One of the biggest group of proteins influenced by protein kinase CK2 is formed by factors engaged in gene expression. Here we have reported recently identified yeast transcription elongation factor Elf1 as a new substrate for both monomeric and tetrameric forms of CK2. Elf1 serves as a substrate for both the recombinant CK2$\alpha$' ($K_m$ 0.38 ${\mu}M$) and holoenzyme ($K_m$$0.13\;{\mu}M$). By MALDI-MS we identified the two serine residues at positions 95 and 117 as the most probable in vitro phosphorylation sites. Co-immunoprecypitation experiments show that Elf1 interacts with catalytic ($\alpha$ and $\alpha$') as well as regulatory ($\beta$ and $\beta$') subunits of CK2. These data may help to elucidate the role of protein kinase CK2 and Elf1 in the regulation of transcription elongation.
mRNA quality is controlled by multiple RNA surveillance machineries to reduce errors during gene expression processes in eukaryotic cells. Nonsense-mediated mRNA decay (NMD) is a well-characterized mechanism that degrades error-containing transcripts during translation. The ATP-dependent RNA helicase up-frameshift 1 (UPF1) is a key player in NMD that is mostly prevalent in the cytoplasm. However, recent studies on UPF1-RNA interaction suggest more comprehensive roles of UPF1 on diverse forms of target transcripts. Here we used subcellular fractionation and immunofluorescence to understand such complex functions of UPF1. We demonstrated that UPF1 can be localized to the nucleus and predominantly associated with the chromatin. Moreover, we showed that UPF1 associates more strongly with the chromatin when the transcription elongation and translation inhibitors were used. These findings suggest a novel role of UPF1 in transcription elongation-coupled RNA machinery in the chromatin, as well as in translation-coupled NMD in the cytoplasm. Thus, we propose that cytoplasmic UPF1-centric RNA surveillance mechanism could be extended further up to the chromatin-associated UPF1 and co-transcriptional RNA surveillance. Our findings could provide the mechanistic insights on extensive regulatory roles of UPF1 for many cellular RNAs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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