Multivalent and multi-specific antibodies can provide valuable tools for bio-medical research, diagnosis and therapy. In antigen-antibody interactions, the avidity of antibodies depends on the affinity and the number of binding sites.$^1$ As artificial multivalent antibody agents, single chain Fv-streptavidin fusion tetramer proteins $(scFv-SA)_4$ have been previously tested.$^{1,\;2}$ Although, the Fab domain is known to be more stable than scFv in animal models,$^{3,\;4}$ it has never been used to make a multivalent agent with a streptavidin fusion. In this study, we prepared tetra-valent $(Fab-cSA)_4$ by fusing Fab with core streptavidin (cSA). This molecule was made using inclusion body production, refolding and chromatography purification. Affinities of the Fab-cSA tetramer and a scFv-cSA tetramer to a cell surface antigen were compared by ELISA using biotin-HRP. The Fab-cSA tetramer showed higher binding avidity than the scFv-cSA tetramer. The higher binding avidity of the Fab-cSA tetramer demonstrates its potential as a therapeutic agent for target-specific antibody therapy.
Shahryari, F.;Safarnejad, M.R.;Shams-Bakhsh, M.;Schillberg, S.;Nolke, G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제23권8호
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pp.1047-1054
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2013
Witches' broom of lime is a disease caused by Candidatus Phytoplasma aurantifolia, which represents the most significant global threat to the production of lime trees (Citrus aurantifolia). Conventional disease management strategies have shown little success, and new approaches based on genetic engineering need to be considered. The expression of recombinant antibodies and fragments thereof in plant cells is a powerful approach that can be used to suppress plant pathogens. We have developed a single-chain variable fragment antibody (scFvIMP6) against the immunodominant membrane protein (IMP) of witches' broom phytoplasma and expressed it in different plant cell compartments. We isolated scFvIMP6 from a naïve scFv phage display library and expressed it in bacteria to demonstrate its binding activity against both recombinant IMP and intact phytoplasma cells. The expression of scFvIMP6 in plants was evaluated by transferring the scFvIMP6 cDNA to plant expression vectors featuring constitutive or phloem specific promoters in cassettes with or without secretion signals, therefore causing the protein to accumulate either in the cytosol or apoplast. All constructs were transiently expressed in Nicotiana benthamiana by agroinfiltration, and antibodies of the anticipated size were detected by immunoblotting. Plant-derived scFvIMP6 was purified by affinity chromatography, and specific binding to recombinant IMP was demonstrated by enzyme-linked immunosorbent assay. Our results indicate that scFvIMP6 binds with high activity and can be used for the detection of Ca. Phytoplasma aurantifolia and is also a suitable candidate for stable expression in lime trees to suppress witches' broom of lime.
Kim, Yu-Jin;Neelamegam, Rameshkumar;Heo, Mi-Ae;Edwardraja, Selvakumar;Paik, Hyun-Jong;Lee, Sun-Gu
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제18권6호
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pp.1186-1190
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2008
Single-chain Fv (scFv) antibody against c-Met is expected to be employed in clinical treatment or imaging of cancer cells owing to the important biological roles of c-Met in the proliferation of malignancies. Here, we show that the productivity of scFv against c-Met in Escherichia coli is significantly influenced by the orientation of its variable domains. We generated anti-c-Met scFv antibodies with two different domain orders (i.e., $V_L$-linker-$V_H$ and $V_H$-linker-$V_L$), expressed them in the cytoplasm of E. coli trx/gor deleted mutant, and compared their specific activities as well as their productivities. Productivity of total and functional anti-c-Met scFv with $V_H/V_L$ orientation was more than five times higher than that with $V_L/V_H$ format. Coexpression of DsbC enhanced the yield of soluble amounts of anti-c-Met scFv protein for both constructs. The purified scFv antibodies of the two different formats exhibited almost the same antigen-binding activities. We also compared the productivities and specific activities of anti-c-Met diabodies with $V_H/V_L$ or $V_L/V_H$ formats and obtained similar results to the case of scFv antibodies.
The combination of rabies immunoglobulin (RIG) with a vaccine is currently effective against rabies infections, but improvements are needed. Genetic engineering antibody technology is an attractive approach for developing novel antibodies to replace RIG. In our previous study, a single-chain variable fragment, scFv57R, against rabies virus glycoprotein was constructed. However, its inherent weak stability and short half-life compared with the parent RIG may limit its diagnostic and therapeutic application. Therefore, an acidic tail of synuclein (ATS) derived from the C-terminal acidic tail of human alpha-synuclein protein was fused to the C-terminus of scFv57R in order to help it resist adverse stress and improve the stability and half-life. The tail showed no apparent effect on the preparation procedure and affinity of the protein, nor did it change the neutralizing potency in vitro. In the ELISA test of molecular stability, the ATS fusion form of the protein, scFv57R-ATS, showed an increase in thermal stability and longer half-life in serum than scFv57R. The protection against fatal rabies virus challenge improved after fusing the tail to the scFv, which may be attributed to the improved stability. Thus, the ATS fusion approach presented here is easily implemented and can be used as a new strategy to improve the stability and half-life of engineered antibody proteins for practical applications.
Background: Therapeutic approaches using monoclonal antibodies (mAbs) against complement regulatory proteins (CRPs:i.e.,CD46,CD55 and CD59) have been reported for adjuvant cancer therapy. In this study, we generated a recombinant 1E8 single-chain anti-CD59 antibody (scFv-Fc) and tested anti-cancer effect.by using complement dependent cytotoxicity (CDC). Methods: We isolated mRNA from 1E8 hybridoma cells and amplified the variable regions of the heavy chain (VH) and light chain (VL) genes using reversetranscriptase polymerase chain reaction (RT-PCR). Using a linker, the amplified sequences for the heavy and light chains were each connected to the sequence for a single polypeptide chain that was designed to be expressed. The VL and VH fragments were cloned into the pOptiVEC-TOPO vector that contained the human CH2-CH3 fragment. Then, 293T cells were transfected with the 1E8 single-chain Fv-Fc (scFv-Fc) constructs. CD59 expression was evaluated in the prostate cancer cell lines using flow cytometry. The enhancement of CDC effect by mouse 1E8 and 1E8 scFv-Fc were evaluated using a cytotoxicity assay. Results: The scFv-Fc constructs were expressed by the transfected 293T cells and secreted into the culture medium. The immunoreactivity of the secreted scFv-Fc construct was similar to that of the mouse 1E8 for CCRF-CEM cells. The molecular masses of 1E8 scFv-Fc were about 120 kDa and 55 kDa under reducing and non-reducing conditions, respectively. The DNA sequence of 1E8 scFv-Fc was obtained and presented. CD59 was highly expressed by the prostate cancer cell line. The recombinant 1E8 scFv-Fc mAb revealed significantly enhanced CDC effect similar with mouse 1E8 for prostate cancer cells. Conclusion: A 1E8 scFv-Fc construct for adjuvant cancer therapy was developed.
The non-viral delivery of genes into macrophages, known as hard-to-transfect cells, is a challenge. In this study, the microporation of a CpG-free and small plasmid (pCGfd-GFP) showed high transfection efficiency, sustainable transgene expression, and good cell viability in the transfections of Raw 264.7 and primary bone marrow-derived macrophages. The non-viral method using the pCGfd vector encoding anti-EGFR single-chain Fv fused with Fc (scFv-Fc) generated the macrophages secreting anti-EGFR scFv-Fc. These macrophages effectively phagocytized tumor cells expressing EGFR through the antibody-dependent mechanism, as was proved by experiments using EGFR-knockout tumor cells. Finally, peri-tumoral injections of anti-EGFR scFv-Fc-secreting macrophages were shown to inhibit tumor growth in the xenograft mouse model.
An antibody containing a genetically engineered lipid group at the N-termunus and a hexahistidinyl tag at the C-terminus (Lpp-scF-His6) was immobilized in an oriented manner on the surface of liposome. Liposomes, consisting of antibody and phosphatidyl-choline, have been prepared and imaged by AFM. For AFM visualization, the resulting liposomes were bound on the surface of mica by two different mechanisms. The histidine tags present in the antibody molecules of the immonuliposome were anchored to the NiCl2 treated mica surface. Alternatively, the immunoliposomes were immunochemically bound on antigen-coated mica surface. Both approaches yielded liposomes which were clearly imaged without damage by AFM in ambient condition.
The single-chain variable fragment (scFv) against lectin-like oxidized low-density lipoprotein receptor-1 (LOX-1) is a promising molecule for its potential use in the diagnosis and immunotherapy of atherosclerosis. Producing this scFv in several milligram amounts could be the starting point for further engineering and application of the scFv. In this study, the abundant expression of the anti-LOX-1 scFv was attempted using Escherichia coli (E. coli) and Brevibacillus choshinensis (B. choshinensis). The scFv had limited soluble yield in E. coli, but it was efficiently secreted by B. choshinensis. The optimized fermentation was determined using the Plackett-Burman screening design and response surface methodology, under which the yield reached up to 1.5 g/l in a 5-L fermentor. Moreover, the properties of the scFvs obtained from the two expression systems were different. The antigen affinity, transition temperature, and particle diameter size were 1.01E-07 M, $55.2{\pm}0.3^{\circ}C$, and 9.388 nm for the scFv expressed by B. choshinensis, and 4.53E-07 M, $52.5{\pm}0.3^{\circ}C$, and 13.54 nm for the scFv expressed by E. coli. This study established an efficient scale-up production methodology for the anti-LOX-1 scFv, which will boost its use in LOX-1-based therapy.
Jafarzade, M.;Ramezani, M.;Hedayati, F.;Mokhtarzade, Z.;Zare, B.;Sabet, M.S.;Norouzi, P.;Malboobi, M.A.
The Plant Pathology Journal
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제35권6호
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pp.692-697
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2019
Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of sugar beet hairy roots expressing single-chain variable fragment (scFv) was exploited to evaluate the efficacy of four antibody-based constructs for interfering with the Beet necrotic yellow vein virus infection. The scFv specific to a major coat protein of virus, p21, was targeted to various cellular compartments including the cytosol (pIC and pICC constructs), apoplast (pIA), and mitochondrion (pIM). After mechanical virus inoculation, most of the hairy root clones expressing scFv in the cytosol displayed low virus titers while the majority of transgenic hairy root clones accumulated antibody in outer membrane of mitochondria or apoplast were infected. This hairy root system provided an efficient and rapid approach to initially investigating root disease resistance like rhizomania prior to transform whole recalcitrant plants such as sugar beet.
한국미생물학회 2008년도 International Meeting of the Microbiological Society of Korea
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pp.62-64
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2008
A major hurdle to the development of RNA interference as therapy for HIV infection is the delivery of siRNA to T lymphocytes which are difficult cells to transfect even in vitro. We have employed a single chain antibody to the pan T cell surface antigen CD7 was conjugated to an oligo-9-arginine peptide (scFvCD7-9R) for T cell-specific siRNA delivery in NOD/SCIDIL2${\gamma}$-/- mice reconstituted with human peripheral blood lymphocytes (Hu-PBL). Using a novel delivery, we first show that scFvCD7-9R efficiently delivered CD4 siRNA into human T cells in vitro. In vivo administration to Hu-PBL mice resulted in reduced levels of surface CD4 expression on T cells. Mice infected with HIV-1 and treated on a weekly basis with scFvCD7-9R-siRNA complexes targeting a combination of viral genes and the host coreceptor molecule CCR5 successfully maintained CD4/CD3 T cell ratios up to 4 weeks after infection in contrast to control mice that displayed a marked reduction in CD4 T cell numbers. p24 antigen levels were undetectable in 3 of the 4 protected mice. scFvCD7-9R/antiviral siRNA treatment also helped maintain CD4 T cell numbers with reduced plasma viral loads in Hu-PBL mice reconstituted with PBMC from donors seropositive for HIV, indicating that this method can contain viral replication even in established HIV infections. Our results show that scFvCD7-9R could be further developed as a potential therapeutic for HIV-1 infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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