In this study, the productivity of bioethanol obtained from various domestic raw materials (barley, brown rice, corn and sweet potato) by simultaneous saccharification and fermentation (SSF) process was estimated. Also, optimal conditions of temperature, time and enzyme concentration in gelatinization and liquefaction process were investigated. As a result, corn showed high ethanol yield of 90.45% and sweet potato had a rapid fermentation time. Productivity of bioethanol increases in accordance with the starch value of raw materials except brown rice. Therefore, it is very important to understand the structure of starch. Further studieson the characteristics of raw materials are necessary to enhance the productivity of bioethanol.
Kang, MinKyung;Kim, Minah;Yu, Bowan;Park, Joong Kon
Korean Chemical Engineering Research
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v.51
no.6
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pp.709-715
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2013
The waste from beer fermentation broth (WBFB) has been found an excellent and inexpensive resource for bioethanol production. We tried to evaluate the saccharification and fermentation capabilities of WBFB to confirm its effectiveness for bioethanol production. The saccharification potentials of the WBFB were evaluated at various temperatures (30, 40, 50, 60 and $70^{\circ}C$). It was found that the saccharification capabilities increased with temperature and highest reached maximum at $60^{\circ}C$ and $70^{\circ}C$ after 4h. Ethanol production from a mixture of WBFB and chemically defined media (CDM) without addition of any microbial species confirmed the fermentation capabilities of WBFB. Simultaneous saccharification and fermentation were performed using WBFB, starch solution and CDM as culturing media. The maximum yield of bioethanol production was obtained at $30^{\circ}C$. The saccharifying enzymes and the yeast cells present in WBFB were essential factors for the production of bioethanol from WBFB without any additional enzymes or microbial cells.
Ethanol production by the simultaneous saccharification and fermentation (SSF) of low-value rice wine cake (RWC) without cooking was investigated. RWC is the filtered solid waste of fermented rice wine mash and contains 53% raw starch. For the SSF, the RWC slurry was mixed with the raw-starch-digesting enzyme of Rhizopus sp. and yeast, where the yeast strain was selected from 300 strains and identified as Saccharomyces cerevisiae KV25. The highest efficiency (94%) of ethanol production was achieved when the uncooked RWC slurry contained 23.03% starch. The optimal SSF conditions were determined as 1.125 units of the raw-starch-digesting enzyme per gram of RWC, a fermentation temperature of $30^{\circ}C$, slurry pH of 4.5, 36-h-old seeding culture, initial yeast cell number of $2{\times}10^7$ per ml of slurry, 17 mM of urea as the nitrogen additive, 0.25 mM of $Cu^{2+}$ as the metal ion additive, and a fermentation time of 90 h. Under these optimal conditions, the ethanol production resulting from the SSF of the uncooked RWC slurry was improved to 16.8% (v/v) from 15.1% (v/v) of pre-optimization.
A mathematical model is proposed that can depict the kinetics of simultaneous saccharification and fermentation (SSF) using steam-exploded wood(SEW) with a glucose- and cellobiose-fermenting yeast strain. Brettanomyces custersii. An expression to describe the reduction of the relative digestibility during the hydrolysis of the SEW is introduced in the hydrolysis model. The fermentation model also takes two new factors into account, that is, the effects of the inhibitory compounds present in the SEW hydrolysates on the microorganism and the fermenting ability of Brettanomyces custersii, which can use both glucose and cellobiose as carbon sources. The model equations were used to simulate the hydrolysis of the SEW, the fermentation of the SEW hydrolysates, and a batch SSF, and the results were compared with the experimental data. The model was found to be capable of representing ethanol production over a range of substrate concentrations. Accordingly, the limiting factors in ethanol production by SSF under the high concentration of the SEW were identified as the effect of inhibitory compounds present in the SEW, the enzyme deactivation, and a limitation in the digestibility based on the physical condition of the substrate.
Until recently, four types of cellobiose-fermenting Saccharomyces cerevisiae strains have been developed by introduction of a cellobiose metabolic pathway based on either intracellular β-glucosidase (GH1-1) or cellobiose phosphorylase (CBP), along with either an energy-consuming active cellodextrin transporter (CDT-1) or a non-energy-consuming passive cellodextrin facilitator (CDT-2). In this study, the ethanol production performance of two cellobiose-fermenting S. cerevisiae strains expressing mutant CDT-2 (N306I) with GH1-1 or CBP were compared with two cellobiose-fermenting S. cerevisiae strains expressing mutant CDT-1 (F213L) with GH1-1 or CBP in the simultaneous saccharification and fermentation (SSF) of cellulose under various conditions. It was found that, regardless of the SSF conditions, the phosphorolytic cellobiose-fermenting S. cerevisiae expressing mutant CDT-2 with CBP showed the best ethanol production among the four strains. In addition, during SSF contaminated by lactic acid bacteria, the phosphorolytic cellobiose-fermenting S. cerevisiae expressing mutant CDT-2 with CBP showed the highest ethanol production and the lowest lactate formation compared with those of other strains, such as the hydrolytic cellobiose-fermenting S. cerevisiae expressing mutant CDT-1 with GH1-1, and the glucose-fermenting S. cerevisiae with extracellular β-glucosidase. These results suggest that the cellobiose-fermenting yeast strain exhibiting low energy consumption can enhance the efficiency of the SSF of cellulosic biomass.
Brettanomyces custersii CBS 5512 which has reported as a thermotolerant glucose-cellobiose co-fermentable yeast strain was mutated with UV and NTG to improve ethanol yield at higher than 4$0^{\circ}C$ B. custersii H1-23, H1-39, H1-55 and H1062 were finally selected for hyper-fermentable strains at higher than 4$0^{\circ}C$ from thermotolerant 7510 colonies through 5th selection. Among the selected strains, H1-39 mutant had better fermentability at 4$0^{\circ}C$ and 43$^{\circ}C$ from different concentrations of glucose. H1-39 and H1-23 mutants yielded more than 70% of the theoretical ethanol yield in 4 and 8% mixed sugars at above 4$0^{\circ}C$, which was 5-11% higher than those by original strain. Especially, H1-39 mutant had better fermentability in 4% mixed sugar. It showed 78.5% of the theoretical yield at 4$0^{\circ}C$ and 72.2% of the theoretical yield at 43$^{\circ}C$. On the other hand, theoretical yield of ethanol by H1-39 mutant in 8% mixed sugar at 4$0^{\circ}C$ and 43$^{\circ}C$ were 75.2% and 70.2%, respectively. Theses values increased up to 7-11% as compared to those by orginal strain. By the simultaneous saccharification and fermentation, ethanol production by H1-39 mutant increased up to more than 23% as compared to that by original strain.
In this study, we determined optimal conditions for simultaneous saccharification and fermentation (SSF) using corncob biomass pretreated with oxalic acid. The effect of SSF temperature ($25.8{\sim}34.2^{\circ}C$) and agitation speed (80~220 rpm) were significant at a 99% confidence level in its effect on ethanol production. The highest ethanol production was expected when SSF was performed at $30^{\circ}C$, 170 rpm (22.5 g/L). The ethanol production was improved by mixture of yeast extract (1.25 g/L) and urea (1.25 g/L) as nitrogen source. However, addition of trace metal components and vitamin for SSF was not affected in the ethanol production. Optimal concentration of $KH_2PO_4$, $MgSO_4{\cdot}7H_2O$ for SSF was 1 g/L, 0.25 g/L respectively.
Bioethanol production from lignocellulose is considered as a sustainable biofuel supply. However, the low cellulose hydrolysis efficiency limits the cellulosic ethanol production. The cellulase is strongly inhibited by the major end product cellobiose, which can be relieved by the addition of ${\beta}$-glucosidase. In this study, three ${\beta}$-glucosidases from different organisms were respectively expressed in Saccharomyces cerevisiae and the ${\beta}$-glucosidase from Saccharomycopsis fibuligera showed the best activity (5.2 U/ml). The recombinant strain with S. fibuligera ${\beta}$-glucosidase could metabolize cellobiose with a specific growth rate similar to the control strain in glucose. This recombinant strain showed higher hydrolysis efficiency in the cellulose simultaneous saccharification and fermentation, when using the Trichoderma reesei cellulase, which is short of the ${\beta}$-glucosidase activity. The final ethanol concentration was 110% (using Avicel) and 89% (using acid-pretreated corncob) higher than the control strain. These results demonstrated the effect of ${\beta}$-glucosidase secretion in the recombinant S. cerevisiae for enhancing cellulosic ethanol conversion.
In this study of the simultaneous saccharification and fermentation (SSF) of paper sludge, fed-batch cultivation of Lactobacillus paracasei subsp. paracasei KLB58 was attempted to produce viable KLB58 cells and lactic acid. Optimal culture conditions, including the temperature and concentration of the supplemented enzyme, were examined in terms of lactic acid production and viable cell count. When the effects of culture temperature and $\beta$-glucosidase concentration were examined in fed-batch SSF, the highest viable cell counts and lactic acid production (i.e. 5$\times$$10^9$ CFU/ml and 45 g/L, respectively) were obtained at 37$^{\circ}C$ and 2 unit/ml of $\beta$-glucosidase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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