Iris dichotoma Pall. is an important endangered plant belonging to the family Iridaceae. A method was developed for the rapid micropropagation of I. dichotoma through plant regeneration from leaf, rhizome, and root explant-derived calli. Leaf, rhizome, and root segments were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2,4-D; $0-3.0mg{\cdot}L^{-1}$) for callus induction. Callus production was highest at $1.0mg{\cdot}L^{-1}$ 2,4-D, where 73.8% and 45.5% of cultured rhizome and root cuttings, respectively, produced calli. The viable calli were maintained at an induced concentration of 2,4-D ($3.0mg{\cdot}L^{-1}$). They were then transferred to MS medium supplemented with various concentrations of 2,4-D ($0-3.0mg{\cdot}L^{-1}$) in combination with 6-benzyladenine (BA: 0, 1.0 and $3.0mg{\cdot}L^{-1}$) for adventitious shoot regeneration. The addition of a low concentration of 2,4-D into BA-containing medium significantly increased the frequency of shoot regeneration in leaf, rhizome, and root-derived calli. The highest number of adventitious shoots (26.4 per callus) formed at $0.5mg{\cdot}L^{-1}$ 2,4-D and 1.0 mg/l BA. For rooting of the shoots, half- strength MS medium supplemented with different concentrations of indole 3-butyric acid (IBA) $0-3.0mg{\cdot}L^{-1}$ was tested. The optimal results were observed using half-strength MS medium supplemented with $1.0mg{\cdot}L^{-1}$ IBA, on which 98% of the regenerated shoots developed roots with an average of 3.5 roots per shoot within 45 days. The plantlets raised in vitro were acclimatized and transferred to soil with 95% success. This in vitro propagation protocol will be useful for conservation and mass propagation of this endangered plant.
Twenty-eight of 44 Indian Ceropegia species are endemic and their survival is threatened. As a step towards conservation, we implied in vitro methods for the sustainable propagule production in C. hirsuta, C. lawii, C. maccannii, C. oculata and C. sahyadrica. Effects of explant, growth regulators, sucrose and photoperiod were studied. High frequency microtuber production was achieved with the seedling-apical buds, grown on MS medium containing 4-6 mg $1^{-1}$ BAP, 3-8% (w/v) sucrose, under continuous illumination. Each microtuber, when subcultured proliferated to form a cluster of secondary microtubers. Every primary and secondary microtuber bore at least one shoot-bud and a root primordium. Each tuber (formed with any of the significantly effective treatments) weighed more than 500 mg, enough to plant directly in non-sterilized soils. Microtubers could be produced and proliferated round the year. Proliferation could be solely attributed to in vitro procedures as these plants bear solitary tubers in vivo. Microtubers could be sprouted in vitro to prepare ready to pot plantlets. As, this novel method succeeded for all five species, though they belong to different eco-physiological backgrounds, we recommend its implementation in the conservation programs for a broader range of Ceropegia species, supported by other integrated strategies.
Claudia Simoes;Alessandra S. Santos;Norma Albarello;Solange Faria Lua Figueiredo
Journal of Plant Biotechnology
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v.6
no.3
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pp.199-204
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2004
The medicinal value of the genus Cleome justifies bio-technological studies of Cleome rosea, a Brazilian annual species from sandy coastal ecosystems (restinga), which have been submitted to an intense process of antropogenic degradation. In the present work, was analyzed the influence of cytokinins, 6-benzyladenine (BA) and 6-furfurylaminopurine (kinetin) added to the Murashige and Skoog medium (MS), on the proliferation capacity of explants from the stem axis (hypocotyl, node and internode) for a period of five monthly subcultures (150 days). Regardless of the explant sources, plantlet regeneration by direct and indirect organogenesis was observed. The largest number of shoots proliferated through direct organogenesis was obtained on medium with 4.4 $\mu{M}$ BA. Also, the highest proliferation capacity through indirect organogenesis was found on medium with 4.4 $\mu{M}$ BA + 4.6 $\mu{M}$ kinetin. The presence of kinetin alone was not effective for multiplication of the species. Elongation and rooting were obtained when shoots were transferred onto growth regulator-free medium, and acclimatization rates from 70% to 81% were achieved depending on explant sources used. Plants were then successfully established in soil and showed normal phenotypes.
In order to micropropagate uniform plantlets of Philodendron cannifolium in vitro, the shoot tips were cultured on MS media supplemented with $0.5{\sim}10.0$ mg/L BA or $0.05{\sim}0.1$ mg/L thidiazuron(TDZ). The adventitious multi-bud clusters from basal part of shoots were formed on MS media containing $2.0{\sim}5.0$ mg/L BA or $0.05{\sim}0.1$ mg/L TDZ. But the shoots grown on MS media with TDZ showed necrosis by the lack of chlorophyll. The adventitious multi-bus clusters were cut into $5{\sim}7$ mm sections and cultured on MS media containing BA and TDZ for shoot proliferation. Shoots were proliferated vigorously on MS medium supplemented with $1.0{\sim}3.0$ mg/L BA with up to 30 shoots. But abnormally swollen hard calli were formed from basal parts of shoots on MS media with TDZ and high concentration of BA(10.0 mg/L). The proliferated shoots on same media also showed necrosis by the lack of chlorophyll. The shoot growth and rooting were favorable on MS media containing $0.5{\sim}2.0$ mg/L IBA. The rooted plantlets were acclimatizated effectively in soil mixed with perlite 1:vermiculite 1 or vermiculite alone. Fifteen mL of liquid medium containing 10 g/L activated charcoal and 30 g/L sucrose were added in same vessels after small shoots were proliferated to stimulate shoot growth and rooting. After 8 weeks in culture, the shoots were dipped into high concentration of IBA solution. and planted in soil mexed with perlite 1:vermiculite 1. The shoot growth and rooting were favorable in dipping treatments of $500{\sim}2,000$ ppm IBA solutions for 10 sec.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.28
no.3
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pp.171-176
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2008
Efficient plant regeneration system of birdsfoot trefoil (Lotus corniculatus L.) was development. The factors affecting the somatic embryo formation, its proliferation and regeneration capacity of leaf and stem explants of Empire cultivar was investigated. The highest number of somatic embryos was obtained on B5 medium supplemented with 1 mg/L NAA and 1 mg/L BA. Depending on different explants, highest frequency of embryogenic callus and regeneration were observed in Empire with leaf explants. The response from stem explants was slower and callus induction was less than that from leaf explants. Regenerated shoots formed complete plantlets in on 1/2 MS medium supplemented with 1 mg/L IBA. Regenerated plants were morphologically uniform with normal shape and growth pattern.
To establish the mass propagation system of Lavandula spica cv. Marino, shoot tip, node, internode and leaf segment cultures were carried out. RAPD was applied to detect the somaclonal variation. Callus induction was very high in the medium supplemented with 1 mg/l 2.4-D, 2 mg/l NAA. especially and combined with 0.05 mg/l BAP from leaves. Shoot formation was high with $2{\sim}4\;mg/l$ BAP or 4 mg/l BAP + 0.2 mg/l NAA from shoot tip. Shoot proliferation was 9.1 times in the $B_{5}$ medium with 0.5 mg/l BAP and 0.01 mg/l NAA. Root formation was improved in NAA, which was the concentration of 0.1 to 1 mg/l and 1 mg/l IAA. Nursery survival rate was enhanced over 90% and growth was looked good in the acclimation soil consisting of peatmoss : vermiculite : perlite (1:1:1, v:v:v). Randomly amplified polymorphic DNA banding patterns based on polymerase chain reaction (PCR) were used to assess the genetic variation in plants regenerated from in vitro culture.
An efficient and reproducible procedure for the large scale propagation of Hovenia dulcis Thunb. is described. Shoot primodia emerging from the leaf surface was induced from MS medium supplemented with NAA. Stem cuttings were suitable explants for multiple shoot proliferation. They produced axillary shoots which branched repeatedly, yielding an average of 7 shoots per explants after 4 weeks in culture, when cultured on a woody plant medium (WPM) containing 0.1mg/l BA and 0.1mg/l NAA. Stem, leaf and root segments from axenic seedlings were used as explant source to induce somatic embryogenesis. A high frequency of somatic embryos were induced directly from leaf in MS medium with NAA, 2,4-D and in medium containing NAA, 2,4-D with BA. Somatic embryos were germinated in MS medium supplemented with 1mg/ l $GA_3$. Somatic embryos proliferated secondary somatic embryos rapidly after transfer to MS medium supplemented with 1mg/ l kinetin, 1mg/ l $GA_3$ and 2% dextrose.
In order to investigate the effect of plant growth regulators on effective in vitro micropropagation, apical meristems of Pulsatilla cernua var. koreana were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium with 2,4-D, NAA, TDZ and BA. Media containing 2,4-D and kinetin, 2,4-D and TDZ, NAA and TDZ were not effective on callus induction. However, embryogenic or organogenic callus was obtained on media containing NAA and BA. Especially, on MS medium with 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA was optimal for a high frequency (62%) of shoot or shoot bud obtained from callus. Callus proliferation, shoot multiplication and elongation were significantly increased by adding 10% coconut water on MS media with 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA. Repeated subculturing of in vitro grown shoots resulted in propagation rate of 12.9 shoots per explant every 30 days. Root formation from the adventitious shoots was not easily achieved. However, roots were only produced through callus on MS medium with 2.0mg/L NAA alone or 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA. These roots were used materials for callus and shoot production repetitively.
Jaskani Muhammad J.;Raza H.;Khan M. M.;Kwon Sung W.
Journal of Plant Biotechnology
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v.6
no.4
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pp.247-252
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2004
In vitro cultures of watermelon were treated with antimitotic agent colchicine to induce ploidy alterations, particularly the induction of tetraploids. Explants cotyledon, embryonic end of seed, transverse sections of epicotyl and hypocotyl were cultured on MS media supplemented with BA ($1{\mu}M$) and colchicine ($0.01\%,\;0.05\%\;and\;0.1\%$). Explants were subcultured on colchicine free media after 4 and 7 days. Colchicine had negative effect on in vitro regeneration but this exhibited explants related response. However, hypocotyl section of seedlings induced maximum callus on $0.01\%$ colchicine. Shoot proliferation was more in cotyledon explants cultured on colchicine ($0.01\%$) for four days. Maximum root induction and root number were recorded in embryonic end explants. Overall, cotyledon and embryonic end explants, and low colchicine concentration ($0.01\%$) was found optimal in watermelon regeneration.
This study was carried out to investigate the optimal culture conditions for gametophytes growth and sporophytes regeneration of Pyrrosia linearifolia in order to provide for the masspropagation system foundation of Pyrrosia linearifolia using their life cycle. Among many different media, 2MS medium was most effective in prothallus proliferation. Prothallus growth was promoted as the total concentration of nitrogen sources increased, and the best result was observed on 120 mM nitrogen. The best concentration of sucrose was 3%. The addition of 5~20 mM IAA, NAA, BA and kinetin promoted the propagation of prothallus. But 2iP demonstrated the most inhibitory effect on prothallus proliferation. Gametophytes shaking-cultured with liquid medium showed similar growth with solid medium and normal formation of reproductive organs. Shoot regeneration was most effective on 1/8MS medium, but growth was promoted on 1/2MS medium. For promotion of shoot regeneration and growth, the suitable concentrations of sucrose and $NaH_2PO_4$ were 1% and $50{\sim}100mg{\cdot}mL^{-1}$ in 1/8MS medium, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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