Senescent cells that gradually accumulate during aging are one of the leading causes of aging. While senolytics can improve aging in humans as well as mice by specifically eliminating senescent cells, the effect of the senolytics varies in different cell types, suggesting variations in senescence. Various factors can induce cellular senescence, and the rate of accumulation of senescent cells differ depending on the organ. In addition, since the heterogeneity is due to the spatiotemporal context of senescent cells, in vivo studies are needed to increase the understanding of senescent cells. Since current methods are often unable to distinguish senescent cells from other cells, efforts are being made to find markers commonly expressed in senescent cells using bulk RNA-sequencing. Moreover, single-cell RNA (scRNA) sequencing, which analyzes the transcripts of each cell, has been utilized to understand the in vivo characteristics of the rare senescent cells. Recently, transcriptomic cell atlases for each organ using this technology have been published in various species. Novel senescent cells that do not express previously established marker genes have been discovered in some organs. However, there is still insufficient information on senescent cells due to the limited throughput of the scRNA sequencing technology. Therefore, it is necessary to improve the throughput of the scRNA sequencing technology or develop a way to enrich the rare senescent cells. The in vivo senescent cell atlas that is established using rapidly developing single-cell technologies will contribute to the precise rejuvenation by specifically removing senescent cells in each tissue and individual.
Hybrid capture-based targeted sequencing is being used increasingly for genomic variant profiling in tumor patients. Unique molecular index (UMI) technology has recently been developed and helps to increase the accuracy of variant calling by minimizing polymerase chain reaction biases and sequencing errors. However, UMI-adopted targeted sequencing data analysis is slightly different from the methods for other types of omics data, and its pipeline for variant calling is still being optimized in various study groups for their own purposes. Due to this provincial usage of tools, our group built an analysis pipeline for global application to many studies of targeted sequencing generated with different methods. First, we generated hybrid capture-based data using genomic DNA extracted from tumor tissues of colorectal cancer patients. Sequencing libraries were prepared and pooled together, and an 8-plexed capture library was processed to the enrichment step before 150-bp paired-end sequencing with Illumina HiSeq series. For the analysis, we evaluated several published tools. We focused mainly on the compatibility of the input and output of each tool. Finally, our laboratory built an analysis pipeline specialized for UMI-adopted data. Through this pipeline, we were able to estimate even on-target rates and filtered consensus reads for more accurate variant calling. These results suggest the potential of our analysis pipeline in the precise examination of the quality and efficiency of conducted experiments.
Rare diseases, even though defined as fewer than 20,000 in South Korea, with over 8,000 rare Mendelian disorders having been identified, they collectively impact 6-8% of the global population. Many of the rare diseases pose significant challenges to patients, patients' families, and the healthcare system. The diagnostic journey for rare disease patients is often lengthy and arduous, hampered by the genetic diversity and phenotypic complexity of these conditions. With the advent of next-generation sequencing technology and clinical implementation of exome sequencing (ES) and genome sequencing (GS), the diagnostic rate for rare diseases is 25-50% depending on the disease category. It is also allowing more rapid new gene-disease association discovery and equipping us to practice precision medicine by offering tailored medical management plans, early intervention, family planning options. However, a substantial number of patients remain undiagnosed, and it could be due to several factors. Some may not have genetic disorders. Some may have disease-causing variants that are not detectable or interpretable by ES and GS. It's also possible that some patient might have a disease-causing variant in a gene that hasn't yet been linked to a disease. For patients who remain undiagnosed, reanalysis of existing data has shown promises in providing new molecular diagnoses achieved by new gene-disease associations, new variant discovery, and variant reclassification, leading to a 5-10% increase in the diagnostic rate. More advanced approach such as long-read sequencing, transcriptome sequencing and integration of multi-omics data may provide potential values in uncovering elusive genetic causes.
Lee, Hee Soo;Kwon, Mirae;Heo, Sunhak;Kim, Min Gon;Kim, Geun-Bae
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.4
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pp.535-541
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2017
This study investigated the psychrotrophic bacteria isolated from chicken meat to characterize their microbial composition during refrigerated storage. The bacterial community was identified by the Illumina MiSeq method based on bacterial DNA extracted from spoiled chicken meat. Molecular identification of the isolated psychrotrophic bacteria was carried out using 16S rDNA sequencing and their putrefactive potential was investigated by the growth at low temperature as well as their proteolytic activities in chicken meat. From the Illumina sequencing, a total of 187,671 reads were obtained from 12 chicken samples. Regardless of the type of chicken meat (i.e., whole meat and chicken breast) and storage temperatures ($4^{\circ}C$ and $10^{\circ}C$), Pseudomonas weihenstephanensis and Pseudomonas congelans were the most prominent bacterial species. Serratia spp. and Acinetobacter spp. were prominent in chicken breast and whole chicken meat, respectively. The 118 isolated strains of psychrotrophic bacteria comprised Pseudomonas spp. (58.48%), Serratia spp. (10.17%), and Morganella spp. (6.78%). All isolates grew well at $10^{\circ}C$ and they induced different proteolytic activities depending on the species and strains. Parallel analysis of the next generation sequencing and culture dependent approach provides in-depth information on the biodiversity of the spoilage microbiota in chicken meat. Further study is needed to develop better preservation methods against these spoilage bacteria.
Rapid development of next-generation sequencing (NGS) technology is available to study microbes in genomic level. This NGS has been widely used in DNA/RNA sequencing for genome sequencing, metagenomics, and transcriptomics. The food microbiology area could be categorized into three groups. Food microbes including probiotics and food-borne pathogens are studied in genomic level using NGS for microbial genomics. While food fermentation or food spoilage are more complicated, their genomic study needs to be done with metagenomics using NGS for compositional analysis. Furthermore, because microbial response in food environments are also important to understand their roles in food fermentation or spoilage, pattern analysis of RNA expression in the specific food microbe is conducted using RNA-Seq. These microbial genomics, metagenomics, and transcriptomics for food fermentation and spoilage would extend our knowledge on effective utilization of fermenting bacteria for health promotion as well as efficient control of food-borne pathogens for food safety.
Jongsun PARK;Yunho YUN;Hong XI;Woochan KWON;Janghyuk SON
Korean Journal of Plant Taxonomy
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v.53
no.3
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pp.181-200
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2023
Owing to the rapid development of sequencing technologies, more than 1,000 plant genomes have been sequenced and released. Among them, 69 Korean plant taxa (85 genome sequences) contain at least one whole-genome sequence despite the fact that some samples were not collected in Korea. The sequencing-by-synthesis method (next-generation sequencing) and the PacBio (third-generation sequencing) method were the most commonly used in studies appearing in 65 publications. Several scaffolding methods, such as the Hi-C and 10x types, have also been used for pseudo-chromosomal assembly. The most abundant families among the 69 taxa are Rosaceae (10 taxa), Brassicaceae (7 taxa), Fabaceae (7 taxa), and Poaceae (7 taxa). Due to the rapid release of plant genomes, it is necessary to assemble the current understanding of Korean plant species not only to understand their whole genomes as our own plant resources but also to establish new tools for utilizing plant resources efficiently with various analysis pipelines, including AI-based engines.
Developments in next-generation sequencing (NGS) techogies have assisted in clarifying the diagnosis and treatment of developmental delay/intellectual disability (DD/ID) via molecular genetic testing. Advances in DNA sequencing technology have not only allowed the evolution of targeted panels but also, and more currently enabled genome-wide analyses to progress from research era to clinical practice. Broad acceptance of accuracy-guided targeted gene panel, whole-exome sequencing (WES), and whole-genome sequencing (WGS) for DD/ID need prospective analyses of the increasing cost-effectiveness versus conventional genetic testing. Choosing the appropriate sequencing method requires individual planning. Data are required to guide best-practice recommendations for genomic testing, regarding various clinical phenotypes in an etiologic approach. Targeted panel testing may be recommended as a firsttier testing approach for children with DD/ID. Family-based trio testing by WES/WGS can be used as a second test for DD/ID in undiagnosed children who previously tested negative on a targeted panel. The role of NGS in molecular diagnostics, treatment, prediction of prognosis will continue to increase further in the coming years. Given the rapid pace of changes in the past 10 years, all medical providers should be aware of the changes in the transformative genetics field.
The recent advent of next-generation sequencing technologies has dramatically changed the nature of biomedical research. Human genetics is no exception-it has never been easier to interrogate human patient genomes at the nucleotide level to identify disease-associated variants. To further facilitate the efficiency of this approach, whole exome sequencing (WES) was first developed in 2009. Over the past three years, multiple groups have demonstrated the power of WES through robust disease-associated variant discoveries across a diverse spectrum of human diseases. Here, we review the application of WES to different types of inherited human diseases and discuss analytical challenges and possible solutions, with the aim of providing a practical guide for the effective use of this technology.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.58-58
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2017
The advent of next generation sequencing technology has elicited plenty of sequencing data available in agriculturally relevant plant species. For most crop species, it is too expensive to obtain the whole genome sequence data with sufficient coverage. Thus, many approaches have been developed to bring down the cost of NGS. Genotyping-by-sequencing (GBS) is a cost-effective genotyping method for complex genetic populations. GBS can be used for the analysis of genomic selection (GS), genome-wide association study (GWAS) and constructing haplotype and genetic linkage maps in a variety of plant species. For efficiently dealing with plant GBS data, the TASSEL-GBS pipeline is one of the most popular choices for many researchers. TASSEL-GBS is JAVA based a software package to obtain genotyping data from raw GBS sequences. Here, we describe application of GBS and bioinformatics pipeline of TASSEL-GBS for analyzing plant genetics data.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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