Physiological functionalities of culture concentrates from various fungi were investigated. The culture concentrates from Saccharomyces cerevisiae Y277-3 showed the highest tyrosinase inhibitory activity of 42.7%. Among mold physiological functionalities, the culture concentrates from Aspergillus orygae CN20-3-1-4 showed the highest antioxidant activity of 15.8%. The other functionalities of fungi were very low or not detected. The intracellular tyrosinase inhibitor from Saccharomyces cerevisiae Y277-3, which showed the highest physiological functionalities was maximally produced when the strain was cultured in PD broth at $30^{\circ}C$ for 24 h.
Stability of spheroplasts prepared from Saccharomyces cerevisiae D-71, a thermophilic strain and Zygosaccharomyces rouxii SR-S, an osmotolerant strain were studied. Stability of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was highest in 0.8M KCI and 1.0M sorbitol ; that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was highest in 0.4M KCI and mannitol and that from both strains was less than 10% for sonic oscillation at 20Kc for 60 sec. In centrifugation at 10000 x g for 10 min., stability of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was 93% and that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was 84%. Breakage of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was 99% and that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was 55% for UV irradiation with 15W UV lamp at a distance of 20 cm for 60 min.
The intracellular free radicals produced at different stages of cell cycle of Saccharomyces cerevisiae ATCC 24858 were investigated by means of electron spin resonance(ESR) spectroscopy. The synchronized cells by repeated starvation and refeeding revealed different ESR spectral pattern compared to that of asynchronized cells. Each spectrum centered at g=2.005, which indicates free radicals. The relative spin concentration was maximat at the end of DNA increase. The variation of the relative spin concentration at each distinct stage of the cell cycle was evaluated in relation to ascorbate concentration, L-galactonolactone oxidase activity, and ascorbate oxidase activity. The highest activities of L-galactonolactone oxidase and ascorbate oxidase were detected just before and at the maximum of relative spin concentration, respectively. And ascorbate concentration fluctuated through each stage of cell cycle with the changes of relative spin concentration, L-galactonolactone oxidase activity, and ascorbate oxidase activity. Thus it is suggested that intracellular free radicals should be related to cell cycle, interacted with ascorbate, and may play an important role in the cell cycle of Saccharomyces cerevisiae.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.28
no.4
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pp.801-804
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1999
Quality characteristics of yakju prepared by different yeast strains such as Saccharomyces cerevisiae S 2, Saccharomyces cerevisiae S 6 and Saccharomyces cerevisiae IFO 1950 were investigated during fermentation. The pH in all kinds of yakju was gradually decreased until 6 days and then it was constant. In stage of fermentation, acidity of yakju made of Saccharomyces cerevisiae S 6 was higher than others. At the beginning stage of fermentation, ethanol contents were in the range of 0~2% increased to 9.5~11.5% after 10 days. Yakju made of Saccharomyces cerevisiae S-2 showed higher ethanol contents than others. Free sugars in yakju were found to be glucose and maltose. The contents of free sugars were decreased until 6 days and they were not detected. The content of ethanol in yakju showed the highest value at the 6th day and those of yakju A, B and C were 11.9, 9.5, 10.9%, respectively. Main organic acids in yakju were citric acid and lactic acid. The content of citric acid in yakju B was higher than others.
In order to clone the gene coding for 3-isopropylmalate dehydrogenase of Muyveromyces fragilis, a shuttle plasmid vector pHNll4 was used. It can serve as a cloning vector in Saccharomyces cerevisiae DBY746 for other Sau3AI-cleaved DNA segment of Kluyveromyces fragilis. Two cloned fragments which complement the leu2 mutation of Saccharomyces cerevisiae and E, coli were obtained. Their length was 4.4 kb an 3.5 kb, and their orientation was opposite each other. From the fact that the two recombinant plasmids were expressed in Saccharomyces cerevisiae and E, coli, probably the two inserts had the promoter of Ktuyveromyces fi-agilis and that of Kluyveromyces fiagilis was efficiently assosiated with RNA polymerase of Saccharomyces cerevisiae and E. coli. According to the result of Southern hybridization, we thought that the cloned fragment has low homology with 3-isopropylmalate dehydrogenase coding region of E. coli and Saccharomyces cerevisiae.
Reduction of 3-chloro-4-fluoropropiophenone by Saccharomyces cerevisiae as a whole cell biocatalyst was optimized. Effects of glucose, S. cerevisiae and 3-chloro-4-fluoropropiophenone concentrations on conversion of reduction reaction was investigated. Optimum concentrations of glucose, S. cerevisiae and 3-chloro-4-fluoropropiophenone were 100, 40 and 20 g/L, respectively. At optimum condition, 100% of conversion was achieved in 12 hours of reaction.
The cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) gene from Bacillus stearothermophilus NO2 was expressed in Saccharomyces cerevisiae 2805 under the adhl promoter. The CGTase was purified from S. cerevisiae 2805/pVT-CGTS. The purified enzyme exhibited a optima of activity around pH 7.0 and $65^{\circ}C$. Thermal stability of the enzyme was increased fairly as compared with the CGTase of B. stearothermophilus NO2. The conversion yield of cyclodextrin (CD) and the production ratio of $\alpha$-, $\beta$,-, ${\gamma}$-CD from starch were showed similarly aspect to the CGTase of B. stearothermophilus NO2.
The domestic cultured Campbell's Early and Geubong grapes were fermented far the production of red wines with the isolated wild yeast Saccharomyces cerevisiae IJ850. For the isolation of wild yeast, Geubong and Campbell's Early grapejuices were naturally fermented at room temperature for 6 days without adding stater culture. The strain isolated from Geubong which has 1.8 times higher fermentative ability than the strains isolated Campbell Early was selected. The selected strain was identified by using 26S rDNA sequencing. The strain showed 99.7% of similarity with Saccharomyces cerevisiae and thus identified as Saccharomyces cerevisiae IJ850. It was investigated the fermentative ability as the start culture. For the production of grapewine, the final sugar concentrations of grapejuices were adjusted to the $25^{\circ}Brix$ with anhydrous glucose. The grapejuices were fermented at room temperature for 10 days in the air-locked bottles filled with $CO_2$ gas. The final yield and alcohol concentration of Campbell's Early and Geubong grapewines fermented with the isolated wild yeast were 80.8%, 11.0% and 87.8%, 13.0%, respectively. Between the isolated wild yeast S. cerevisiae IJ850 and the commercial yeast S. cerevisiae EC1118, total acidities of grapewines produced with wild yeast were lower than those produced with the commercial yeast. The pH values and the values of color analysis of grapewines produced with both strains were similar. The total phenol contents of campbell's Early and Geubong wines produced with the isolated yeast and the commercial yeast were obtained in the range of 75 to 125mg/L. In conclusion, S. cerevesiae IJ850 isolated from the domestic cultured Geubong grape is able to use to produce grapewines as stater culture.
To construct an amylolytic industrial strain of Saccharomyces cerevisiae, the glucoamylase cDNA gene (GAl) from Aspergillus awamori was expressed under the control of the alcohol dehydrogenase gene promoter (ADC1p) and integrated into the chromosomes of industrial S. cerevisiae. An integrative cassette lacking bacterial ampicillin resistance gene but containing the GA1 gene, $\delta$ sequences of Ty1 retrotransposon as target sites for homologous recombination and S. cerevisiae aureobasidin A resistance gene (AUR1-C) as the selection marker was constructed to obtain a strain eligible for commercial use. Industrial S. cerevisiae transformed with this 15-integrative cassette efficiently secreted glucoamylase into the medium and grew on starch as the sole carbon source. The transformants were mitotically stable for 100 generations in nonselective medium.
CoenzymeQ is a quinone derivative with a long isoprenoid side chain. It transports electrons in the respiratory chain located in the inner mitochondrial membrane of eukaryotes and the plasma membrane of prokaryotes. It also functions as an antioxidant. Saccharomyces cerevisine coq mutants, that are deficient coenzyme Q biosynthesis fail to aerobically grow. They are not able to grow on non-fermentable carbon sources, such as glycerol, either The putative $coq^{-7}$ gene involved in coenzyme Q biosynthesis of Neurospora crassa was cloned and used for complementation of S. cerevisiae coq7 mutant. The predicted amino acid sequence of N. crassa COQ7 showed about 58% homology with Coq7p of S. cerevisiae. The growth rate of S. cerevisiae $coq^7$ mutant transformed with the N. crassa $coq^{-7}$ gene was restored to the wild-type level. The complemented 5. cerevisiae strain was able to grow with glycerol as a sole carbon source and showed less sensitivities to linolenic acid, a polyunsaturated fatty acid.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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