We constructed the null mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe spDbp5 gene that is homologous to DEAD-box RNA helicase DBP5 in budding yeast Saccharomyces cerevisiae, which plays important roles in mRNA export out of nucleus. A null mutant in an $h^+/h^+$ diploid strain was constructed by replacing the spDbp5-coding region with an $ura4^+$ gene using one-step gene disruption method. Tetrad analysis showed that the spDbp5 is essential for vegetative growth. The haploid spDbp5 null mutants harboring pREP81X-spDbp5 plasmid showed extensive $poly(A)^+$ RNA accumulation in the nucleus and decrease in the cytoplasm after repression of spDbp5 expression. These results suggest that spDbp5 is also involved in mRNA export from the nucleus.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1987.07a
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pp.309-321
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1987
Differential gene expressions of patatin, proteinase inhibitor II, PAPI, rbcS and actin in potato microtuber have been examined. Microtubers from the several different stages of development were collected and their protein and mRNA patterns were examined. SDS-PAGE of microtuber proteins revealed that developmental changes in protein should be analogous to that of potatoes grown in the field. The level of patatin mRNA was the highest at the 30th day of development. Proteinse inhibitor IImRNA level was at the highest at the 15th day and decreased thereafter. The levels of PAPI mRNA, rbcS mRNA and actin mRNA were low throughout the time course examined.
The high mobility group AT-hook1 (HMGA1) proteins are known to be related to the regulation of gene transcription, replication and promotion of metastatic progression in cancer cells. The loss of expression by disrupting the HMGA1 gene affects insulin signaling and causes diabetes in the mouse. Previously identified single nucleotide polymorphism (SNP) of HMGA1 was significantly associated with fat deposition traits in the pig. In this study, we identified 3,935 bp nucleotide sequences from exon 5 to exon 8 of the bovine HMGA1 gene and its mRNA expression was observed by quantitative real-time PCR. Six single nucleotide polymorphisms in the bovine HMGA1 gene were detected and the allele frequencies of these SNPs were investigated using the PCR-RFLP method in nine cattle breeds including Limousin, Simmental, Brown Swiss, Hereford, Angus, Charolais, Hanwoo, Brahman and Red Chittagong cattle. The map location showed that the bovine HMGA1 gene was also closely located with a previously identified meat quality QTL region indicating this gene is the most likely positional candidate for meat quality traits in cattle.
Melithiazols are antifungal substances produced by the myxobacteria Melitangium lichenicola, Archangium gephyra, and Myxococcus stipitatus. Melithiazol biosynthetic genes have been identified in M. lichenicola, but not in A. gephyra and M. stipitatus until now. We identified a 37.3-kb melithiazol biosynthetic gene cluster from M. stipitatus DSM 14675 using genome sequence analysis and mutational analysis. The cluster is comprised of 9 genes (MYSTI_04973 to MYSTI_04965) that encode 4 polyketide synthase modules, 3 non-ribosomal peptide synthase modules, a putative fumarylacetoacetate hydrolase, a putative S-adenosylmethionine-dependent methyltransferase, and a putative nitrilase. Disruption of the MYSTI_04972 or MYSTI_04973 gene by plasmid insertion resulted in defective melithiazol production. The organization of the melithiazol biosynthetic modules encoded by 8 genes from MYSTI_04972 to MYSTI_04965 was similar to that in M. lichenicola Me l46. However, the loading module encoded by the first gene (MYSTI_04973) was different from that of M. lichenicola Me l46, explaining the difference in the production of melithiazol derivatives between the M. lichenicola Me l46 and M. stipitatus strains.
Though hydrogen peroxide ($H_2O_2$) causes a deleterious effect to cells with its reactive oxygen species resulting in cell death, S-allyl cysteine (SAC, a bioactive organosulfur compound of aged garlic extract) has been known to have a cytoprotective effect. Few reported profiles of gene expression of $H_2O_2$ and SAC treated human cord blood derived mesenchymal stem cells (MSC). This study revealed changes in the profile of twenty-one genes grouped by oxidative stress, antioxidant, cell death, anti-apoptosis and anti-aging by quantitative real time PCR. A concentration of $100{\mu}M$ of SAC or $50{\mu}M$ of $H_2O_2$ was applied to MSC which show moderate growth and apoptosis pattern. $H_2O_2$ treatment enhanced expression of eleven genes out of twenty-one genes compared with that of control group, on the contrary SAC suppressed expression of eighteen genes out of twenty-one genes except C ros oncogene. SAC decreased expression of oxidative stress genes such as SOD1, CAT and GPX. These results seemed consistent with reports which elucidated over-expression of NF-${\kappa}$B by $H_2O_2$, and suppression of it by SAC. This study will confer basic information for further experiments regarding the effects of SAC on gene levels.
We constructed the null mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe rsml gene that is thought to be involved in mRNA export. Though rsm1 gene is not essential for growth, the null mutant strain constructed by replacing the rsm1-coding region with an $kan^{r}$ gene showed growth retardation and mRNA export defects compared to wild type strain. We constructed double mutants which harbor rsm1 null allele and mutant allele of genes involved in mRNA export. The mex67 or npp106 null allele, when combined with rsm1 null allele, showed an additive effect on growth retardation and mRNA export defects. On the other hand, the thp1 null allele restored the defects of growth and mRNA export of rsm1 null mutant. These results suggest that rsm1 plays a role in mRNA export from the nucleus.
$\gamma$-Glutamyl transpeptidase (GGT, EC 2.3.2.2.) catalyzes the transfer of the $\gamma$-glutamyl moiety from $\gamma$-glutamyl containing ompounds, notably glutathione (GSH), to acceptor amino acids and peptides. A second gene (GGTII) encoding GGT was previously isolated and characterized from the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. In the present work, the GGTII-lacZ fusion gene was constructed and used to study the transcriptional regulation of the S. pombe GGTII gene. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene was significantly enhanced by NO-generating SNP and hydrogen peroxide in the wild type yeast cells. The GGTII mRNA level was increased in the wild-type S. pombe cells treated with SNP. However, the induction by SNP was abolished in the Pap1-negative S. pombe cells, implying that the induction by SNP of GGTII is mediated by Pap1. Fermentable carbon sources, such as glucose (at low concentrations), lactose and sucrose, as a sole carbon source, enhanced the synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene in wild type KP1 cells but not in Pap1-negative cells. Glycerol, a non-fermentable carbon source, was also able to induce the synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion gene, but other non-fermentable carbon sources such as acetate and ethanol were not. Transcriptional induction of the GGTII gene by fermentable carbon sources was also confirmed by increased GGTII mRNA levels in the yeast cells grown with them. Nitrogen starvation was also able to induce the synthesis of $\beta$-galactosidase from the GGTII-lacZ fusion gene in a Pap1-dependent manner. On the basis of the results, it is concluded that the S. pombe GGTII gene is regulated by oxidative and metabolic stress.
Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) is an infectious and highly contagious virus of swine. In order to develop the transgenic tobacco culture cells producing PEDV antigen protein, four vectors expressing PEDV spike protein (SP) gene under the control of a CaMV 35S promoter were constructed. Four fragments of the SP region of PEDV, SP1 (444 bp, 1487-1930 bp), SP2 (1.7 kb, 2300-3987 bp), SP3 (1.4 kb, 1559-2950 bp), and SP4 (2.6 kb, 9-2643 bp) were amplified by PCR and then C-MYC tag was fused to the end of each SP gene, respectively. These cassettes are inserted into the pCAMBIA2300 (named as 35S::SP1-M, 35S::SP2-M 35S::SP3-M, and 35S::SP4-M, respectively). Tobacco (cv. BY-2) cultured cells were transformed by co-cultivation with Agrobacterium tumefaciens harboring expression vector. We selected kanamycin-resistant calli and checked for the presence of the introduced SP gene using PCR, resulting 70% of them showed the foreign gene. We selected the lines with high-level expression of PEDV antigen protein based on dot blot analysis. Southern blot analysis confirmed that the PEDV SP gene was integrated into the genome of the tobacco cultured cells. Northern blot analysis showed that the introduced gene was highly expressed in transgenic cultured cells. Transgenic tobacco cultured cells-derived antigen induced immunogenicity in mice as determined by a plaque reduction neutralization assay. These results suggest that the vectors expressing PEDV spike protein gene in this study will be useful for the development of transgenic plants and cultured cells producing PEDV antigene protein.
Kim, Jeong-Hwan;Kim, Jin-Soo;Jeong, Mi-Yeon;Choi, Woo-Bong
Journal of Life Science
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v.19
no.3
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pp.343-348
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2009
Magnaporthe oryzae, a major cause of rice blast, is one of the most destructive plant fungal pathogens. Secretion of reactive oxygen species (ROS) during the infection phase of plant pathogenic fungus plays a key role in the defense mechanism of a plant. ROS causes oxidative damage and functional modification to the proteins in a pathogenic fungus. Methionine, especially, is a major target of ROS, which oxidizes it to methionine sulfoxide. To survive from the attack of ROS, plant pathogenic fungus has antioxidative systems - one example would be methionine sulfoxide reductase B (MSRB), which reverses the oxidative alteration of methionine to methionine sulfoxide. In the present study, identification and molecular characterization of the MSRB gene in M. oryzae KJ201 were investigated. The MSRB gene was amplified by PCR from the M. oryzae KJ201 genomic DNA. The copy number of MSRB in the genome of M. oryzae KJ201 was identified by Southern blot analysis, which revealed that the gene exists as a single copy. To study the molecular function of an MSRB gene, the expression level of the MSRB gene was assayed with hydrogen peroxide treatment by Northern blot analysis and RT-PCR. The expression of the MSRB gene was increased by treatment of hydrogen peroxide, without significant correlation to hydrogen peroxide concentrations. These results indicate that the MSRB gene in M. oryzae KJ201 could contribute to protection against plant defense compounds such as ROS and offer a novel strategy for the control of rice blast.
Kim, H.H.;Seol, M.B.;Jeon, D.H.;Sun, S.S.;Kim, K.H.;Choi, Y.J.;Baik, M.G.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.14
no.12
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pp.1670-1674
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2001
To understand molecular mechanisms that regulate deposition and release of intramuscular fat, a fasting-induced clone was identified by differential screening from cDNA library of adipose tissues of Korean cattle. The clone had a total length of 1,319 nucleotides coding for 334 amino acids. It was identified as one encoding L-lactate dehydrogenase H chain (LDH-B). Comparison of the deduced amino acid sequences of bovine LDH-B with those of pig, human, rat, and mouse showed 98%, 98%, 97%, and 96% identity, respectively. Food deprivation for 48 h increased mRNA levels of LDH-B gene in adipose tissues of Korean cattle compared to fed- and 6 h refed- tissues. The expression of obese mRNA was examined for individual adipose tissue from several fat depots. Fasting induced expression of LDH-B gene in subcutaneous adipose tissues, but it did not affect expression levels in abdominal, perirenal and intramuscular tissues. Results demonstrate that induction of LDH-B gene during fasting may represent a metabolic shift from anaerobic state to aerobic predominance in fasted adipose tissues and that its responses to fasting are different among several adipose tissues.
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