Truong, Anh Duc;Hong, Yeojin;Lee, Janggeun;Lee, Kyungbaek;Lillehoj, Hyun S.;Hong, Yeong Ho
Korean Journal of Poultry Science
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v.44
no.3
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pp.199-209
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2017
Mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathways play a key role in innate immunity, inflammation, cell proliferation, cell differentiation, and cell death. The main objective of this study was to investigate the expression level of candidate MAPK pathway genes in the intestinal mucosal layer of two genetically disparate chicken lines (Marek's disease-resistant line 6.3 and Marek's disease-susceptible line 7.2) induced with necrotic enteritis (NE). Using high-throughput RNA sequencing, we investigated 178 MAPK signaling pathway related genes that were significantly and differentially expressed between the intestinal mucosal layers of the NE-afflicted and control chickens. In total, 15 MAPK pathway genes were further measured by quantitative real-time PCR(qRT-PCR) and the results were consistent with the RNA-sequencing data. All 178 identified genes were annotated through Gene Ontology and mapped onto the KEGG chicken MAPK signaling pathway. Several key genes of the MAPK pathway, ERK1/2, JNK1-3, p38 MAPK, MAP2K1-4, $NF-{\kappa}B1/2$, c-Fos, AP-1, Jun-D, and Jun, were differentially expressed in the two chicken lines. Therefore, we believe that RNA sequencing and qRT-PCR analysis provide resourceful information for future studies on MAPK signaling of genetically disparate chicken lines in response to pathogens.
Ordered differential display using RT-PCR (ODD-PCR) was conducted to have a profile of the differently expressed genes between a hypovirulent strain of Cryphonectria parasitica (UEP1) and its isogenic wild type strain (EP155/2). ODD-PCR has advantages of high sensitivity, reproducibility, proportional representation, and limited number of primer combinations comparing with other differential display methods. RNAs were prepared from 1 and 5 day liquid culture of both hypovirulent and wild type strains, and were further evaluated with the marker genes of C. parasitica such as cryparin and mating factor MF2-1, which were already proven to be specifically down-regulated by the presence of mycovirus CHV1-713. ODD-PCR was conducted using those RNAs and expressed genes were categorized to five groups according to their temporal and quantitative expression patterns. Those fives groups are CPC, CPE, CPL, CPD, and CPU which represent constitutively-expressed, early-expressed, late-expressed, down-regulated, and up-regulated, respectively. Ninety two primer combinations out of a total of 192 have been tested so far. Among the twenty to fifty distinct bands per each reaction, an average of four to ten genes was identified as viral-regulated fungal genes. Those viral-specifc genes were further analyzed by DNA sequencing followed by homology search. Characterization of 30 clones including all five groups were conducted as a preliminary data and more are under investigation.
The purpose of this study was to evaluate the validity and reliability of plaque scoring system using new Qraycam (All in One Bio, Korea) device which enables plaque score without tooth disclosing. This study measured Quigley-Hein index and plaque control record by both Qraycam and disclosing agent on 64 elderly people and checked degree of congruence between the two methods. Reliability was evaluated with the mean of measured values, kappa index and intraclass correlation coefficient statistical analysis. The analysis of the plaque scores showed a high agreement between the measured values according to the method of measurement and the measured part. The mean of plaque index of anterior labial were not significantly different according to measurement method. The kappa index was higher by Qraycam and tooth disclosing method of plaque index. Therefore, it was verified that Qraycam has sufficient reliability as screening tool for plaque scoring system.
Real time reverse transcription (RT)-PCR was used to quantify the expression of the botulinum neurotoxin type A (BoNT/A) gene (cntA) by normalization with the expression of 16S rRNA. The method were confirmed by monitoring the mRNA levels of cntA during growth in five type A strains. In all but one of the strains the expression of cntA mRNA was maximal in the late exponential phase, and approximately 35-fold greater than in the early exponential phase. The concentration of the extracellular BoNT/A complex detected by ELISA was highest in stationary phase. Sodium nitrite and sorbic acid completely inhibited growth at 20 ppm and $4mg\;ml^{-1}$, respectively. CntA expression became lower in proportion to the concentration of sorbic acid, and this reduction was confirmed by mouse bioassay. Our results show that real time RT-PCR can be used to quantify levels of C. botulinum type A neurotoxin transcripts and to assess the effects of food additives on botulinal risk.
Prostate cancer (PCa) remains one of the most widespread and perplexing of all human malignancies. Assessment of gene expression is thought to have an important impact on cancer diagnosis, prognosis and therapeutic decisions. In this context, we explored combined expression of PCa related target genes AMACR and PCA3 in 126 formalin fixed paraffin embedded prostate tissues (FFPE) from Moroccan patients, using quantitative real time reverse transcription-PCR (RT-qPCR). This quantification required data normalization accomplished using stably expressed reference genes (RGs). A panel of twelve RG was assessed, data being analyzed using GenEx V6 based on geNorm, NormFinder and statistical methods. Accordingly, the hnRNP A1 gene was identified and selected as the most stably expressed RG for reliable and accurate gene expression quantification in prostate tissues. The ratios of both PCA3 and AMACR gene expression relative to that of the hnRNP A1 gene were calculated and the performance of each target gene for PCa diagnosis was evaluated using receiver-operating characteristics. PCA3 and AMACR mRNA quantification based on RT-qPCR may prove useful in PCa diagnosis. Of particular interesting, combining PCA3 and AMACR quantification improved PCa prediction by increasing sensitivity with retention of good specificity.
Park, Jungwook;Lee, Areum;Lee, Hyun-Hee;Park, Inmyoung;Seo, Young-Su;Cha, Jaeho
Genes and Genomics
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v.40
no.11
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pp.1157-1167
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2018
Sulfolobus species can grow on a variety of organic compounds as carbon and energy sources. These species degrade glucose to pyruvate by the modified branched Entner-Doudoroff pathway. We attempted to determine the differentially expressed genes (DEGs) under sugar-limited and sugar-rich conditions. RNA sequencing (RNA-seq) was used to quantify the expression of the genes and identify those DEGs between the S. acidocaldarius cells grown under sugar-rich (YT with glucose) and sugar-limited (YT only) conditions. The functions and pathways of the DEGs were examined using gene ontology (GO) and Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) pathway enrichment analyses. Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) was performed to validate the DEGs. Transcriptome analysis of the DSM 639 strain grown on sugar-limited and sugar-rich media revealed that 853 genes were differentially expressed, among which 481 were upregulated and 372 were downregulated under the glucose-supplemented condition. In particular, 70 genes showed significant changes in expression levels of ${\geq}$ twofold. GO and KEGG enrichment analyses revealed that the genes encoding components of central carbon metabolism, the respiratory chain, and protein and amino acid biosynthetic machinery were upregulated under the glucose condition. RNA-seq and qRT-PCR analyses indicated that the sulfur assimilation genes (Saci_2197-2204) including phosphoadenosine phosphosulfate reductase and sulfite reductase were significantly upregulated in the presence of glucose. The present study revealed metabolic networks in S. acidocaldarius that are induced in a glucose-dependent manner, improving our understanding of biomass production under sugar-rich conditions.
Bordetella (B.) bronchiseptica, Mycoplasma (M.) felis, and Chlamydia (C.) felis are considered as main bacterial pathogens of feline upper respiratory tract disease (URTD). In this study, a new triplex quantitative real-time polymerase chain reaction (tqPCR) assay was developed for the rapid and differential detection of these bacteria in a single reaction. The assay specifically amplified three bacterial genes with the detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with coefficients of intra-assay and inter-assay variation of less than 1%. Based on the diagnostic results of the assay using 94 clinical samples obtained from cats with URTD signs, prevalence of B. bronchiseptica, M. felis, or C. felis was 10.6%, 36.2%, or 6.4%, respectively, indicating that the diagnostic sensitivity was comparable to those of previously reported monoplex qPCR assays. The dual infection rates for B. bronchiseptica and M. felis or M. felis and C. felis was 2.1% or 3.2%, respectively. These results indicated that M. felis has been widely spread, and its co-infection with B. bronchiseptica or M. felis has been frequently occurred in Korean cat population. The developed tqPCR assay will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of these three bacterial pathogens and the prevalence data obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of feline URTD in Korea.
This study investigates the association of the AFB stain with the cycle threshold (Ct) value of the Cobas TaqMan MTB test (CTM test, Roche Diagnostics, Basel, Switzerland), and it establishes the base data for semi-quantitative identification of M. tuberculosis by the Ct value. CTM test were simultaneously conducted on 8,389 specimens submitted to the Samsung Medical Center from January 2015 to December 2015, and the results were analyzed and compared retrospectively investigates the association of the AFB stain with the Ct value of the CTM test, and it establishes the base data for semi-quantitative identification of M. tuberculosis by the Ct value. The Ct values for 135 positive specimens of the CTM were inversely correlated with the AFB stain (rs=-0.545, P<0.01). When the Ct value of the CTM test and the time to positivity (TTP) of the mycobacteria cultures were verified based on the AFB stain, they were found to have a positive correlation (rs=0.136, P<0.01). The negative correlation between the CTM test and the AFB stain grade was demonstrated. The clinical significance was verified by applying these criteria to the clinical results. The semi-quantitative criteria of this study can be used to facilitate the rapid isolation of patients with active tuberculosis and infection control in the hospital.
Kil Tae Gun;Kim Won Jung;Lee Dong Hyuk;Kang Yong;Sung Hark Mo;Yoo Si Hyung;Park Sue-Nie;Kim In Seop
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.216-224
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2005
Chromatography has now been used successfully to provide the requisite purity for human plasma-derived biop-harmaceuticals such as coagulation factors and immunoglobulins. Recently, increasing attention has been focused on establishing efficient cleaning procedures to prevent potential contamination by microorganisms as well as carry-over contamination from batch to batch. The purpose of present study was to develop a cleaning validation system for the assurance of virus removal and/or inactivation during chromatography process. In order to establish an assay system for the validation of virus clearance during chromatography cleaning process, a quantitative real-time PCR method for porcine parvovirus(PPV) was developed, since PPV, a model virus for human parvovirus B19, has a high resistance to a range of physico-chemical treatment. Specific primers for amplification of PPV DNA was selected, and PPV DNA was quantified by use of SYBR Green I. The sensitivity of the assay was calculated to be 1.5 $TCID_{50}/ml$. The established real-time PCR assay was successfully applied to the validation of PPV removal and cleaning during SP-Sepharose cation chromatography for thrombin purification and Q-Sepharose anion chromatography for factor VIII purification. The comparative results obtained by real-time PCR assay and infectivity titrations suggested that the real-time PCR assay could be a useful method for chromatography cleaning validation and that it could have an additive effect on the interpretation and evaluation of virus clearance during the virus removal process.
The objective of the present study was to determine the expression of genes associated with lipopolysaccharide (LPS)-induced stressor in two breeds of chickens: the Korean native chicken (KNC) and the White Leghorn chicken (WLH). Forty chickens per breed, aged 40 weeks, were randomly allotted to the control (CON, administered the saline vehicle) and LPS-injected stress groups. Samples were collected at 0 and 48 h post-LPS injection, and total RNA was extracted from the chicken livers for RNA microarray and quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) analyses. In response to LPS, 1,044 and 1,193 genes were upregulated, and 1,000 and 1,072 genes were downregulated in the KNC and WLH, respectively, using a ${\geq}2$-fold cutoff change. A functional network analysis revealed that stress-related genes were downregulated in both KNC and WLH after LPS infection. The results obtained from the qRT-PCR analysis of mRNA expression of heat shock 90 (HSP90), 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase (HMGCR), activating transcription factor 4 (ATF4), sterol regulatory element-binding protein 1 (SREBP1), and X-box binding protein 1 (XBP1) were confirmed by the results of the microarray analysis. There was a significant difference in the expression of stress-associated genes between the control and LPS-injected KNC and WLH groups. The qRT-PCR analysis revealed that the stress-related $HSP90{\alpha}$ and HMGCR genes were downregulated in both LPS-injected KNC and WLH groups. However, the HSP70 and $HSP90{\beta}$ genes were upregulated only in the LPS-injected KNC group. The results suggest that the mRNA expression of stress-related genes is differentially affected by LPS stimulation, and some of the responses varied with the chicken breed. A better understanding of the LPS-induced infective stressors in chicken using the qRT-PCR and RNA microarray analyses may contribute to improving animal welfare and husbandry practices.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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