Synonymous sites are generally considered to be functionally neutral. However, there are recent contradictory findings suggesting that synonymous alleles might have functional roles in various molecular aspects. For instance, a recent study demonstrated that synonymous single nucleotide polymorphisms have a similar effect size as nonsynonymous single nucleotide polymorphisms in human disease association studies. Researchers have recognized synonymous codon usage bias (SCUB) in the genomes of almost all species and have investigated whether SCUB is due to random nucleotide compositional bias or to natural selection of any functional exposure generated by synonymous mutations. One of the most prominent observations on the non-neutrality of synonymous codons is the correlation between SCUB and levels of gene expression, such that highly expressed genes tend to have a higher preference toward so-called optimal codons than lowly expressed genes. In relation, it is known that amounts of cognate tRNAs that bind to optimal codons are significantly higher than the amounts of cognate tRNAs that bind to non-optimal codons in genomes. In the present paper, we review various functions that synonymous codons might have other than regulating expression levels.
The tapeworm Taenia solium is an important human zoonotic parasite that causes great economic loss and also endangers public health. At present, an effective vaccine that will prevent infection and chemotherapy without any side effect remains to be developed. In this study, codon usage patterns in the T. solium genome were examined through 8,484 protein-coding genes. Neutrality analysis showed that T. solium had a narrow GC distribution, and a significant correlation was observed between GC12 and GC3. Examination of an NC (ENC vs GC3s)-plot showed a few genes on or close to the expected curve, but the majority of points with low-ENC (the effective number of codons) values were detected below the expected curve, suggesting that mutational bias plays a major role in shaping codon usage. The Parity Rule 2 plot (PR2) analysis showed that GC and AT were not used proportionally. We also identified 26 optimal codons in the T. solium genome, all of which ended with either a G or C residue. These optimal codons in the T. solium genome are likely consistent with tRNAs that are highly expressed in the cell, suggesting that mutational and translational selection forces are probably driving factors of codon usage bias in the T. solium genome.
The extent of codon usage in the protein coding genes of the mycobacteriophage, Bxz1, and its plating bacteria, M. smegmatis, were determined, and it was observed that the codons ending with either G and / or C were predominant in both the organisms. Multivariate statistical analysis showed that in both organisms, the genes were separated along the first major explanatory axis according to their expression levels and their genomic GC content at the synonymous third positions of the codons. The second major explanatory axis differentiates the genes according to their genome type. A comparison of the relative synonymous codon usage between 20 highly- and 20 lowly expressed genes from Bxz1 identified 21 codons, which are statistically over represented in the former group of genes. Further analysis found that the Bxz1- specific tRNA species could recognize 13 out of the 21 over represented synonymous codons, which incorporated 13 amino acid residues preferentially into the highly expressed proteins of Bxz1. In contrast, seven amino acid residues were preferentially incorporated into the lowly expressed proteins by 10 other tRNA species of Bxz1. This analysis predicts for the first time that the Bxz1-specific tRNA species modulates the optimal expression of its proteins during development.
We cloned and expressed hepatitis B viral core antigen (HBcAg) gene in E. coli using $P_{L}$ promoter system. For optimal expression of the gene, we undertook the studies on the effects of the distance between Shine-Dalgarno (SD) sequence and start codon, copy number of repressor gene, induction temperature, and the stability of the core antigen. The results demonstrated that the induction at 37.deg.C was more efficient than at 42.deg.C, and the 11 base pairs (bp) distance between SD sequence and start codon of HBcAg gene was more efficient than the 15 bp distance in E. coli. The copy number of cI857 repressor gene did not influence on the expression of HBcAg, and the expression level of HBcAg in mutant type (low protease activity) and wild type strains was almost the same. The produced core antigen appeared to be HBcAg not HBeAg judged by two different radioimmunoassat (RIA) kits. This result suggested that the antigen was stable in E. coli.i.
Red algae are distributed globally, and the group contains several commercially important species. Griffithsia okiensis is one of the most extensively studied red algal species. In this study, we conducted expressed sequence tag (ESTs) analysis and synonymous codon usage analysis using cultured G. okiensis samples. A total of 1,104 cDNA clones were sequenced using a cDNA library made from samples collected from Dolsan Island, on the southern coast of Korea. The clustering analysis of these sequences allowed for the identification of 1,048 unigene clusters consisting of 36 consensus and 1,012 singleton sequences. BLASTX searches generated 532 significant hits (E-value <$10^{-4}$) and via further Gene Ontology analysis, we constructed a functional classification of 434 unigenes. Our codon usage analysis showed that unigene clusters with more than three ESTs had higher GC contents (76.5%) at the third position of the codons than the singletons. Also, the majority of the optimal codons of G. okiensis and Chondrus crispus belonging to Bangiophycidae were G-ending, whereas those of Porphyra yezoensis belonging to Florideophycidae were G-ending. An orthologous gene search for the P. yezoensis EST database resulted in the identification of 39 unigenes commonly expressed in two rhodophytes, which have putative functions for structural proteins, protein degradation, signal transduction, stress response, and physiological processes. Although experiments have been conducted on a limited scale, this study provides a material basis for the development of microarrays useful for gene expression studies, as well as useful information for the comparative genomic analysis of red algae.
Microbial transglutaminases (MTGs) are widely used in the food industry. In this study, the MTG gene of Streptomyces sp. TYQ1024 was cloned and expressed in a food-grade bacterial strain, Bacillus subtilis SCK6. Extracellular activity of the MTG after codon and signal peptide (SP Ync M) optimization was 20 times that of the pre-optimized enzyme. After purification, the molecular weight of the MTG was 38 kDa and the specific activity was 63.75 U/mg. The optimal temperature and pH for the recombinant MTG activity were 50℃ and 8.0, respectively. MTG activity increased 1.42-fold in the presence of β-ME and 1.6-fold in the presence of DTT. Moreover, 18% sodium chloride still resulted in 83% enzyme activity, which showed good salt tolerance. Cross-linking gelatin with the MTG increased the strength of gelatin 1.67 times and increased the thermal denaturation temperature from 61.8 to 75.8℃. The MTG also significantly increased the strength and thermal stability of gelatin. These characteristics demonstrated the huge commercial potential of MTG, such as for applications in salted protein foods.
To improve the expression efficiency of recombinant endo-$\beta$-1,4-glucanase in P. pastoris, the endo-$\beta$-1,4-glucanase (egI) gene from Aspergillus niger was synthesized using optimized codons. Fourteen pairs of oligonucleotides with 15 bp overlap were designed and the full-length syn-egI gene was generated by two-step PCR-based DNA synthesis. In the synthesized endo-$\beta$-1,4-glucanase gene syn-egI, 193 nucleotides were changed, and the G+C content was decreased from 54% to 44.2%. The syn-egI gene was inserted into pPIC9K and transformed into P. pastoris GS115 by electroporation. The enzyme activity of recombinant P. pastoris stain 2-7# reached 20.3 U/ml with 1% barley $\beta$-glucan and 3.3 U/ml with 1% carboxymethylcellulose (CMC) as substrates in shake flasks versus 1,270.3 U/ml and 220.7 U/ml for the same substrates in 50-1 fermentors. The molecular mass of the recombinant protein was approximately 40 kDa as determined by SDS-PAGE analysis, the optimal temperature for recombinant enzyme activity was $70^{\circ}C$, and the optimal pH was 5.0 when CMC was used as the substrate.
Meilina, Lita;Budiarti, Sri;Mustopa, Apon Zaenal;Darusman, Huda Shalahudin;Triratna, Lita;Nugraha, Muhammad Ajietuta;Bilhaq, Muhammad Sabiq;Ningrum, Ratih Asmana
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.49
no.1
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pp.75-87
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2021
Type I Interferons (IFNα) are known for their role as biological anticancer agents owing to their cell-apoptosis inducing properties. Development of an appropriate, cost-effective host expression system is crucial for meeting the increasing demand for proteins. Therefore, this study aims to develop codon-optimized IFNα-2b in L. lactis NZ3900. These cells express extracellular protein using the NICE system and Usp45 signal peptide. To validate the mature form of the expressed protein, the recombinant IFNα-2b was screened in a human colorectal cancer cell line using the cytotoxicity assay. The IFNα-2b was successfully cloned into the pNZ8148 vector, thereby generating recombinant L. lactis pNZ8148-SPUsp45-IFNα-2b. The computational analysis of codon-optimized IFNα-2b revealed no mutation and amino acid changes; additionally, the codon-optimized IFNα-2b showed 100% similarity with native human IFNα-2b, in the BLAST analysis. The partial size exclusion chromatography (SEC) of extracellular protein yielded a 19 kDa protein, which was further confirmed by its positive binding to anti-IFNα-2b in the western blot analysis. The crude protein and SEC-purified partial fraction showed IC50 values of 33.22 ㎍/ml and 127.2 ㎍/ml, respectively, which indicated better activity than the metabolites of L. lactis NZ3900 (231.8 ㎍/ml). These values were also comparable with those of the regular anticancer drug tamoxifen (105.5 ㎍/ml). These results demonstrated L. lactis as a promising host system that functions by utilizing the pNZ8148 NICE system. Meanwhile, codon-optimized usage of the inserted gene increased the optimal protein expression levels, which could be beneficial for its large-scale production. Taken together, the recombinant L. lactis IFNα-2b is a potential alternative treatment for colorectal cancer. Furthermore, its activity was analyzed in the WiDr cell line, to assess its colorectal anticancer activities in vivo.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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1991.04a
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pp.225-236
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1991
The genes encoding the thermostable $\alpha$-amylase and maltogenic amylase from Bacillus lichenciformis were cloned and expressed in E. coli. The recombinant plasmid pTA322 was found to contain a 3.1kb EcoRI genomic DNA fragment of the thermostable $\alpha$-amylase. The cloned $\alpha$-amylase was compared with the B. licheniformis native $\alpha$-amylase. Both $\alpha$-amylase have the same optimal temperature of $70^{\circ}C$ and are stable in the pH range of 6 and 9. The complete nucleotide sequences of the thermostable $\alpha$-amylase gene were determined. It was composed of one open reading rame of 1,536 bp. Start and stop codons are ATG and TAG. From the amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence, the cloned thermostable $\alpha$-amylase is composed of 483 amino acid residues and its molecular weight is 55,200 daltons. The content of guanine and cytosine is $47.46mol\%$ and that of third base codon was $53_41mol\%$. The recombinant plasmid, pIJ322 encoding the maltogenic amylase contains a 3.5kb EcoRI-BamHI genomic DNA fragment. The optimal reaction temperature and pH of the maltogenci amylase were $50^{\circ}C$ and 7, respectively. The maltogenic amylase was capable of hydrolysing pullulan, starch and cyclodextrin to produce maltose from starch and panose from pullulan. The maltogenic amylase also showed the transferring activity. The maltogenic amylase gene is composed of one open reading frame of 1,734bp. Start and stop codons are ATG and ATG. At 2bp upstream from start codon, the nucleotide sequence AAAGGGGGAA seems to be the ribosome-binding site(RBS, Shine-Dalgarno sequence). A putative promoter(-35 and-10 regions) was found to be GTTAACA and TGATAAT. From deduced amino acid sequence from the nucleotide srquence, this enzyme was comosed of 578 amino acid residues and its molecular weight was 77,233 daltons. The content of guanine and cytosine was $48.1mol\%$. The new recombinant plasmid, pTMA322 constructed by inserting the thermostable $\alpha$-amylase gene in the EcoRI site of pIJ322 to produce both the thermostable $\alpha$-amylase and the maltogenic amylase were expressed in the E. coli. The two enzymes expressed from E. coli containing pTMA322 was reacted with the $15\%$ starch slurry at $40^{\circ}C$ for 24hours. The distribution of the branched oligosaccharides produced by the single-step process was of the ratio 50 : 50 between small oligosaccharide up DP3 and large oligosaccharide above DP3.
Unsunnidhal, Lalu;Wasito, Raden;Setyawan, Erif Maha Nugraha;Warsani, Ziana;Kusumawati, Asmarani
Journal of Veterinary Science
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v.22
no.6
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pp.76.1-76.15
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2021
Background: The development of a vaccine for Jembrana disease is needed to prevent losses in Indonesia's Bali cattle industry. A DNA vaccine model (pEGFP-C1-tat) that requires a functional delivery system will be developed. Polylactic-co-glycolic acid (PLGA) may have potential as a delivery system for the vaccine model. Objectives: This study aims to evaluate the in vitro potential of PLGA as a delivery system for pEGFP-C1-tat. Methods: Consensus and codon optimization for the tat gene was completed using a bioinformatic method, and the product was inserted into a pEGFP-C1 vector. Cloning of the pEGFP-C1-tat was successfully performed, and polymerase chain reaction (PCR) and restriction analysis confirmed DNA isolation. PLGA-pEGFP-C1-tat solutions were prepared for encapsulated formulation testing, physicochemical characterization, stability testing with DNase I, and cytotoxicity testing. The PLGA-pEGFP-C1-tat solutions were transfected in HeLa cells, and gene expression was observed by fluorescent microscopy and real-time PCR. Results: The successful acquisition of transformant bacteria was confirmed by PCR. The PLGA:DNA:polyvinyl alcohol ratio formulation with optimal encapsulation was 4%:0.5%:2%, physicochemical characterization of PLGA revealed a polydispersity index value of 0.246, a particle size of 925 nm, and a zeta potential value of -2.31 mV. PLGA succeeded in protecting pEGFP-C1-tat from enzymatic degradation, and the percentage viability from the cytotoxicity test of PLGA-pEGFP-C1-tat was 98.03%. The PLGA-pEGFP-C1-tat demonstrated luminescence of the EGFP-tat fusion protein and mRNA transcription was detected. Conclusions: PLGA has good potential as a delivery system for pEGFP-C1-tat.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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