Performance of column type bioreactor packed with immobilized cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) on chitosan and Amberite IRA 900 was evaluated for cyclodextrin(CD) production. For CGTase immobilized on chitosan, the maximum CD conversion yield of 42% was achieved at the range of 88-168 units of immobilizied CGTase per gram of chitosan, retention time of 0.3 hr, and from 5.0% (w/v) of partially cyclized soluble starch. On the other hand, for CGTase immobilized on Amberite IRA 900, the maximum conversion yield of 40% was obtained at the range of 3.6-11.0 units of immobilized CGTase per gram of carrier and retention time of 1.2 hr from 5.0% of substrate. Above CD conversion yields are almost identical level with that can be obtained with soluble CGTase of 47%. The productivities of bioreactor packed with immobilized CGTase were 17.0g of CD/lㆍhr for amberite IRA 900 and 15.5g of CD/lㆍhr for chitosan. The partially cyclized starch with soluble CGTase were more suitable as substrate to achieve better CD conversion yield, and 5% (w/v) of partially cyclized soluble starch containing 10% (w/w) of CD was found to be most suitable to obtain maximum CD conversion yield.
The objective of this study was to understand the conversion characteristics of glucose and xylose using the major monosaccharide standards for lignocellulosic biomass. The acid-catalyzed organosolv pretreatment conducted using ethanol was significantly different from the acid-catalyzed process conducted in an aqueous medium. 5-hydroxymethylfurfural (5-HMF), levulinic acid and furfural were produced from glucose conversion. The maximum yield of 5-HMF was 5.5%, at 200℃, when 0.5% sulfuric acid was used. The maximum yield of levulinic acid was 21.5%, at 220℃, when 1.0% sulfuric acid was used. Furfural was produced from xylose conversion and under 0.5% sulfuric acid, furfural reached the maximum yield 48.5% at 210℃. Ethyl levulinate and methyl levulinate were also formed from the glucose standard following the esterification reaction conducted under conditions of the combined conversion method, which proceeded under both ethanol-rich and water-rich conditions.
The metabolic pathway synthesis algorithm was applied to estimate the maximum ethanol yield from xylose in a model recombinant Saccharomyces cerevisiae strain containing the genes involved in xylose metabolism. The stoichiometrically independent pathways were identified by constructing a biochemical reaction network for conversion of xylose to ethanol in the recombinant S. cerevisiae. Two independent pathways were obtained in xylose-assimilating recombinant S. cerevisiae as opposed to six independent pathways for conversion of glucose to ethanol. The maximum ethanol yield from xylose was estimated to be 0.46 g/g, which was lower than the known value of 0.51 g/g for glucose-fermenting and wild-type xylose-fermenting yeasts.
The two-stage enzyme reactor, packed with cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) immobilized on Amberite IRA 900, coupled with ultrafiltration membrane was investigated for continuous production of cyclodextrin (CD). 5% (w/v) of soluble starch was partially cyclized, in the 0.1 l first-stage immobilized enzyme reactor, up to CD conversion yield of 10% (w/w) at retention time of 0.56hr and 1.5 units of immobilized CGTase/1g of carrier. In the second stage main immobilized enzyme reactor capacity of 1.5 l, the maximum CD conversion yield of 39% (w/v) was achieved at retention time of 2.8hr and 0.47 unit of CGTase/1 g of carrier. Unreacted residual dextrin was fractionated with ultrafiltration membrane, and then, recycled into the second-stage main bioreactor to increase the CD conversion yield. The most suitable membrane size and the volume concentration ratio (concentrate: filterate) for recycling of unreacted residual dextrin were found to be 5K dalton and 4:6, respectively. CD conversion yield was increased about 3~4% upon co-immobilization of pulluanase along with CGTase. Spent Amberite IRA 900 can be reutilized consecutively more than 3 times for immobilization of CGTase after regeneration.
The biocatalytic efficiency of recombinant Corynebacterium glutamicum ATCC 13032 expressing the secondary alcohol dehydrogenase of Micrococcus luteus NCTC2665 was studied. Recombinant C. glutamicum converts ricinoleic acid to a product, identified by gas chromatography/mass spectrometry as 12-ketooleic acid (12-oxo-cis-9-octadecenoic acid). The effects of pH, reaction temperature, and non-ionic detergent on recombinant C. glutamiucm whole cell bioconversion were examined. The determined optimal conditions for production of 12-ketooleic acid are pH 8.0, 35℃, and 0.05 g/l Tween80. Under these conditions, recombinant C. glutamicum produces 3.3 mM 12-ketooleic acid, with a 72% (mol/mol) maximum conversion yield, and 1.1 g/l/h volumetric productivity in 2 h; and 3.9 mM 12-ketooleic acid, with a 74% (mol/mol) maximum conversion yield, and 0.69 g/l/h maximum volumetric productivity in 4 h of fermentation. This study constitutes the first report of significant production of 12-ketooleic acid using a recombinant Corynebacterium glutamicum-based biocatalyst.
Defect size distribution is a probability density function for the defects that occur on wafers or glasses during semiconductor/LCD fabrication. It is one of the most important information to estimate manufacturing yield using well-known statistical estimation methods. The defects are detected by automatic optical inspection (AOI) facilities. However, the data that is provided from AOI is not accurate due to resolution of AOI and its defect detection mechanism. It causes distortion of defect size distribution and results in wrong estimation of the manufacturing yield. In this paper, I suggest a size conversion method and a maximum likelihood estimator to overcome the vague defect size information of AOI. The methods are verified by the Monte Carlo simulation that is constructed as similar as real situation.
Biodiesel conversion from soybean oil reached a maximum of 70% at 18 h using immobilized 1,3-specific Rhizopus oryzae lipase alone. Biodiesel conversion failed to reach 20% after 30 h when immobilized nonspecific Candida rugosa lipase alone was used. To increase the biodiesel production yield, a mixture of immobilized 1,3-specific R. oryzae lipase and nonspecific C. rugosa lipase was used. Using this mixture a conversion of greater than 99% at 21 h was attained. When the stability of the immobilized lipases mixture was tested, biodiesel conversion was maintained at over 80% of its original conversion after 10 cycles.
Prediction model was composed by optimal parameter estimation from best fitting on reactant temperature profile, inlet and outlet temperature of coolant and yield of dual fixed-bed catalytic reactor(FBCR) which was measured in the industrial field. In order to design the FBCR which could obtain maximum conversion and yield, we investigated the effect of catalyst bed length and reactor radius changes. An uniform activity FBCR showed the best performance at z = 2.8 m of total catalysst bed length in case of reactor radius r = 0.01241 m and z =2.80 m(upper layer: 1.88 m, lower layer: 0.92 m) under reactor radius r = 0.01254 m for a dual activities FCBR. In case of reactor radius changes, the axial temperature profile and maximum radial temperature was rapidly risen for radius increase. The reactor radius decrease showed the opposite result.
Journal of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers
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v.11
no.3
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pp.248-254
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1998
In the present study the glow discharge characteristics of $CO_2$ in a parallel plate electrode system were investigated, and the decomposition properties of $CO_2$ concerned with the discharge characteristics were discussed. The results show that $CO_2$ concentration decreases with increase in discharge power and decrease in gas pressure. The maximum conversion of $CO_2$ by glow discharge was 52% under the conditions of gas pressure, 10m Torr and 290W of discharge power.
We investigated optimal conditions for the microbial transformation of $\gamma$-butyrobetaine into L-carnitine by using Achromobacter cycloclast ATCC 21921. When the cells were cultivated in the medium containing $\gamma$-butyrobetaine as the sole carbon source for both cell growth and L-carnitine production, the maximum L-carnitine production was 2.9 g/L and the conversion yield from $\gamma$-butyrobetaine to L-carnitine was as low as 30.9 mol%. In order to enhance the L-carnitine production and the conversion yield, various carbon sources were added to the $\gamma$-butyronetaine containing basal medium. In the medium supplemented with glycerol, L-carnitine production was as high as 4.6 g/L and the conversion yield was 88.2 mol%, showing a significant improvement in L-carnitine synthesis compared to those in the medium without glycerol. We also examined the additional effect of quaternary ammonium compounds such as betaine and choline, which are similar in structure to $\gamma$-butyrobetaine and L-carnitien. It was observed that in the presence of those quaternary ammonium compounds, both the L-carnitine production rate and the conversion yield increased. In addition, we found that cell growth was inhibited by a $\gamma$-butyrobetaine concentration of more than 3%, while L-carnitine production was efficient at the $\gamma$-butyrobetaine concentration of 2-3%. By cultivating the cells in the optimal medium containing glycerol and choline, we obtained an L-carnitine concentration of 7.2 g/L with the conversion yield of 98.7 mol% in 4 days.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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