Human mesenchymal stem cell (hMSCs) isolated from human adult bone marrow have self-renewal capacity and can differentiate into multiple cell types in vitro and in vivo. A number of studies have now demonstrated that MSCs can differentiate into various neuronal populations. Due to their autologous characteristics, replacement therapy using MSCs is considered to be safe and does not involve immunological complications. The basic helix-loop-helix (bHLH) transcription factor Olig2 is necessary for the specification of both oligodendrocytes and motor neurons during vertebrate embryogenesis. To develop an efficient method for inducing neuronal differentiation from MSCs, we attempted to optimize the culture conditions and combination with Olig2 gene overexpression. We observed neuron-like morphological changes in the hMSCs under these induction conditions and examined neuronal marker expression in these cells by RTPCR and immunocytochemistry. Our data demonstrate that the combination of Olig2 overexpression and neuron-specific conditioned medium facilitates the neuronal differentiation of hMSCs in vitro. These results will advance the development of an efficient stem cell-mediated cell therapy for human neurodegenerative diseases.
Kim, Youngkyu;Kim, Tae-Keun;Shin, Yeonhee;Tak, Eunyoung;Song, Gi-Won;Oh, Yeon-Mok;Kim, Jun Ki;Pack, Chan-Gi
Molecules and Cells
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제44권11호
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pp.851-860
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2021
Label-free optical diffraction tomography (ODT), an imaging technology that does not require fluorescent labeling or other pre-processing, can overcome the limitations of conventional cell imaging technologies, such as fluorescence and electron microscopy. In this study, we used ODT to characterize the cellular organelles of three different stem cells-namely, human liver derived stem cell, human umbilical cord matrix derived mesenchymal stem cell, and human induced pluripotent stem cell-based on their refractive index and volume of organelles. The physical property of each stem cell was compared with that of fibroblast. Based on our findings, the characteristic physical properties of specific stem cells can be quantitatively distinguished based on their refractive index and volume of cellular organelles. Altogether, the method employed herein could aid in the distinction of living stem cells from normal cells without the use of fluorescence or specific biomarkers.
Yong Soo Park;Yeonji Kim;Sung Won Kim; In-Beom Kim
Applied Microscopy
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제50권
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pp.11.1-11.3
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2020
The human turbinate-derived mesenchymal stem cells (hTMSCs), which were DiI-labeled and transplanted into the subretinal space in degenerating mouse retina, were observed in retinal vertical sections processed for rhodopsin (a marker for rod photoreceptor) by confocal microscope with differential interference contrast (DIC) filters. The images clearly demonstrated that DiI-labeled hTMSCs have rhodopsin-immunoreactive appendages, indicating differentiation of transplanted hTMSC into rod photoreceptor. Conclusively, the finding suggests therapeutic potential of hTMSCs in retinal degeneration.
Therapeutic efficacy of mesenchymal stem cells (MSCs) is determined by biodistribution and engraftment in vivo. Compared to intravenous infusion, biodistribution of locally transplanted MSCs are partially understood. Here, we performed a pharmacokinetics (PK) study of MSCs after local transplantation. We grafted human MSCs into the brains of immune-compromised nude mice. Then we extracted genomic DNA from brains, lungs, and livers after transplantation over a month. Using quantitative polymerase chain reaction with human Alu-specific primers, we analyzed biodistribution of the transplanted cells. To evaluate the role of residual immune response in the brain, MSCs expressing a cytosine deaminase (MSCs/CD) were used to ablate resident immune cells at the injection site. The majority of the Alu signals mostly remained at the injection site and decreased over a week, finally becoming undetectable after one month. Negligible signals were transiently detected in the lung and liver during the first week. Suppression of Iba1-positive microglia in the vicinity of the injection site using MSCs/CD prolonged the presence of the Alu signals. After local transplantation in xenograft animal models, human MSCs remain predominantly near the injection site for limited time without disseminating to other organs. Transplantation of human MSCs can locally elicit an immune response in immune compromised animals, and suppressing resident immune cells can prolong the presence of transplanted cells. Our study provides valuable insights into the in vivo fate of locally transplanted stem cells and a local delivery is effective to achieve desired dosages for neurological diseases.
Kwon, Seong Gyu;Kwon, Yang Woo;Lee, Tae Wook;Park, Gyu Tae;Kim, Jae Ho
생체재료학회지
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제22권4호
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pp.311-318
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2018
Background: Tissue regeneration includes delivering specific types of cells or cell products to injured tissues or organs for restoration of tissue and organ function. Stem cell therapy has drawn considerable attention since transplantation of stem cells can overcome the limitations of autologous transplantation of patient's tissues; however, it is not perfect for treating diseases. To overcome the hurdles associated with stem cell therapy, tissue engineering techniques have been developed. Development of stem cell technology in combination with tissue engineering has opened new ways of producing engineered tissue substitutes. Several studies have shown that this combination of tissue engineering and stem cell technologies enhances cell viability, differentiation, and therapeutic efficacy of transplanted stem cells. Main body: Stem cells that can be used for tissue regeneration include mesenchymal stem cells, embryonic stem cells, and induced pluripotent stem cells. Transplantation of stem cells alone into injured tissues exhibited low therapeutic efficacy due to poor viability and diminished regenerative activity of transplanted cells. In this review, we will discuss the progress of biomedical engineering, including scaffolds, biomaterials, and tissue engineering techniques to overcome the low therapeutic efficacy of stem cells and to treat human diseases. Conclusion: The combination of stem cell and tissue engineering techniques overcomes the limitations of stem cells in therapy of human diseases, and presents a new path toward regeneration of injured tissues.
Nacre seashell is a natural osteoinductive biomaterial with strong effects on osteoprogenitors, osteoblasts, and osteoclasts during bone tissue formation and morphogenesis. Although nacre has shown, in one study, to induce bridging of new bone across large non-union bone defects in 8 individual human patients, there have been no succeeding human surgical studies to confirm this outstanding potency. But the molecular mechanisms associated with nacre osteoinduction and the influence on bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSC's), skeletal stem cells or bone marrow stromal cells remain elusive. In this study we highlight the phenotypic and biochemical effects of Pinctada maxima nacre chips and the global nacre soluble protein matrix (SPM) on primary human bone marrow-derived stromal cells (hBMSCs) in vitro. In static co-culture with nacre chips, the hBMSCs secreted Alkaline phosphatase (ALP) at levels that exceeded bone morphogenetic protein (rhBMP-2) treatment. Concentrated preparation of SPM applied to Stro-1 selected hBMSC's led to rapid ALP secretions, at concentrations exceeding the untreated controls even in osteogenic conditions. Within 21 days the same population of Stro-1 selected hBMSCs proliferated and secreted collagens I-IV, indicating the premature onset of an osteoblast phenotype. The same SPM was found to promote unselected hBMSC differentiation with osteocalcin detected at 7 days, and proliferation increased at 7 days in a dose-dependent manner. In conclusion, nacre particles and nacre SPM induced the early stages of human bone cell differentiation, indicating that they may be promising soluble factors with osteoinductive capacity in primary human bone cell progenitors such as, hBMSC's.
To improve the growth of human mesenchymal stem cells(hMSCs) under general cell culture conditions(20% $O_2$ and 5% $CO_2$), we examined the effect of s-allylcysteine(SAC), which is known as an antioxidant and the main component of aged-garlic extract, on hydrogen peroxide-induced cellular stress in hMSCs. We found that SAC blocked hydrogen peroxideinduced cell death and cellular apoptosis, but that SAC did not improve the growth of hMSCs during short-term culture. To evaluate the protective effect of SAC, we examined the endogenous expression of the antioxidant enzymes catalase (CAT), superoxide dismutase(SOD), and glutathione peroxidase(Gpx) in hMSCs. Hydrogen peroxide was found to downregulate the expression of CAT, SOD, and Gpx at the protein level. However, in the pre-treatment group of SAC, SAC inhibited the hydrogen peroxide-induced down-regulation of CAT, SOD, and Gpx. Unfortunately, treatment with SAC alone did not induce the up-regulation of antioxidant enzymes and the cell proliferation of hMSCs. Surprisingly, SAC improved cell growth in a single cell level culture of hMSCs. These results indicate that SAC may be involved in the preservation of the self-renewal capacity of hMSCs. Taken together, SAC improves the proliferation of hMSCs via inhibition of oxidative-stress-induced cell apoptosis through regulation of antioxidant enzymes. In conclusion, SAC may be an indispensable component in an in vitro culture system of human MSCs for maintaining self-renewal and multipotent characterization of human MSCs.
Background and Objectives: Osteoblasts are derived from bone marrow mesenchymal stem cells (BMMSCs) and play important role in bone remodeling. While our previous studies have investigated the cell subtypes and heterogeneity in osteoblasts and BMMSCs separately, cell-to-cell communications between osteoblasts and BMMSCs in vivo in humans have not been characterized. The aim of this study was to investigate the cellular communication between human primary osteoblasts and bone marrow mesenchymal stem cells. Methods and Results: To investigate the cell-to-cell communications between osteoblasts and BMMSCs and identify new cell subtypes, we performed a systematic integration analysis with our single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) transcriptomes data from BMMSCs and osteoblasts. We successfully identified a novel preosteoblasts subtype which highly expressed ATF3, CCL2, CXCL2 and IRF1. Biological functional annotations of the transcriptomes suggested that the novel preosteoblasts subtype may inhibit osteoblasts differentiation, maintain cells to a less differentiated status and recruit osteoclasts. Ligand-receptor interaction analysis showed strong interaction between mature osteoblasts and BMMSCs. Meanwhile, we found FZD1 was highly expressed in BMMSCs of osteogenic differentiation direction. WIF1 and SFRP4, which were highly expressed in mature osteoblasts were reported to inhibit osteogenic differentiation. We speculated that WIF1 and sFRP4 expressed in mature osteoblasts inhibited the binding of FZD1 to Wnt ligand in BMMSCs, thereby further inhibiting osteogenic differentiation of BMMSCs. Conclusions: Our study provided a more systematic and comprehensive understanding of the heterogeneity of osteogenic cells. At the single cell level, this study provided insights into the cell-to-cell communications between BMMSCs and osteoblasts and mature osteoblasts may mediate negative feedback regulation of osteogenesis process.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have been recognized as a therapeutic tool for various diseases due to its unique ability for tissue regeneration and immune regulation. However, poor survival during in vitro expansion and after being administrated in vivo limits its clinical uses. Accordingly, protocols for enhancing cell survivability is critical for establishing an efficient cell therapy is needed. CDDO-Me is a synthetic C-28 methyl ester of 2-cyano-3,12-dioxoolean-1,9-dien-28-oic acid, which is known to stimulate nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2)-antioxidant response element (ARE) pathway. Herein, report that CDDO-Me promoted the proliferation of MSCs and increased colony forming units (CFU) numbers. No alteration in differentiation into tri-lineage mesodermal cells was found after CDDO-Me treatment. We observed that CDDO-Me treatment reduced the cell death induced by oxidative stress, demonstrated by the augment in the expression of Nrf2-downstream genes. Lastly, CDDO-Me led to the nuclear translocation of NRF2. Our data indicate that CDDO-Me can enhance the functionality of MSCs by stimulating cell survival and increasing viability under oxidative stress.
Park, Seul-Ki;Lee, Jung Shin;Choi, Eun Kyung;You, Dalsan;Kim, Choung-Soo;Suh, Nayoung
BMB Reports
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제47권8호
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pp.469-474
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2014
Cell therapies utilizing mesenchymal stem cells (MSCs) have a great potential in many research and clinical settings. The mechanisms underlying the therapeutic effects of MSCs have been studied previously and the paracrine effects elicited by their production of various growth factors and cytokines were recognized as being crucial. However, the molecular controls that govern these paracrine effects remain poorly understood. To elucidate the molecular regulators of this process, we performed a global knockdown of microRNAs (miRNAs) in human adipose-derived mesenchymal stem cells (hADSCs) by inhibiting DGCR8, a key protein in miRNA biogenesis. Global disruption of miRNA biogenesis in hADSCs caused dramatic changes in the expression of subsets of growth factors and cytokines. By performing an extensive bioinformatic analysis, we were able to associate numerous putative miRNAs with these genes. Taken together, our results strongly suggest that miRNAs are essential for the production of growth factors and cytokines in hADSCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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