Katna, Anna;Boratynski, Robert;Furmanek-Blaszk, Beata;Zolcinska, Natalia;Sektas, Marian
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제20권1호
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pp.30-38
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2010
The contribution of a type II restriction-modification system (R-M system) to genome integrity and cell viability was investigated. We established experimental conditions that enabled the achievement of hemimethylated and unmethylated states for the specific bases of the recognition sequences of the host's DNA. To achieve this, we constructed the MboII R-M system containing only one (i.e., M2.MboII) out of two functional MboII methyltransferases found in Moraxella bovis. Using the incomplete R-M system, we were able to perturb the balance between methylation and restriction in an inducible manner. We demonstrate that upon the SOS-induced DNA repair in mitomycin C treated cells, restriction significantly reduces cell viability. Similar results for the well-studied wild-type EcoRI R-M system, expressed constitutively in Escherichia coli, were obtained. Our data provide further insights into the benefits and disadvantages of maintaining of a type II R-M system, highlighting its impact on host cell fitness.
Thiostrepton 내성 유전자(tsr)를 포함하는 multicopy 재조합 플라스미드 pJY502(5.5kb)의 제한효소 지도를 비교해본 결과 pJY502는 새로운 플라스미드로 확인되었다. pJY502는 Streptomyces에서 넓은 host range를 나타내었으며 cloning에 사용할 수 있는 단일 BglII 제한효소 인식부위를 갖고 있었다. pJY502의 형질전환 빈도는 S.lividans에서 $2.2 \times 10^5$이었다. 또한 E.coli-Streptomyces bifunctional 플라스미드 pJY504을 제조하였다.
We established an efficient transformation method for thermophile Geobacillus kaustophilus HTA426 using conjugative transfer from Escherichia coli of host-mimicking plasmids that imitate DNA methylation of strain HTA426 to circumvent its DNA restriction barriers. Two conjugative plasmids, pSTE33T and pUCG18T, capable of shuttling between E. coli and Geobacillus spp., were constructed. The plasmids were first introduced into E. coli BR408, which expressed one inherent DNA methylase gene (dam) and two heterologous methylase genes from strain HTA426 (GK1380-GK1381 and GK0343-GK0344). The plasmids were then directly transferred from E. coli cells to strain HTA426 by conjugative transfer using pUB307 or pRK2013 as a helper plasmid. pUCG18T was introduced very efficiently (transfer efficiency, $10^{-5}-10^{-3}\;recipient^{-1}$). pSTE33T showed lower efficiency ($10^{-7}-10^{-6}\;recipient^{-1}$) but had a high copy number and high segregational stability. Methylase genes in the donor substantially affected the transfer efficiency, demonstrating that the host-mimicking strategy contributes to efficient transformation. The transformation method, along with the two distinguishing plasmids, increases the potential of G. kaustophilus HTA426 as a thermophilic host to be used in various applications and as a model for biological studies of this genus. Our results also demonstrate that conjugative transfer is a promising approach for introducing exogenous DNA into thermophiles.
Retrovirus tropism can be restricted by host cell factors such as Fv1, TRIM5${\alpha}$, and LvI that inhibit infection by targeting the incoming viral capsid. The Fv1 gene inhibits murine leukemia virus infection in mice, but the precise mechanism of Fv1-mediated restriction is poorly understood. Our previous studies had demonstrated that Fv1-mediated viral tropism can be determined within the capsid protein at position 114. To study the interaction between Fv1 and CA, we introduced amino acid substitution and deletion at this site in the N-tropic AKV capsid gene. The mutated two-LTR proviral DNAs were introduced into SC-1 cells by transfection. After transfection, cell supernatants collected from transfected cells were tested for host range susceptibility. The result indicated that substitution of amino acids did not alter tropism, but the deletion of 114His produced a virus with unusual tropism. The novel phenotype produced here failed to replicate in Fv1-expressing cells. This mutant virus showing such an extreme restriction pattern would be useful for studying the mechanism of Fv1-mediated restriction.
Filamentous cyanobacteria are an ecologically important group of bacteria because they are able to provide both organic carbon fixed nitrogen that can support the nutritional requirements for other microorganisms. Because of their prokaryotic nature, they can also be used as potentially powerful model systems for the analysis of oxygenic photosynthesis and nitrogen fixation. Gene transfer is an indispensable procedure for genetic analysis of filamentous cyanobacteria. Electroporation was used to introduce foreign DNA into cyanobacterial cells. In experiments designed to optimize the electroporation technique, the effects of the field strength (amplitude of pulse) and time constant (duration of pulse), DNA concentration and host restriction/modification of DNA on the efficiency of electro-transformation were investigated. The results of this research revelaed that a high voltage pulse of short duration was effective for the electro-transformation of Anabaene sp. M131. The maximal number of transformants was obtained at 6 kV/cm with a pulse duration of 5 msec. The efficiency of electro-transformation was also sensitive to concenetration of DNA; even small amounts of DNA (0.01 .mu.g/ml) were able to gie a large number of transformants (1.0 * 10$\^$3/ cfu/ml).
Mushroom transformation requires a series of experimental steps, including generation of host strains with a desirable selective marker, design of vector DNA, removal of host cell wall, introduction of foreign DNA across the cell membrane, and integration into host genomic DNA or maintenance of an autonomous vector DNA inside the host cell. This review introduces limitations and obstacles related to transformation technologies along with possible solutions. Current methods for cell wall removal and cell membrane permeabilization are summarized together with details of two popular technologies, Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation and restriction enzyme-mediated integration.
The relationships between the phytoplasmas infecting Zizyphus jujuba and Paulownia coreana were investigated by PCR-RELP. The 16S rRNA genes of the phytoplasmas were analyzed and compared with each other after PCR amplification. The amplified bands 1.4 kb in size were analyzed by both restriction digestion and sequencing after cloning into a plasmid vector. In some cases, two different kinds of inserts were observed in the isolates that originated from a single plant. However, many of them appeared to be the amplification products of chloroplastic 16S rRNA gene of host plants. The phytoplasma gene could be differentiated from the chloroplastic gene by restriction digestion of the plasmids carrying the amplification products. Only the recombinant plasmids carrying phytoplasma 16S rRNA gene produced a 1.4 kb band when digested with the enzyme BanII. Of the 52 recombinant plasmids analyzed, 42 appeared to contain inserts that originated from the chloroplastic 16S rRNA gene of the host plants. No variation was detected among 16S rRNA gene of nine phytoplasma isolates infecting Z. jujuba. However, the phytoplasmas infecting Z. jujuba were different from that infecting P. coreana.
본 연구는 PCR 기반 RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism; 제한절편 길이 다형성) 분자기법을 활용하여 난 및 치어 대상 납자루아과 어류 3종의 동정을 좀 더 빠르고 정확하게 파악하고 납자루아과 어류의 종별 산란양상 및 번식생태 이해에 대한 기여가 목적이다. 본 연구를 위해 기존 선행된 문헌자료를 확인하고 납자루아과 어류가 2종 이상 동서하고 있는 지역을 확인하여 현지조사를 수행하였다. 현지조사 결과 확인된 납자루아과 어류는 묵납자루(Acheilognathus signifer), 줄납자루(A. yamatsutae) 및 각시붕어(Rhodeus uyekii)로 총 3종이 확인되었으며, 확인된 납자루아과 어류와 동서하고 있는 숙주조개(작은말조개; Unio douglasiae sinuolatus)를 채집하여 숙주조개 속 납자루아과 어류의 난 및 치어를 확보하였다. 현지조사 결과 확인된 납자루아과 어류 3종을 대상으로 미토콘드리아 DNA COI과 cyt b 유전자 염기서열을 비교하여 각각 종별로 특이성을 지닌 부위(단일염기변이; Single Nucleotide Variation: SNV)에 맞는 제한효소를 선정하였고, 숙주조개 속 난 및 치어를 대상으로 genomic DNA를 추출하여 PCR-RFLP 실험을 수행한 결과 현지조사 시 확인된 납자루아과 어류 3종의 독특한 제한절편 길이 양상을 전기영동을 통하여 확인하였다. 본 연구를 통해 묵납자루, 줄납자루 및 각시붕어의 종을 판별할 수 있는 RFLP 마커를 개발하였으며, 숙주조개 난 및 치어를 대상으로 정확한 종의 동정을 보다 빠르고 효과적으로 수행하여 각각 납자루아과 종별 산란양상을 보다 정확히 규명하고 향후 이들 자연개체군의 효과적인 유지, 관리 및 보전 방법 개발에 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
IPv4 주소가 고갈되어가고 있기 때문에 IPv6 주소의 사용이 늘어나고 있다. IPv6 환경에서는 주소자동설정 기능이 제공된다. 주소가 각 호스트(host)에 자동으로 할당될 경우, 네트워크 관리 시스템은 모든 장비의 IP주소를 조사하고 해당 정보를 유지해야 하는 어려움이 따른다. 또한, IP주소가 자동으로 설정되기 때문에 악의적 사용자가 아무런 제약 없이 네트워크 주요장비에 접근할 수 있는 문제가 발생한다. 이런 문제를 해결하기 위해 악의적 사용자들에 대한 관리 및 차단이 필요하다. 본 논문에서는, IPv6 환경에서 호스트를 탐색하고 인가되지 않은 호스트가 네트워크에 접속하는 것을 차단함으로써, 네트워크 주요 자원을 효율적으로 관리하고 보호하는 호스트 탐색 및 네트워크 접속 차단 에이전트 시스템을 제안한다. IPv6 환경에서 본 에이전트 시스템의 성능을 테스트한 결과, 본 시스템은 정상적으로 탐색과 차단 기능을 수행하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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