Histone acetylation and deacetylation play central roles in the regulation of chromatin structure and transcription by RNA polymerase II (RNA Pol II). Although Hda1 histone deacetylase complex (Hda1C) is known to selectively deacetylate histone H3 and H2B to repress transcription, previous studies have suggested its potential roles in histone H4 deacetylation. Recently, we have shown that Hda1C has two distinct functions in histone deacetylation and transcription. Histone H4-specific deacetylation at highly transcribed genes negatively regulates RNA Pol II elongation and H3 deacetylation at inactive genes fine-tunes the kinetics of gene induction upon environmental changes. Here, we review the recent understandings of transcriptional regulation via histone deacetylation by Hda1C. In addition, we discuss the potential mechanisms for histone substrate switching by Hda1C, depending on transcriptional frequency and activity.
Background and Aims: MicroRNA-21 (miR-21) is reported to be overexpressed and to contribute to proliferation, apoptosis and gemcitabine resistance in pancreatic ductal adenocarcinomas (PDACs). The aims of this study were to explore regulation of miR-21 expression by epigenetic change and its impact on chemoresistance and malignant properties of of pancreatic cancer. Materials and methods: We retrospectively collected 41 cases of advanced pancreatic cancer patients who were sensitive or resistant to gemcitabine and assessed levels of serum circulating miR-21 for correlation with cytotoxic activity. Histone acetylation in the miR-21 promoter was also studied in gemcitabine-sensitive and gemcitabine-resistant PDAC cells. Gemcitabine-resistant HPAC and PANC-1 cells were transfected with pre-miR-21 precursors (pre-miR-21) and antisense oligonucleotides (anti-miR-21), and were treated with TSA. Finally, invasion and metastasis assays were performed and alteration in mir-21, PTEN, AKT and pAKT level was evaluated in these cells. Results: Serum miR-21 levels were increased in gemcitabine-resistant PDAC patients compared with gemcitabine-sensitive subjects. The miR-21 levels were increased in 6 PDAC cells treated with gemcitabine significantly, associated with 50% inhibitory concentrations ($IC_{50}s$). Histone acetylation levels at miR-21 promoter were increased in PDAC cells after treatment with gemcitabine. Enhanced invasion and metastasis, increased miR-21 expression, decreased PTEN, elevated pAKT level were demonstrated in gemcitabine-resistant HPAC and PANC-1 cells. Pre-miR-21 transfection or TSA treatment further increased invasion and metastasis ability, decreased PTEN, and elevated pAKT levels in these two lines. In contrast, anti-miR-21 transfection could reverse invasion and metastasis, and PTEN and pAKT expressions induced by gemcitabine. Conclusions: MiR-21 upregulation induced by histone acetylation in the promoter zone is associated with chemoresistance to gemcitabine and enhanced malignant potential in pancreatic cancer cells.
Kim, Hong-Rye;Han, Rong-Xun;Lee, Hye-Ran;Yoon, Jong-Taek;Cheong, Hee-Tae;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.31
no.2
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pp.97-102
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2007
The objective of this study was to analyzed pattern of proteins expression abnormally in cloned bovine placenta. TIMP-2 protein whose function is related to extracellular matrix degradation and tissue remodeling processes was one of differentially up-regulated proteins in SCNT placenta. And one of down-regulated protein in SCNT placenta was identified as vimentin protein that is presumed to stabilize the architecture of the cytoplasm. The expression patterns of these proteins were validated by Western blotting. To evaluate how regulatory loci. of TIMP-2 and vimentin genes was programmed reprogramming in cloned placenta. the status of DNA methylation in the promoter region of TIMP-2 and vimentin genes was analyzed by sodium Bisulfite mapping. The DNA methylation results showed that there was not difference in methylation pattern of TIMP-2 and vimentin loci between cloned and normal placenta. Histone H3 acetylation state of the nucleosome was analyzed in the cloned placental and normal placenta by Western blotting. A small portion of the protein lysates were subjected to Western blotting with the antibodies against anti acetyl-Histone H3. Overall histone H3 acetylation state of SCNT placenta was significantly higher than those of normal placenta cells. It is postulated that cloned placenta at the end of gestation seems to be unusual in function and morphology of placenta via improper expression of TIMP-2 and vimentin by abnormal acetylation states of cloned genome.
EoL-1 cells differentiate into eosinophils in the presence of n-butyrate, but the mechanism has remained to be elucidated. Because n-butyrate can inhibit histone deacetylases, we hypothesized that the inhibition of histone deacetylases induces the differentiation of EoL-1 cells into eosinophils. In this study, using n-butyrate and two other histone deacetylase inhibitors, apicidin and trichostatin A, we have analyzed the relationship between the inhibition of histone deacetylases and the differentiation into eosinophils in EoL-1 cells. It was demonstrated that apicidin and n-butyrate induced a continuous acetylation of histones H4 and H3, inhibited the proliferation of EoL-1 cells, and induced the expression of markers for mature eosinophils such as integrin ${\beta}7$, CCR1, and CCR3 on EoL-1 cells, while trichostatin A evoked a transient acetylation of his tones and induced no differentiation into eosinophils. These findings suggest that the continuous inhibition of histone deacetylases in EoL-1 cells induces the differentiation into mature eosinophils.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.46
no.2
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pp.169-176
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2017
Non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD) is caused by chronic lipid accumulation due to dysregulation of lipid metabolism in the liver, and it is associated with various human diseases such as obesity, dyslipidemia, hypertension, and diabetes. Histone acetylation is a representative epigenetic mechanism regulated by histone acetyltransferases (HATs) and deacetylases. We observed that tartary buckwheat sprout (TBS) suppressed lipid accumulation in HepG2 cells through its anti-HAT activity. We showed that TBS was a novel HAT inhibitor with specificity for the major HAT enzyme p300. Importantly, TBS reduced acetylation of total and histone proteins, H3K9, H3K36, and H4K8, resulting in decreased transcriptional activities of sterol regulatory element-binding protein 1c, ATP citrate lyase, and fatty acid synthase. These results suggest that TBS inhibits the NAFLD transcription-modulating activity of lipogenesis-related genes through modification of histone acetylation.
Histone deacetylase (HDAC) activity is commonly associated with transcriptional repression. However, there is also evidence for a function in transcriptional activation. Previous studies have demonstrated a fundamental role of deacetylase activity in $IFN{\alpha}$-responsive gene transcription. In the case of type II IFN ($IFN{\gamma}$) results are controversial: some genes require HDAC activity, while transcription of others is repressed by HDAC. To investigate the effect of HDAC on transcription of an $IFN{\gamma}$-activated gene, real-time PCR was used to measure CXCL10 mRNA in Hela cells stimulated with $IFN{\gamma}$ in the presence or absence of the HDAC inhibitor TSA. Chromatin imunoprecipitation combined with real-time PCR was used to check acetylation of histone H4 and recruitment of the STAT1 complex to the ISRE locus of the CXCL10 gene. Activation of CXCL10 transcription in response to $IFN{\gamma}$ was paralleled by a decrease in histone H4 acetylation and an increase in recruitment of the STAT1 complex to the CXCL10 ISRE locus. The transcription of CXCL10 and histone H4 deacetylation were blocked by TSA, but the latter had no obvious affect on recruitment of the STAT1 complex. Our data indicate that $IFN{\gamma}$ and STAT-dependent gene transcription requires the participation of HDAC, as does the $IFN{\alpha}$-STAT pathway.
Epigenetic events like DNA methylation and histone modification can alter heritable phenotypes. Zinc is required for the activity of various epigenetic enzymes, such as DNA methyltransferases (DNMTs), histone acetyltransferases (HATs), histone deacetylases (HDACs), and histone demethylases, which possess several zinc binding sites. Thus, the dysregulation of zinc homeostasis can lead to epigenetic alterations. Zinc homeostasis is regulated by Zinc Transporters (ZnTs), Zrt- and Irt-like proteins (ZIPs), and the zinc storage protein metallothionein (MT). Recent advances revealed that ZIPs modulate epigenetics. ZIP10 deficiency was found to result in reduced HATs, confirming its involvement in histone acetylation for rigid skin barrier formation. ZIP13 deficiency, which is associated with Spondylocheirodysplastic Ehlers-Danlos syndrome (SCD-EDS), increases DNMT activity, leading to dysgenesis of dermis via improper gene expressions. However, the precise molecular mechanisms remain to be elucidated. Future molecular studies investigating the involvement of zinc and its transporters in epigenetics are warranted.
Park, Sang-Hoon;Lee, Mi-Ran;Kim, Tae-Suk;Baek, Sang-Ki;Jin, Sang-Jin;Kim, Jin-Wook;Jeon, Sang-Gon;Yoon, Ho-Baek;Lee, Joon-Hee
Reproductive and Developmental Biology
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v.38
no.4
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pp.147-158
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2014
Differentiated nuclei can experimentally be returned to an undifferentiated embryonic status after nuclear transfer (NT) to unfertilized metaphase II (MII) oocytes. Nuclear reprogramming is triggered immediately after somatic cell nucleus transfer (SCNT) into recipient cytoplasm and this period is regarded as a key stage for optimizing reprogramming. In a recent study (Dai et al., 2010), use of m-carboxycinnamic acid bishydroxamide (CBHA) as a histone deacetylase inhibitor during the in vitro early culture of murine cloned embryos modifies the acetylation status of somatic nuclei and increases the developmental competence of SCNT embryos. Thus, we examined the effects of CBHA treatment on the in vitro preimplantation development of porcine SCNT embryos and on the acetylated status of histone H3K9 on cloned embryos at the zygote stage. We performed the three groups SCNT: SCNT (NT), CBHA treatment at the porcine fetus fibroblast cells (PFFs) used as donor cells prior to SCNT (CBHA-C) and CBHA treatment at the porcine SCNT embryos during the in vitro early culture after oocyte activation (CBHA-Z). The PFFs were treated with a $15{\mu}M$ of CBHA (8 h) for the early culture and the porcine cloned embryos were treated with a $100{\mu}M$ concentration of CBHA during the in vitro early culture (10 h). Cleavage rates and development to the blastocyst stage were assessed. No significant difference was observed the cleavage rate among the groups (82.6%, 76.4% and 82.2%, respectively). However, the development competence to the blastocyst stage was significantly increased in CBHA-Z embryos (22.7%) as compared to SCNT and CBHA-C embryos (8.6% and 4.1%)(p<0.05). Total cell numbers and viable cell numbers at the blastocyst stage of porcine SCNT embryos were increased in CBHA-Z embryos as compared to those in CBHA-C embryos (p<0.05). Signal level of histone acetylation (H3K9ac) at the zygote stage of SCNT was increased in CBHA-Z embryos as compared to SCNT and CBHA-C embryos. The results of the present study suggested that treatment with CBHA during the in vitro early culture (10 h) had significantly increased the developmental competence and histone acetylation level at the zygote stage.
Chromatin remodeling regulates gene expression through epigenetic mechanisms. Aberrations in histone modification have been associated with depression-like behaviors in animal models. Additionally, growing evidence also indicates that epigenetic modification is associated with depression. p11 (S100A10) has been implicated in the pathophysiology of depression both in human and rodent models. In the present study, we investigated alterations in histone acetylation and methylation at the promoter of the p11 gene in the hippocampus of mice subjected to chronic unpredictable stress (CUS). C57BL/6 mice were exposed to CUS daily for 3 weeks. Depression-like behaviors were measured with the forced swimming test (FST). The levels of hippocampal p11 expression were analyzed by quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR) and Western blotting. The levels of acetylated and methylated histone H3 at the promoter of p11 were measured by chromatin immunoprecipitation followed by real-time PCR. CUS-exposed mice displayed depression-like behaviors with prolonged immobility in FST. CUS led to significant decreases in the expression of p11 at both protein and mRNA levels. Meanwhile, there was a decrease in histone H3 acetylation (Ac-H3) and H3-K4 trimethylation (H3K4met3) and an increase in H3-K27 trimethylation (H3K27met3) at the p11 promoter. These results indicate that chronic stress causes the epigenetic suppression of p11 expression in the hippocampus.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.42
no.10
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pp.1539-1543
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2013
The inhibitory effect of histone acetyltransferase from methanol extract of Terminalia chebula Retz. fruit (TCME) was investigated in prostate cancer cell. TCME significantly inhibited histone acetyltransferase (HAT) activity by over 50% at 100 ${\mu}g/mL$ concentration. TCME treatment repressed androgen receptor (AR) mediated transcription, mRNA level of AR target genes, prostate specific antigen (PSA) and NKX-3.1, as well as AR acetylation. Finally, the prostate cancer cell viability was dramatically reduced by TCME treatment at 0~100 ${\mu}g/mL$ concentration. These results indicated that TCME, as a potent HAT inhibitor, could suppress prostate cancer cell growth by AR mediated transcription regulation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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