The effect of transgene inactivation in T2, T3 and F2 generations was analyzed in progeny seedlings which had been generated by Agrobacterium (LBA4404/pBI121)-mediated transformation in Arabidopsis thaliana. In a system which investigated in the expression of $\beta$-glucuronidase(GUS)gene in kanamycin-resistant (ke $n^{R}$)seedlings, GUS inactivated seedlings were observed in 5 of 12 tested lines of T2 generation and the frequency of GUS inactivation was approximately 2.3%. Lines with multi-copies of T-DNA exhibited severe GUS gene inactivation with the frequency of 5.8% in T2 generation. In T3 generation lines exhibited GUS gene inactivation with the frequency of 1.3%. In contrast, inactivation increased dramatically up to 12.6% in multi-copy T-DNA line. A similar phenomenon was also found in F2 progeny from a transgenic line which had been crossed with wild-type Arabidopsis plant, WS-O (GUS gene inactivation frequency 9.9%). These results indicate that the foreign gene introduced into the plant was inactivated progressively in its transmission during subsequent generations and the transgenic line with multi-copies of T-DNA tended to show more increased inactivation.
Brevibacterium lactofermentum, a gram-positive bacteria, has both the diaminopimelate (DAP) pathway and meso-DAP-dehydrogenase (DDH) pathway for L-lysine biosynthesis. To investigate importance of DDH pathway and the related ddh gene in lysine production, we introduced site-specific mutagenesis technique. A 300 bp DNA fragment central to the meso-DAP-dehydrogenase gene (ddh) of B. lactofermentum was used to inactive chromosomal ddh gene via homologous recombination. Southern hybridization analysis confirmed that the chromosomal ddh gene was disrupted by the vector sequence. The B. lactofementum ddh mutant obtained have an inactive DDH pathway. The results reveal that inactivation of the ddh gene in B. lactofermentum leads to dramatic reduction of lysine production as well as decrease of the growth rate, indicating that the DDH pathway is essential for high-level lysine production as well as biosynthesis of meso-DAP.
Humans have acquired many distinct evolutionary traits after the human-chimpanzee divergence. These phenotypes have resulted from genetic changes that occurred in the human genome and were retained by natural selection. Comparative primate genome analyses reveal that loss-of-function mutations are common in the human genome. Some of these gene inactivation events were revealed to be associated with the emergence of advantageous phenotypes and were therefore positively selected and fixed in modern humans (the "less-ismore" hypothesis). Representative cases of human gene inactivation and their functional implications are presented in this review. Functional studies of additional inactive genes will provide insight into the molecular mechanisms underlying acquisition of various human-specific traits. [BMB Reports 2015; 48(7): 373-379]
Lee, Gena;Jeong, Yun Seong;Kim, Do Won;Kwak, Min Jun;Koh, Jiwon;Joo, Eun Wook;Lee, Ju-Seog;Kah, Susie;Sim, Yeong-Eun;Yim, Sun Young
Experimental and Molecular Medicine
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v.50
no.11
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pp.7.1-7.12
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2018
Recent findings from The Cancer Genome Atlas project have provided a comprehensive map of genomic alterations that occur in hepatocellular carcinoma (HCC), including unexpected mutations in apolipoprotein B (APOB). We aimed to determine the clinical significance of this non-oncogenetic mutation in HCC. An Apob gene signature was derived from genes that differed between control mice and mice treated with siRNA specific for Apob (1.5-fold difference; P < 0.005). Human gene expression data were collected from four independent HCC cohorts (n = 941). A prediction model was constructed using Bayesian compound covariate prediction, and the robustness of the APOB gene signature was validated in HCC cohorts. The correlation of the APOB signature with previously validated gene signatures was performed, and network analysis was conducted using ingenuity pathway analysis. APOB inactivation was associated with poor prognosis when the APOB gene signature was applied in all human HCC cohorts. Poor prognosis with APOB inactivation was consistently observed through cross-validation with previously reported gene signatures (NCIP A, HS, high-recurrence SNUR, and high RS subtypes). Knowledge-based gene network analysis using genes that differed between low-APOB and high-APOB groups in all four cohorts revealed that low-APOB activity was associated with upregulation of oncogenic and metastatic regulators, such as HGF, MTIF, ERBB2, FOXM1, and CD44, and inhibition of tumor suppressors, such as TP53 and PTEN. In conclusion, APOB inactivation is associated with poor outcome in patients with HCC, and APOB may play a role in regulating multiple genes involved in HCC development.
Nuclear factor I-C (NFI-C) null mice demonstrated aberrant odontoblast differentiation and abnormal dentin formation. In order to elucidate the mechanisms responsible for these changes, we evaluated the expression of dentin matrix gene after over-expression and inactivation of NFI-C in MDPC-23 cells by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Collagen type I (Col I), osteocalcin (OC), and dentin sialophosphoprotein (DSPP) expression was decreased after inactivation of NFI-C. However, bone sialoprotein (BSP) expression was dramatically increased after inactivation of NFI-C. ALP and DMP4 expression was not changed after inactivation of NFI-C. The expression of alkaline phoshatase (ALP) and dentin matrix protein 4 (DMP4) was increased after over-expression of NFI-C, while Col I, OC, DSPP, and BSP expression was decreased. These findings suggest that odontoblasts after loss of NFI-C lost the phenotype of odontoblasts and acquired those of osteoblasts.
The epipyrone (EPN) biosynthetic gene cluster of Epicoccum nigrum is composed of epnC, epnB, and epnA, which encode cytochrome P450 oxidase, glycosyltransferase, and highly reducing polyketide synthase, respectively. Gene inactivation mutants for epnA, epnB, and epnC were previously generated, and it was found that all of them were incapable of producing EPN and any of its related compounds. It was also reported that epnB inactivation abolished epnA transcription, generating ΔepnAB. This study shows that the introduction of native epnC readily restored EPN production in ΔepnC, suggesting that epnC is essential for polyketide release from EpnA and implies that EpnC works during the polyketide chain assembly of EpnA. Introduction of epnC promoter-epnA restored EPN production in ΔepnA. The ΔepnB genotype was prepared by introducing the epnA expression vector into ΔepnAB, and it was found that the resulting recombinant strain did not produce any EPN-related compounds. A canonical epnB inactivation strain was also generated by deleting its 5'-end. At the deletion point, an Aspergllus nidulans gpdA promoter was inserted to ensure the transcription of epnA, which is located downstream of epnB. Examination of the metabolite profile of the resulting ΔepnB mutant via LC-mass spectrometry verified that no EPN-related compound was produced in this strain. This substantiates that C-glycosylation by EpnB is a prerequisite for the release of EpnA-tethered product. In conclusion, it is proposed that cytochrome P450 oxidase and glycosyltransferase work in concert with polyketide synthase to generate EPN without the occurrence of any free intermediates.
Gastric cancer is highly invasive, aggressively malignant, and amongst the most prevalent of all forms of cancer. Despite improved management strategies, early stage diagnosis of gastric cancer and accurate prognostic assessment is still lacking. Several recent reports have indicated that the pathogenesis of gastric cancer involves complex molecular mechanisms and multiple genetic and epigenetic alterations in oncogenes and tumor suppressor genes. Functional inactivation of the tumor suppressor protein PTEN (Phosphatase and Tensin Homolog) has been detected in multiple cases of gastric cancer, and already shown to be closely linked to the development, progression and prognosis of the disease. Inactivation of PTEN can be attributed to gene mutation, loss of heterozygosity, promoter hypermethylation, microRNA- mediated regulation of gene expression, and post-translational phosphorylation. PTEN is also involved in mechanisms regulating tumor resistance to chemotherapy. This review provides a comprehensive analysis of PTEN and its roles in gastric cancer, and emphasizes its potential benefits in early diagnosis and gene therapy-based treatment strategies.
The signal transduction pathways through the RAS gene product and adenyl cyclease play a critical role in regulation of the cell cycle in yeast, Saccharomyces cerevisiae. We examined the genetic relationship between the spt3 gene and ras/cAMP pathway. A mutation in the SPT3 gene suppressed cell cycle arrest at the G1 phase caused by either an inactivation of the RAS or CYR1 gene which encodes a yeast homologue of human ras proto-oncogene or adenyl cyclase, respectively. The phenotypes such as sporulation and heat shock resistancy, that resulted from a partial inactivation of the RAS or CYR1 genes, were also suppressed by the spt3 mutation. Expression of the SSA1 gene encoding one of th heat shock proteins (Hsp70) can be induced by heat shock or nitrogen starvation. Expression of this gene is derepressed in cry1-2 and spt3 mutants. The bcy 1 mutation repressed by the bcy1 mutation, but not in spt3 mutants. These results suggest that the SPT gene is involved in expression of genes that are affected by the RAS/cAMP pathway.
Syeed, Nidda;Hussain, Firdous;Husain, Syed Akhtar;Siddiqi, Mushtaq A.
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.13
no.1
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pp.371-376
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2012
Background: Caveolin-1 (CAV-1), encoding the structural component of cellular caveolae, is a suggested tumor suppressor gene involved in cell signalling. Aberrant promoter methylation of CAV-1 is associated with inactivation of expression. We previously observed CAV-1 mutations in breast cancers and therefore devised this study to examine the hypermethylation status of the promoter region of CAV-1 with reference to breast cancer progression and development. Methods: Hypermethylation status of CAV-1 was analyzed by methylation specific PCR. Loss of expression of the CAV-1 gene was further evaluated by semi-quantitative rt-PCR. Results: 28/130 (21.5%) breast cancer cases showed promoter hypermethylation with reduced CAV-1 expression levels when compared with adjacent normal breast tissue. CAV-1 gene hypermethylation was significantly related to menopausal status, histopathological grade and age. Conclusion: The rationale of our study is that CAV-1 gene is transcriptionally repressed in breast cancer cells due to hypermethylation. Our results reveal that promoter hypermethylation and loss of expression of the CAV-1 gene is an important alternative mechanism for inactivation of CAV-1 leading to complete gene silencing.
Epicoccum nigrum produces epipyrone A (orevactaene), a yellow polyketide pigment. Its biosynthetic gene cluster was previously characterized in E. nigrum KACC 40642. The YES liquid culture of this strain revealed high-level production of epicoccamide (EPC), with an identity that was determined using liquid chromatography-mass spectrometry analysis and molecular mass search using the SuperNatural database V2 webserver. The production of EPC was further confirmed by compound isolation and nuclear magnetic resonance spectroscopy. EPC is a highly reduced polyketide with tetramic acid and mannosyl moieties. The EPC structure guided us to localize the hypothetical EPC biosynthetic gene cluster (BGC) in E. nigrum ICMP 19927 genome sequence. The BGC contains genes encoding highly reducing (HR)-fungal polyketide synthase (fPKS)-nonribosomal peptide synthetase (NRPS), glycosyltransferase (GT), enoylreductase, cytochrome P450, and N-methyltrasnferase. Targeted inactivation of the HR-fPKS-NRPS and GT genes abolished EPC production, supporting the successful localization of EPC BGC. This study provides a platform to explore the hidden biological activities of EPC, a bolaamphiphilic compound.
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