Park Soo-Dong;Park Ik-Hyun;Choi Jong-Soo;Kim Il-Kwon;Kim Younhee;Lee Heung-Shick
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.4
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pp.300-305
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2005
A transcriptionally active fragment $(P_{19})$ isolated by utilizing the promoter-probe shuttle vector pSK1Cat was analyzed. By subcloning analysis, the 180 bp region $(P_{180})$ responsible for the activity was determined. Transcriptional fusion of the C. glutamicum metX gene to $P_{180}\;(P_{180}-metX)$ resulted in a 24-fold increase in MetX activity in a complex medium, while a 13-fold increase was observed with the $P_{tac}$ promoter. Additionally, the expression conferred by $P_{180}$ was not affected by methionine added to the growth medium, suggesting that the $P_{180}$ clone is useful for the deregulated expression of biosynthetic genes in C. glutamicum during amino acid fermentation. Introduction of $P_{180}-metX$ into a lysine-producing C. glutamicum resulted in the production of methionine to 0.8 g/l.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.46
no.11
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pp.1286-1292
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2017
This study was conducted to investigate the hepatoprotective effects of 3,5-dicaffeoylquinic acid (3,5-DCQA) isolated from Ligularia fischeri against hydrogen peroxide-induced oxidative stress in HepG2 cells. Antioxidative effects of 3,5-DCQA were determined by measuring antioxidant enzyme [superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) glutathione peroxidase (GPx)] expression levels against hydrogen peroxide-induced oxidative stress using real-time PCR analysis. 3,5-DCQA treatment significantly increased gene expression levels of SOD, CAT, and GPx in a dose-dependent manner ($10{\sim}30{\mu}g/mL$) in HepG2 cells. Hepatoprotective effects were analyzed by measuring glutamic oxaloacetic transaminase (GOT), lactate dehydrogenase (LDH), and gamma-glutamyl transferase (GGT) activities using a biochemistry analyzer in hydrogen peroxide-treated HepG2 cells. 3,5-DCQA treatment significantly reduced GOT, LDH, and GGT activities in a dose-dependent manner ($10{\sim}30{\mu}g/mL$) against increased liver function index enzyme activities induced by hydrogen peroxide oxidative stress in HepG2 cells. The results reveal that 3,5-DCQA compound isolated from Ligularia fischeri can be useful for the development of an effective hepatoprotective agent.
Park, Mi-Seon;Shin, Hyun-Suk;Choi, Cheol-Young;Kim, Na-Na;Park, Dae-Won;Kil, Gyung-Suk;Lee, Je-Hee
Animal cells and systems
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v.15
no.3
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pp.219-225
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2011
We studied oxidative stress in cinnamon clownfish exposed to hypoosmotic (35 psu ${\rightarrow}$ 17.5 psu and 17.5 psu with prolactin (PRL)) and low temperature ($28^{\circ}C{\rightarrow}24^{\circ}C$ and $20^{\circ}C$) conditions by measuring the expression and activity of Cu/Zn-superoxide dismutase (Cu/Zn-SOD), catalase (CAT), and glutathione peroxidase (GPX). The expression and activity of the antioxidant enzymes were significantly higher after the fish were exposed to $24^{\circ}C$, $20^{\circ}C$, and 17.5 psu, and expression was repressed by PRL treatment. Furthermore, we measured $H_2O_2$ and lipid peroxidation levels and found that they were significantly higher after exposure to the hypoosmotic and low-temperature environments. Additionally, we investigated changes in plasma AST and ALT levels after exposure to low temperature and hypoosmotic stress. These levels increased upon exposure of the clownfish to $24^{\circ}C$, $20^{\circ}C$, and 17.5 psu, but the levels of these parameters decreased in the 17.5 psu with PRL treatment during a salinity change. The results indicate that hypoosmotic and low-temperature conditions induce oxidative stress in cinnamon clownfish and that the parameters tested in this study may be indices of oxidative stress in the cinnamon clownfish.
In macrophages, lipopolysaccharide (LPS) alone or in combination with $interferon-{\gamma}\;(IFN-{\gamma})$ has been shown to release a nitric oxide (NO) through the increase of the transcription of the inducible nitric oxide synthase (iNOS) gene. To investigate the exact intracellular signaling pathway of the regulation of iNOS gene transcription by LPS plus $IFN-{\gamma},$ the effects of protein tyrosine kinase (PTK) inhibitor and protein kinase C (PKC) inhibitors on NO production, iNOS mRNA expression, nuclear $factor-_{\kappa}B\;(NF-_{\kappa}B)$ binding activity and the promoter activity of iNOS gene containing two $NF-_{\kappa}B$ sites have been examined in a mouse macrophage RAW 264.7 cells. LPS or $IFN-{\gamma}$ stimulated NO production, and their effect was enhanced synergistically by mixture of LPS and $IFN-{\gamma}.$ The PTK inhibitor such as tyrphostin reduced LPS plus $IFN-{\gamma}-induced$ NO production, iNOS mRNA expression and $NF-_{\kappa}B$ binding activity. In contrast, PKC inhibitors such as H-7, Ro-318220 and staurosporine did not show any effect on them. In addition, transfection of RAW 264.7 cells with iNOS promoter linked to a CAT reporter gene revealed that tyrphostin inhibited the iNOS promoter activity through the $NF-_{\kappa}B$ binding site, whereas PKC inhibitors did not. Taken together, these suggest that PTK, but not PKC pathway, is involved in the regulation of the iNOS gene transcription through the $NF-_{\kappa}B$ sites of iNOS promoter in RAW 264.7 macrophages by LPS plus $IFN-{\gamma}$.
Yang, Peilong;Shi, Pengjun;Wang, Yaru;Bai, Yingguo;Meng, Kun;Luo, Huiying;Yuan, Tiezheng;Yao, Bin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.1
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pp.58-66
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2007
Isolation, expression, and characterization of a novel $endo-{\beta}-1,3(4)-D-glucanase$ with high specific activity and homology to Bacillus lichenases is described. One clone was screened from a genomic library of Paenibacillus sp. F-40, using lichenan-containing plates. The nucleotide sequence of the clone contains an ORF consisting of 717 nucleotides, encoding a ${\beta}-glucanase$ protein of 238 amino acids and 26 residues of a putative signal peptide at its N-terminus. The amino acid sequence showed the highest similarity of 87% to other ${\beta}-1,3-1,4-glucanases$ of Bacillus. The gene fragment Bg1 containing the mature glucanase protein was expressed in Pichia pastoris at high expression level in a 3-1 high-cell-density fermenter. The purified recombinant enzyme Bg1 showed activity against barley ${\beta}-glucan$, lichenan, and laminarin. The gene encodes an $endo-{\beta}-1,3(4)-D-glucanase$ (E. C. 3.2.1.6). When lichenan was used as substrate, the optimal pH was 6.5, and the optimal temperature was $60^{\circ}C$. The $K_m,\;V_{max},\;and\;k_{cat}$ values for lichenan are 2.96mg/ml, $6,951{\mu}mol/min{\cdot}mg,\;and\;3,131s^{-1}$, respectively. For barley ${\beta}-glucan$ the values are 3.73mg/ml, $8,939{\mu}mol/min{\cdot}mg,\;and\;4,026s^{-1}$, respectively. The recombinant Bg1 had resistance to pepsin and trypsin. Other features of recombinant Bg1 including temperature and pH stability, and sensitivity to some metal ions and chemical reagents were also characterized.
Feline panleukopenia virus (FPV) causes leukopenia and severe hemorrhagic diarrhea, killing 50% of naturally infected cats. Although intact FPV can serve as an antigen in the hemagglutination inhibition (HI) test, an accidental laboratory-mediated infection is concern. A non-infectious diagnostic reagent is required for the HI test. Here, we expressed the viral protein 2 (VP2) gene of the FPV strain currently prevalent in South Korea in a baculovirus expression system; VP2 protein was identified by an indirect immunofluorescence assay, electron microscopy (EM), Western blotting (WB), and a hemagglutination assay (HA). EM showed that the recombinant VP2 protein self-assembled to form virus-like particles. WB revealed that the recombinant VP2 was 65 kDa in size. The HA activity of the recombinant VP2 protein was very high at 1:215. A total of 143 cat serum samples were tested using FPV (HI-FPV test) and the recombinant VP2 protein (HI-VP2 test) as HI antigens. The sensitivity, specificity, and accuracy of the HI-VP2 test were 99.3%, 88.9%, and 99.3%, respectively, compared to the HI-FPV test. The HI-VP2 and HI-FPV results correlated significantly (r = 0.978). Thus, recombinant VP2 can substitute for intact FPV as the serological diagnostic reagent of the HI test for FPV.
Jang, Ho am;Baek, Hyoung-Seon;Kim, Bo Bae;Kojour, Maryam Ali Mohammadie;Patnaik, Bharat Bhusan;Jo, Yong Hun;Han, Yeon Soo
Korean journal of applied entomology
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v.61
no.1
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pp.155-163
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2022
The application of fungicides is indispensable to global food security, and their use has increased in recent times. Fungicides, directly or indirectly, have impacted insects, leading to genetic and molecular-level changes. Various detoxification mechanisms allow insects to eliminate reactive oxygen species (ROS) toxicity induced by agrochemicals including fungicides. In the present study, we analyzed the mRNA expression levels of detoxifying enzymes in Tenebrio molitor larvae following exposure to non-lethal doses (0.2, 2, and 20 ㎍/µL) of a fungicide captan. Transcripts of peroxidases (POXs), catalases (CATs), superoxide dismutases (SODs), and glutathione-s-transferases (GSTs) were screened from the T. molitor transcriptome database. RT-qPCR analysis showed that TmPOX5 mRNA increased significantly 24 h post-captan exposure. A similar increase was noticed for TmSOD4 mRNA 3 h post-captan exposure. Moreover, the expression of TmCAT2 mRNA increased significantly 24 h post-treatment with 2 ㎍/µL captan. TmGST1 and TmGST3 mRNA expression also increased noticeably after captan exposure. Taken together, these results suggest that TmPOX5 and TmSOD4 mRNA can be used as biomarkers or xenobiotics sensors for captan exposure in T. molitor, while other detoxifying enzymes showed differential expression.
Background: Inactivation of tumor suppressor genes is believed to be important in the development of many human malignancies. Recently, several lines of evidence have indicated that the wild type p53 gene located at 17p13.3, may function as a tumor suppressor gene and that a mutant p53 gene could promote transformation by inactivating normal p53 function in a dominant negative fashion. These broad spectrum of p53 mutation in human cancers provide that mutant p53 and their protein may be potential targets of tumor diagnostic and therapeutic interventions. Method: Colony formation was performed to investigate growth suppressional ability. p53 expression pattern was examined by western blot and p53-mediated transactivation ability was assessed by CAT activity. SNU C2A cells were observed in apoptotic aspects induced by etoposide and $H_2O_2$ treatment, detecting sensitivity on agent, DNA fragmentation through agarose gel, chromatin condensation by fluorescence microscope, and cell cycle distribution by FACS. Result: 1) p53 mutant his179arg ($histidine{\rightarrow}arginine$) detected in SNU C2A cells lost transcriptional activity and growth suppression ability, showing dominant negative effect on its wild type p53. 2) Etoposide-treated SNU C2A cells induced apoptosis, exhibiting dramatic reduction of cell growth, DNA fragmentation, nuclear condensation formation of apoptotic body and increment of sub-G1 cell fraction. 3) Etoposide and $H_2O_2$-treated SNU C2A cells have no high increase of p53 expression and overexpressed p53 protein changed localization, from cytoplasm to nucleus. Also, p53-mediated transcriptional activity was increased by agents-treatment. Conclusion: SNU C2A cells coexpress wild-type and mutant p53 protein induced apoptosis in the condition on DNA damage, through localizational shift from cytoplasm to nucleus of p53 protein rather than the induction of p53 protein. SNU C2A cells derived mutant p53 his179arg abrogated both the growth supression ability and transactivational activity, showing inhibition effect on transcriptional activity of wild type p53, but did not repress the activity of wild type p53 in SNU C2A cells owing to dominant activity of wild type. These cell condition may provide new gene therapeutic implications leading effective antiproliferation of cell when mutant and wild-type p53 protein were co-expressed in cell.
Cu/Zn superoxide dismutase (SOD1) is a protective enzyme responsible for the dismutat ion of superoxide radicals within the cell by converting superoxide radicals to oxygen and hydrogen peroxide, which is in turn changed to oxygen and water by catalase. Previously, we reported that the panaxadiol (PD) and its ginsenoside $Rb_2$ induced the expression of SOD1 gene through AP2 binding site and its induction. Here, we examined the effect of subfractions of panaxadiol ginsenosides, which were extracted from different parts of ginseng root that possess various ratios of panaxadiol to panaxatriol, on the induction of SOD1 gene expression. To explore this possibility, the upstream regulatory region of SOD1 was linked to the chloramphenicol acetyl transferase (CAT) structural gene and introduced into human hepatoma HepG2 cells. We observed that the transcriptional activation of SOD1 was proportional to the contents ratio of panaxadiol ginsensides. Consistent with this results, the total extract portion prepared from the finely-hairy root, which contains the higher ratio of panaxadiol to panaxatriol about 2.6, increased the SODl transcription about 3 fold. This results suggest that the panaxadiol fraction could induce the SOD1 and total extract of the ginseng finely-hairy root would be a useful material as a functional food for the SOD1 inducer.
Go, Young Sam;Kim, Jung-Tae;Bae, Hwan Hee;Son, Beom-Young;Yi, Gibum;Ha, Jun Young;Kim, Sun-Lim;Baek, Seong-Bum
KOREAN JOURNAL OF CROP SCIENCE
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v.65
no.2
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pp.104-112
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2020
Maize is thought to be an alternative crop to rice in paddy fields for efficient field management and maintenance of rice production at appropriate levels in Korea. Thus efforts to breed waterlogging-tolerant maize cultivars have been ongoing. However, molecular studies related to waterlogging tolerance are limited for developing molecular markers to select waterlogging tolerant maize varieties. In this study, we examined molecular biological changes of B73 in the V3 stage after immersion treatment for 7 days. Overall growth of maize was lower in treated samples compared to non-immersed control samples. The length of leaf and root decreased by 21.3% and 50.6%, respectively and the weight of root reduced by 21.6%. Soil plant analysis development (SPAD) value and chlorophyll content of leaf also decreased by 55.7% and 35.3%, respectively. Reactive oxygen species (ROS) content of root increased by 46.5% at 2 hours in immersion treatment. In addition, immersed roots were 2.5-fold thickened with additional aerenchyma formation in the cortex. In order to identify the causes of these changes, we performed a microarray and found increased expression of genes, such as WIP1, PMIP2, EXPA1, TPS1, and MAS1, in immersed samples. These differentially expressed genes and expression of previously reported genes, including ALDH2, Wusl1032, UP-1, UP-2, and CAT2 were further confirmed with qRT-PCR. Here, we report 7 differentially expressed genes after immersing treatment, which may be utilized as useful resources for breeding waterlogging- tolerant maize.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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