The roles of conserved amino acid residues (Va1329-Ala330-Asn331-Glu332), constituting an extra sugar-binding space (ESBS) of Thermus maltogenic amylase (ThMA), were investigated by combinatorial saturation mutagenesis. Various ThMA mutants were firstly screened on the basis of starch hydrolyzing activity and their enzymatic properties were characterized in detail. Most of the ThMA variants showed remarkable decreases in their hydrolyzing activity, but their specificity against various substrates could be altered by mutagenesis. Unexpectedly, mutant H-16 (Gly-Leu-Val-Tyr) showed almost identical hydrolyzing and transglycosylation activities to wild type, whereas K-33 (Ser-Gly-Asp-Glu) showed an extremely low transglycosylation activity. Interestingly, K-33 produced glucose, maltose, and acarviosine from acarbose, whereas ThMA hydrolyzed acarbose to only glucose and acarviosine-glucose. These results propose that the substrate specificity, hydrolysis pattern, and transglycosylation activity of ThMA can be modulated by combinatorial mutations near the ESBS.
${\beta}$-Glucosylglycerol (${\beta}-GG$) and their derivatives have potential applications in food, cosmetics and the healthcare industry, including antitumor medications. In this study, ${\beta}-GG$ and its unnatural glycosides were synthesized through the transglycosylation of two enzymes, Sulfolobus shibatae ${\beta}$-glycosidase (SSG) and Deinococcus geothermalis amylosucrase (DGAS). SSG catalyzed a transglycosylation reaction with glycerol as an acceptor and cellobiose as a donor to produce 56% of ${\beta}-GGs$ [${\beta}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}1/3$)-$\text\tiny{D}$-glycerol and ${\beta}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}2$)-$\text\tiny{D}$-glycerol]. In the second transglycosylation reaction, ${\beta}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}1/3$)-$\text\tiny{D}$-glycerol was used as acceptor molecules of the DGAS reaction. As a result, 61% of ${\alpha}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}4$)-${\beta}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}1/3$)-$\text\tiny{D}$-glycerol and 28% of ${\alpha}$-$\text\tiny{D}$-maltopyranosyl-($1{\rightarrow}4$)-${\beta}$-$\text\tiny{D}$-glucopyranosyl-($1{\rightarrow}1/3$)-$\text\tiny{D}$-glycerol were synthesized as unnatural glucosylglycerols. In conclusion, the combined enzymatic synthesis of the unnatural glycosides of ${\beta}-GG$ was established. The synthesis of these unnatural glycosides may provide an opportunity to discover new applications in the biotechnological industry.
$\beta$ -Glucosidase-catalysed synthesis of glucosides with aromatic alcohols and monoterpene alcohols as accepters and cellobiose as a donor in the presence of various commercial $\beta$ -glucosidases were described. $\beta$ -Glucosidases from Aspergillus niger spp,. Trichoderma spp., Penicillium sup. and bitter almond have been shown to catalyze synthesis of $\beta$ -glucosides of benzyl alcohol, 2-hydroxybenzyl alcohol, 4-hydroxybenzyl alcohol, 2-phenylethyl alcohol, geraniol and citronellol in the presence of cellobiose as sugar donor. Among enzyme preparations tested, each $\beta$ -glucosides prepared from Aspergillus niger were isolated in the pure state by Diaion HP-20 and silica gel column chromatography. The products were identified as $\beta$ -glucosyl products of benzyl alcohol, 2-hydroxyhenzyl alcohol, 4-hydroxybenzyl alcohol, 2-phenyl ethyl alcohol, geraniol and citronellol by spectrometry (UV, IR, $^1$H-NMR, $^{13}$ C-NMR) and enzymatic hydrolysis with $\beta$ - glucosidase. Monoterpene alcohols with a sterically hindered hydroxyl group, such as linalool, $\ell$-menthol and $\alpha$-terpineol were not used as acceptors in transglycosylation reaction.
Enzymatic synthesis of glucosyl-sugar alcohols using various transglycosylating enzymes, such as cyclodextrin glucanotransferase (CGTase), ${\alpha}$-amylase, ${\alpha}$-glucosidase, and pullulanase was investigated using various sugar alcohols, such as sorbitol, xylitol, inositol, maltitol, and lactitol as glucosyl acceptors. CGTase showed the highest transglycosylating activity to sugar alcohols compared to other transglycosylating enzymes, and inositol and maltitol were the most suitable glucosyl acceptors. Soluble starch, extruded starch, cyclodextrins, and maltooligosaccharides were also identified to be adequate glucosyl donors for transglycosylation reaction of CGTase to sugar alcohols. The synthesis of glucosyl-maltitol in the reaction system using extruded starch as the glucosyl donor and maltitol as the glucosyl acceptor showed the best results showing the highest transglycosylation yield. The transglycosylation products were purified by activated carbon column chromatography with ethanol gradient elution. Chemical structures of above transglucosylated products were analyzed by nuclear magnetic resonance spectroscopy, and two products were identified to be maltotritol and maltotetraitol, in which one or two glucose molecules attached to the parent maltitol molecule by a ${\alpha}$-l,4-glucosidic bond, respectively.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.41
no.10
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pp.1417-1422
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2012
Alkyl glucosides were synthesized using the transglycosylation reaction of Celluclast, the cellulase from Trichoderma reesei, with cellobiose and various alcohols. Glucose as a by-product of the reaction was removed using the immobilized yeast system. Among the alkyl glucoside products, the acceptor products of methanol and ethanol were confirmed as methyl ${\beta}$-D-glucopyranoside and ethyl ${\beta}$-D-glucopyranoside via MALDI-TOF MS and enzymatic analysis. Optimal yields of methyl ${\beta}$-glucoside and ethyl ${\beta}$-glucoside were 65.3% (mol/mol) and 59.0% (mol/mol), respectively, based on cellobiose consumed.
Park, Hyun-Su;Choi, Kyoung-Hwa;Park, Young-Don;Park, Cheon-Seok;Cha, Jae-Ho
Journal of Life Science
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v.21
no.11
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pp.1631-1635
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2011
The capability of synthesizing polyphenol glycosides was examined using recombinant amylosucrase from the hyperthermophilic bacterium Deinococcus geothermalis. Based on the action mode of amylosucrase, sucrose and twenty-one polyphenols were used as a donor and acceptors respectively. The transglycosylation reaction by amylosucrase produced one or two major polyphenol glycosides depending on the type of polyphenols used. The synthesized polyphenol glycosides were detected by thin-layer chromatography. The structures of the newly synthesized polyphenol glycosides were predicted based on the transglycosylation mechanism of the enzyme. According to the acceptability of the polyphenols, the structural characteristics of polyphenol as an efficient acceptor were evaluated. The results indicate that amylosucrase is an efficient catalyst for the enzymatic synthesis of polyphenol glycosides, which have high potentials in food, cosmetics, and pharmaceutical industries.
Cyclodextrin glucanotransferase from Bacillus stearothemophilus and Bacillus macerans synthesized maltol and ethyl maltol monoglucoside, with a series of its maltooligo-glucosides by transglycosylation with dextrin as a donor, and maltol or ethyl maltol as an acceptor. The monoglucoside formed from reaction mixture of maltol or ethyl maltol by the successive actions of Bacillus stearothemophilus cyclodextrin glucanotransferase and Rhizopus glucoamylase was isolated by Diaion HP-20 column and silica gel column chromatography. The structure of the isolated monoglucoside was identified as maltol-$\alpha$-D-glucoside and ethyl maltol-$\alpha$-D-glucoside, respectively, by FAB-MS, UV, $^1$H-NMR, $^{13}$ C-NMR spectra and products by hydrolysis with acid, $\alpha$ - and $\beta$ -glucosidases.
The enzymatic properties of purified CGTase from alkalophilic Bacillus sp. YC-335 have been examined. Apparent Vmax values of the enzyme in transferring glycosyl residues ${\alpha}-,\;{\beta}-and\;{\gamma}-cyclodextrin(CD)$ to sucrose were $16.13,\;21.8\;and\;9.8{\mu}moles/min/mg\;protein$, respectively and Km values of the corresponding CD were 1.68, 0.33 and 0.37 mM, respectively. A number of saccharides, specially starch hydrolyzates such as glucose and maltose, could activate the dextrinizing activity of the enzym. However, the dextrinizing activity was inhibited by ${\beta}-CD$. It was found from Lineweaver-Burk plot that the inhibition of CGTase by ${\beta}-CD$ was noncompetitive. High performance liquid chromatographic analysis showed that the enzyme has three kinds of activity ; transglycosylation and disproportionation as well as cyclization.
Park, Na-Young;Cha, Jae-Ho;Kim, Dae-Ok;Park, Cheon-Seok
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.3
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pp.454-460
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2007
Enzymatic properties and substrate specificity of recombinant $\beta-glycosidases$ from a hyperthermophilic archaeon, Sulfolobus shibatae (rSSG), were analyzed. rSSG showed its optimum temperature and pH at $95^{\circ}C$ and pH 5.0, respectively. Thermal inactivation of rSSG showed that its half-life of enzymatic activity at $75^{\circ}C$ was 15 h whereas it drastically decreased to 3.9 min at $95^{\circ}C$. The addition of 10 mM of $MnCl_2$ enhanced the hydrolysis activity of rSSG up to 23% whereas most metal ions did not show any considerable effect. Dithiothreitol (DTT) and 2-mercaptoethanol exhibited significant influence on the increase of the hydrolysis activity of rSSG rSSG apparently preferred laminaribiose $(\beta1\rightarrow3Glc)$, followed by sophorose $(\beta1\rightarrow2Glc)$, gentiobiose $(\beta1\rightarrow6Glc)$, and cellobiose $(\beta1\rightarrow4Glc)$. Various. intermolecular transfer products were formed by rSSG in the lactose reaction, indicating that rSSG prefers lactose as a good acceptor as well as a donor. The strong intermolecular transglycosylation activity of rSSG can be applied in making functional oligosaccharides.
Park, Soyoon;Moon, Keumok;Park, Cheon-Seok;Jung, Dong-Hyun;Cha, Jaeho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.4
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pp.566-570
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2018
Because glycosylation of aesculetin and its 6-glucoside, aesculin, enhances their biological activities and physicochemical properties, whole-cell biotransformation and enzymatic synthesis methodologies using Neisseria polysaccharea amylosucrase were compared to determine the optimal production method for glycoside derivatives. High-performance liquid chromatography analysis of reaction products revealed two glycosylated products (AGG1 and AGG2) when aesculin was used as an acceptor, and three products (AG1, AG2, and AG3) when using aesculetin. The whole-cell biotransformation production yields of the major transfer products for each acceptor (AGG1 and AG1) were 85% and 25%, respectively, compared with 68% and 14% for enzymatic synthesis. These results indicate that whole-cell biotransformation is more efficient than enzymatic synthesis for the production of glycoside derivatives.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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