The cyclohexanol dehydrogenase (ChnA), produced by Rhodococcus sp. TK6, which is capable of growth on cyclohexanol as the sole carbon source, has been previously purified and characterized. However, the current study cloned the complete gene (chnA) for ChnA and its flanking regions using a combination of a polymerase chain reaction (PCR) based on the N-terminal amino acid sequence of the purified ChnA and plaque hybridization from a phage library of Rhodococcus sp. TK6. A sequence analysis of the 5,965-bp DNA fragment revealed five potential open reading frames (ORFs) designated as partial pte (phosphotriesterase), acs (acyl-CoA synthetase), scd (short chain dehydrogenase), stp (sugar transporter), and chnA (cyclohexanol dehydrogenase), respectively. The deduced amino acid sequence of the chnA gene exhibited a similarity of up to $53\%$ with members of the short-chain dehydrogenase/reductase (SDR) family. The chnA gene was expressed using the pET21 a(+) system in Escherichia coli. The activity of the expressed ChnA was then confirmed (13.6 U/mg of protein) and its properties investigated.
Salmonella typhi is one of important causes of human enteric infections. S. typhi KNIH100 was isolated from a patient of typhoid fever in Korea. We cloned a 5.0 kb SalⅠ fragment containing the aroA gene encoding a 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthetase from chromosomal DNA of this strain. This recombinant plasmid was named pSAL80. E. coli CGSC2829, an aroA- mutant, was not grown on the M9 minimal medium but E. coli CGSC2829 (pSAL80) was grown on the M9 minimal medium. The aroA gene was composed of 1,284 base pairs with ATG initiation codon and TAA termination codon. Sequence comparison of the aroA gene exhibited 99%, 98%, and 77% identity with those of S. typhi Ty2, S. typhimurium, and E. coli respectively. As in the cases of Shigella sonnei and E. coli, the serC and aroA genes lie in a single operonic structure.
We isolated three amplified DNA fragments from P. sajor-caju by Polmerase chain reaction (PCR) using the chithin synthase specific primers. Since the sequence analysis of the these fragments showed significant homology to the other known chitin synthase gene, we regarded these cloned fragments as PsCHS1, PsCHS2, and PsCHS3 according to their size. The PsCHS3, which showed the highest sequence homology (83% identity in amino acid level with ChsI of Rhizopus oligosporus in conserved region), was selected to see expression pattern of the corresponding gene. The result of RT-PCR using internal primer of the PsCHS3 fragment revealed that PsCHS3 gene was only expressed in cap and mycelium but not in stipe. In order to see whether the PsCHS3 gene was to be induced by wounding, the comparison of the mRNA level of this gene between wounded and unwounded mature cap showed at least two times induction of this gene by wounding treatment.
This paper describes the development of an enzymatic assay system for the identification of inhibitors of isocitrate lyase (ICL), one of the key enzymes of the glyoxylate cycle that is considered as a new target for antifungal drugs. A 1.6 kb DNA fragment encoding the isocitrate lyase from Candida albicans ATCC10231 was amplified by PCR, cloned into a vector providing His-Patch-thioredoxin-tag at the N-terminus, expressed in Escherichia coli, and purified by metal chelate affinity chromatography. The molecular mass of the purified ICL was approximately 62 kDa, as determined by SDS-PAGE, and the enzyme activity was directly proportional to incubation time and enzyme concentration. The effects of itaconate-related compounds on ICL activity were also investigated. Among them, itaconic acid, 3-nitropropionate, and oxalate had strong inhibitory activities with $IC_{50}$ values of 5.8, 5.4 and $8.6\;{mu}g/ml$, respectively. These inhibitors also exhibited antifungal activity on YPD agar media containing acetate as a sole carbon source, albeit at high concentration. The results indicate that the C. albicans ICL may be a regulatory enzyme playing a crucial role in fungal growth and is a prime target for antifungal agents.
Leptin is the adipocyte-specific product of the obese gene and plays a major role in food intake and energy metabolism. Leptin research was mainly focused on mammalian species, but understanding of leptin and its function in poultry is very poor. In this study, the duck leptin gene was amplified using the reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) from duck liver RNA. The cDNA fragment was inserted into the pET-28a expression vector, and the resulting plasmid was expressed in Escherichia coli BL21 (DE3). Experimental mice were given an intraperitoneal injection of 10 mg/kg leptin dissolved in phosphate buffered saline (PBS), while the control mice were injected with PBS. The effect of leptin on food intake, body weight and fatty deposition in mice was detected. Sequence analysis revealed that duck leptin had a length of 438 nucleotides which encoded a peptide with 146 amino acid residues. The sequence shares highly homology to other animals. The coding sequence of duck leptin was 84 and 86% identical to human and pig leptin nucleotides sequence. Highest identity was with the rat coding sequence (95%). The identity of the amino acid sequence was 84, 82 and 96% respectively compared to that of the human, pig and rat. Results of SDS-PAGE analysis indicated that a fusion protein was specifically expressed in E. coli BL21 (DE3). The purified product was found to be biologically active during tests. Continuous administration of recombinant duck leptin inhibited food intake. Despite the decrease of food intake, leptin significantly induced body weight and fatty deposition. These changes were accompanied by a significant down-secretion of plasma glucose, cholesterol, triglyceride and insulin levels in mice. The observations provide evidence for an inhibitory effect of leptin in the regulation of food intake and for a potential role of duck leptin in the regulation of lipogenesis.
Pleiomorphic adenoma gene-like1 (PLAGL1) encodes a zinc-finger (ZF) protein with seven ZFs of the C2H2-type which is a regulator of apoptosis and cell cycle arrest, and also regulates the secretion of insulin. In both human and mouse, PLAGL1 is a candidate gene for tumor suppressor and transient neonatal diabetes mellitus (TNDM). In this study, a 2,238 bp fragment covering the complete coding region was obtained and deposited to GenBank (accession number: DQ288899). The reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) indicated that PLAGL1 was expressed almost equally in heart, liver, spleen, lung, kidney, stomach, small intestine, skeletal muscle, fat, uterus and ovary. Comparing the sequences of Large White and Meishan pigs, a C-T transition in exon 6 was found. The polymorphism could be detected by TaqI and was genotyped in five purebreds (Large White, Landrace, Meishan, Tongcheng and Bamei). Association analysis was performed between the polymorphism and carcass traits in 276 pigs of a "Large White${\times}$Meishan" F2 resource population. As a consequence, significant associations of the genotypes with shoulder backfat thickness (SFT) and internal fat rate (IFR) were observed. Pigs with TT genotype had low SFT and high IFR compared with TC or CC genotypes.
Li, Yanan;Yang, Peilong;Meng, Kun;Wang, Yaru;Luo, Huiying;Wu, Ningfeng;Fan, Yuliu;Yao, Bin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.1
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pp.160-166
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2008
A DNA fragment containing 2,079 base pairs from Bacillus circulans CGMCC 1416 was cloned using degenerate PCR and inverse PCR. An open reading frame containing 981 bp was identified that encoding 326 amino acids residues, including a putative signal peptide of 31 residues. The deduced amino acid sequence showed the highest identity (68.1%) with $endo-{\beta}-1,4-D-mannanase$ from Bacillus circulans strain K-1 of the glycoside hydrolase family 5 (GH5). The sequence encoding the mature protein was cloned into the pET-22b(+) vector and expressed in Escherichia coli as a recombinant fusion protein containing an N-terminal hexahistidine sequence. The fusion protein was purified by $Ni^{2+}$ affinity chromatography and its hexahistidine tag cleaved to yield a 31-kDa ${\beta}$-mannanase having a specific activity of 481.55U/mg. The optimal activity of the purified protein, MANB48, was at $58^{\circ}C$ and pH 7.6. The hydrolysis product on substrate locust bean gum included a monosaccharide and mainly oligosaccharides. The recombinant MANB48 may be of potential use in the feed industry.
Excision and amplification of pre-determined, large genomic segments (taken directly from the genome of a natural host, which provides an alternative to conventional cloning in foreign vectors and hosts) was explored in human cells. In this approach, we devised a procedure for excising a large segment of human genomic DNA, the iNOS gene, by using the Cre/loxP system of bacteriophage P1 and amplifying the excised circles with the EBNA-1/oriP system of the Epstein-Barr virus. Two loxP sequences, each of which serves as a recognition site for recombinase Cre, were integrated unidirectionally into the 5'-UTR and 3'-UTR regions of the iNOS gene, together with an oriP sequence for conditional replication. The traps-acting genes cre and EBNA-1, which were under the control of a tetracycline responsive $P_{hcmv^*-1}$ promoter, were also inserted into the 5'-UTR and 3'-UTR regions of the iNOS gene, respectively, by homologous recombination. The strain carrying the inserted elements was stably maintained until the excision and amplification functions were triggered by the induction of cre and EBNA-1. Upon induction by doxycycline, Cre excised the iNOS gene that was flanked by two ZoxP sites and circularized it. The circularized iNOS gene was then amplified by the EBNA-1/oriP-system. With this procedure, approximately a 45.8-kb iNOS genomic fragment of human chromosome 17 was excised and successfully amplified in human cells. Our procedure can be used effectively for the sequencing of unclonable genes, the functional analysis of unknown genes, and gene therapy.
VvMSA, a grapevine ASR which is highly inducible by sugar and abscisic acid signals was previously shown to be a transcription factor for a hexose transporter gene VvHT1. We isolated a cDNA clone, VlASR which is regulated temporally during the grape berry development by ACP RT-PCR (annealing control primer reverse transcriptase-polymerase chain reaction) and it proved identical to VvMSA. RT-PCR and real-time PCR analyses revealed that the VlASR gene was expressed in berries at fruit set and that its expression increased as berries aged but decreased at the late ripening stage. In order to understand the regulatory mechanism of the asr gene, a genomic fragment was cloned from grapevine. The genomic DNA was 1375 bp long and a sugar box (sucrose box 3 and sucrose responsive element 1) was identified in the 611 bp upstream region of the open reading frame. Analysis of the VlASR promoter::reporter gene fusion demonstrated that this promoter was expressed in transgenic Arabidopsis even without sucrose treatment. This result suggests that the ASR/VvHT1-mediated sugar/ABA signaling, previously reported in grapevine, may not function in Arabidopsis which has no ASR homologue.
Yang Lark Choi;Seung Jin Lee;Ok Ryul Song;Soo Yeol Chung;Young Choon Lee
Journal of Life Science
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v.10
no.4
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pp.397-402
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2000
Polyphosphate kinase catalyzes the formation of polyphosphate from ATP. To understand the mechanism of phosphate accumulation, the Serratia marcescens gene encoding ppk was cloned from the genomic library by the method of Southern hybridization. The hybridization positive DNA fragment region from pDH3 was subcloned into the expression vector. The ppk gene product, a polypeptide of 75 kDa, was confirmed by SDS-PAGE. Expression of the Serratia marcescens ppk is regulated by the catabolite repression system. The enzyme activity polyphosphate kinase was increased in the E. coli strain harboring plasmid pMH4 with ppk gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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