Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.12
no.7
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pp.3096-3102
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2011
Vanilloid receptor, TRPV1 (transient receptor potential vanilloid 1) is a non-selective cation channel that responds to a variety of pain-eliciting material including capsaicin, pH, heat. Although, membrane trafficking of TRPV1 was not much known so far, TRPV1 was reported to interact with FIP3 (family of Rab11 interacting protein 3). FIP3 was identified as one of Rab11 interacting proteins that is recently reported important in membrane trafficking of several channel proteins directly or indirectly. Therefore, in this study, we examined the role of Rab11 in the membrane trafficking of TRPV1 using cell biological and biochemical techniques. Rab11 was found really colocalized with TRPV1 based on the result of confocal microscopy. However, GST-pulldown assay, one of biochemical technique, found that Rab11 did not interact with TRPV1. Although Rab11 does not interact with TRPV1 directly, we hypothesized that Rab11 is indeed involved in the membrane trafficking of TRPV1. In order to examine further the role of Rab11 in the membrane trafficking of TRPV1, the expression of TRPV1 on the membrane was examined when the expression of Rab11 was decreased down to about 50% by siRNA technique and found decreased significantly. From this result, we can conclude that Rab11 is involved in the membrane trafficking of TRPV1 in a way of including FIP3.
Activation of transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1), a calcium permeable channel expressed in primary sensory neurons, induces the release of glutamate from their central and peripheral afferents during normal acute and pathological pain. However, little information is available regarding the glutamate release mechanism associated with TRPV1 activation in primary sensory neurons. To address this issue, we investigated the expression of vesicular glutamate transporter (VGLUT) in TRPV1-immunopositive (+) neurons in the rat trigeminal ganglion (TG) under normal and complete Freund's adjuvant (CFA)-induced inflammatory pain conditions using behavioral testing as well as double immunofluorescence staining with antisera against TRPV1 and VGLUT1 or VGLUT2. TRPV1 was primarily expressed in small and medium-sized TG neurons. TRPV1+ neurons constituted approximately 27% of all TG neurons. Among all TRPV1+ neurons, the proportion of TRPV1+ neurons coexpressing VGLUT1 (VGLUT1+/TRPV1+ neurons) and VGLUT2 (VGLUT2+/TRPV1+ neurons) was 0.4% ± 0.2% and 22.4% ± 2.8%, respectively. The proportion of TRPV1+ and VGLUT2+ neurons was higher in the CFA group than in the control group (TRPV1+ neurons: 31.5% ± 2.5% vs. 26.5% ± 1.2%, VGLUT2+ neurons: 31.8% ± 1.1% vs. 24.6% ± 1.5%, p < 0.05), whereas the proportion of VGLUT1+, VGLUT1+/TRPV1+, and VGLUT2+/TRPV1+ neurons did not differ significantly between the CFA and control groups. These findings together suggest that VGLUT2, a major isoform of VGLUTs, is involved in TRPV1 activation-associated glutamate release during normal acute and inflammatory pain.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.12
no.1
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pp.312-317
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2011
Vanilloid receptor TRPV1 (known as capsaicin channel, transient receptor potential vanilloid 1) is known to be a key protein in the pain signal transduction. However, the proteins controlling the activity of the channel are not much known yet. Recently mouse Rab11-FIP3 (Rab11-family interaction protein 3) was found and reported to interact with rat TRPV1. Rab11 has been shown to play a key role in a variety of cellular processes including plasma membrane recycling, phagocytosis, and transport of secretory proteins from the trans-Golgi network. Therefore, Rab11-FIP3 was proposed to be involved in the membrane trafficking of TRPV1. In this study, the unreported rat Rab11-FIP3 was yet cloned in order to show the specific interaction of the TRPV1 and Rab11-FIP3 in the same species of rat and to examine the membrane trafficking of TRPV1. The result showed that rat Rab11-FIP3 is expected to have 489 amino acids and showed 80% identity with that of human and over 90% identity with that of mouse. Rab11-FIP3 was found to be expressed in heart, brain, kidney, testis using northern and western blot analyses. We also found that rat Rab11-FIP3 was colocalized with rat TRPV1 but not with TRPV2 of same family in the rat brain by using immunohistochemistry showing that two proteins interact specifically, suggesting the role of Rab11-FIP3 in the membrane trafficking.
Not much is known about the membrane trafficking of TRPV1, a key player in pain transduction. Rab11-FIP3, which plays a role in various intracellular transportation pathways, has been reported to interact with TRPV1. In this study, in order to examine the role of Rab11-FIP3 in the membrane trafficking of TRPV1, Rab11-FIP3 expression in dorsal root ganglion (DRG) was inhibited using a siRNA technique. Transportation of TRPV1 to membranes was found to decrease when Rab11-FIP3 expression was inhibited, consistent with the results obtained with TRPV1-transfected HEK cells. Taken together, these results indicate that Rab11-FIP3 plays a role in the membrane trafficking of TRPV1.
Siregar, Adrian S.;Nyiramana, Marie Merci;Kim, Eun-Jin;Shin, Eui-Jung;Kim, Chang-Woon;Lee, Dong Kun;Hong, Seong-Geun;Han, Jaehee;Kang, Dawon
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.34
no.4
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pp.311-317
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2019
Reproductive potential decreases with age. A decrease in male fertility is due to a combination of morphological and molecular alterations in the testes. Transient receptor potential vanilloid receptor-1 (TRPV1) is associated with aging and lifespan, and its activation causes apoptotic cell death in various cell types. However, the effect of TRPV1 on testicular apoptosis in aged mice has not yet been reported. TRPV1 knockout (KO) mice had a longer lifespan than that of wild-type (WT) mice. Lifespan was increased by 11.8% in male TRPV1 KO mice compared to that in WT mice. TRPV1 KO males lived approximately 100 days longer than WT males on average, and the maximum lifespan was markedly extended in TRPV1 KO mice compared with that in WT mice. The TRPV1 expression levels were highly increased in the testes of older mice. TRPV1 was expressed in the entire testes region of the old mice. In addition, old TRPV1 KO mice had lower testicular apoptosis than that of WT mice. Our results show that TRPV1 induces testicular apoptosis and suggest that TRPV1 may be associated with testicular aging.
TRPA1 and TRPV1 are members of the TRP superfamily of structurally related, nonselective cation channels. TRPA1 and TRPV1 are often co-expressed in sensory neurons and play an important role in somatosense such as cold, pain, and irritants. The first leaves of Kalopanax pictus Nakai (Araliaceae) have long been used as a culinary ingredient in Korea because of their unique chemesthetic flavor. In this study, we observed the intracellular $Ca^{2+}$ response to cultured cells expressing human TRPA1 (hTRPA1) and human TRPV1 (hTRPV1) by $Ca^{2+}$ imaging analysis to investigate the ability of the first leaves of K. pictus to activate the hTRPA1 and hTRPV1. An 80% ethanol extract of K. pictus (KPEx) increased intracellular $Ca^{2+}$ influx in a response time- and concentration-dependent manner via either hTRPA1 or hTRPV1. KPEx-induced response to hTRPA1 was markedly attenuated by ruthenium red, a general blocker of TRP channels, and HC-030031, a specific antagonist of TRPA1. In addition, the intracellular $Ca^{2+}$ influx attained with KPEx to hTRPV1 was mostly blocked by ruthenium red, and capsazepine, a specific antagonist of TRPV1. These results indicate that KPEx selectively activates both hTRPA1 and hTRPV1, which may provide evidence that the first leaves of K. pictus primarily activate TRPA1 and TRPV1 to induce their unique chemesthetic sense.
Purpose: Previous reports have shown that hyperglycemia-induced inhibition of transient receptor potential vanilloid sub type 4 (TRPV4), a transient receptor potential ion channel, affects the severity of hearing impairment (HI). In this study, we explored the role of TRPV4 in HI using HEI-OC1 cells exposed to high glucose (HG). Materials and Methods: HEI-OC1 cells were cultured in a HG environment (25 mM D-glucose) for 48 hours, and qRT-PCR and Western blotting were used to analyze the expression of TRPV4 at the mRNA and protein level. TRPV4 agonist (GSK1016790A) or antagonist (HC-067047) in cultured HEI-OC1 cells was used to obtain abnormal TRPV4 expression. Functional TRPV4 activity was assessed in cultured HEI-OC1 cells using the MTT assay and a cell death detection ELISA. Results: TRPV4 agonists exerted protective effects against HG-induced HI, as evidenced by increased MTT levels and inhibition of apoptosis in HEI-OC1 cells. TRPV4 overexpression significantly increased protein levels of phosphorylated p38 mitogen-activated protein kinase (p-p38 MAPK), while TRPV4 antagonists had the opposite effect. Our results indicated that TRPV4 is a hyperglycemia-related factor that can inhibit cell proliferation and promote cell apoptosis by activating the MAPK signaling pathway in HEI-OC1 cells. Conclusion: Our results show that the overexpression of TRPV4 can attenuate cell death in HEI-OC1 cells exposed to HG.
Trigeminal primary afferents expressing $P2X_3$ or transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1) are involved in the transmission of nociceptive information. In order to characterize $P2X_3$- and TRPV1-immunopositive neurons in the trigeminal ganglion (TG) and trigeminal caudal nucleus (Vc), we performed immunofluorescence experiments using anti-$P2X_3$ and anti-TRPV1 antisera and a morphometric analysis. 77.4% (1,401/1.801) of all the $P2X_3$-postive neurons coexpressed TRPV1 and 51.9% (1,401/2,698) of all the THFV1-immunopositive neurons also costained for $P2X_3$ in the TG. Immunoreactivity for both $P2X_3$ and TRPV1 were present in medium-sized neurons but not in small- and large-sized neurons. $P2X_3$ and/or TRPV1-immunopositive fibers were observed in the primary afferents and their associated axons in the Vc. These fibers and terminals were distributed in the superficial lamina of Vc: $P2X_3$-immunopositive fibers and terminals were distributed in the lamina I and II, expecially in the inner part of lamina II (lamina IIi), whereas TRPV1-immunopositive ones were densely detected in the lamina I and outer part of lamina II (lamina IIo). Immunopositive fibers and terminals for both $P2X_3$ and TRPV1 were observed on the border between lamina IIi and IIo. These results suggest that terminals coexpressing $P2X_3$ and TRPV1 are involved in specific roles in the transmission and processing of orofacial nociceptive information.
A mammalian cell renovates itself by autophagy, a process through which cellular components are recycled to produce energy and maintain homeostasis. Recently, the abundance of gap junction proteins was shown to be regulated by autophagy during starvation conditions, suggesting that transmembrane proteins are also regulated by autophagy. Transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1), an ion channel localized to the plasma membrane and endoplasmic reticulum (ER), is a sensory transducer that is activated by a wide variety of exogenous and endogenous physical and chemical stimuli. Intriguingly, the abundance of cellular TRPV1 can change dynamically under pathological conditions. However, the mechanisms by which the protein levels of TRPV1 are regulated have not yet been explored. Therefore, we investigated the mechanisms of TRPV1 recycling using HeLa cells constitutively expressing TRPV1. Endogenous TRPV1 was degraded in starvation conditions; this degradation was blocked by chloroquine (CLQ), 3MA, or downregulation of Atg7. Interestingly, a glucocorticoid (cortisol) was capable of inducing autophagy in HeLa cells. Cortisol increased cellular conversion of LC3-I to LC-3II, leading autophagy and resulting in TRPV1 degradation, which was similarly inhibited by treatment with CLQ, 3MA, or downregulation of Atg7. Furthermore, cortisol treatment induced the colocalization of GFP-LC3 with endogenous TRPV1. Cumulatively, these observations provide evidence that degradation of TRPV1 is mediated by autophagy, and that this pathway can be enhanced by cortisol.
Repeated morphine administration induces tolerance to its analgesic effects. A previous study reported that repeated morphine treatment activates transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1) expression in the sciatic nerve, dorsal root ganglion, and spinal cord, contributing to morphine tolerance. In the present study, we analyzed TRPV1 expression and binding sites in supraspinal pain pathways in morphine-tolerant mice. The TRPV1 mRNA levels and binding sites were remarkably increased in the cortex and thalamus of these animals. Our data provide additional insights into the effects of morphine on TRPV1 in the brain and suggest that changes in the expression of, and binding to TRPV1 in the brain are involved in morphine tolerance.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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