To construct a highly sensitive detection system for endocrine disruptors (EDs), we have compared the activity of promoters with the n-alkane-inducible cytochrome P450 gene (ALK1), isocitrate lyase gene (ICL1), ribosomal protein S7 gene (RPS7), and the translation elongation factor-1${\alpha}$ gene (TEF1) for the heterologous gene in Yarrowia lipolytica. The promoters were introduced into the upstream of the lacZ or hERa reporter genes, respectively, and the activity was evaluated by ${\beta}$-galactosidase assay for lacZ and Western blot analysis for hER${\alpha}$. The expression analysis revealed that the ALK1 and ICL1 promoters were induced by n-decane and by EtOH, respectively. The constitutive promoter of RPS7 and TEF1 showed mostly a high level of expression in the presence of glucose and glycerol, respectively. In particular, the TEF1 promoter showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity and a significant signal by Western blotting with the anti-estrogen receptor, compared with the other promoters. Moreover, the detection system was constructed with promoters linked to the upstream of the expression vector for the hER${\alpha}$ gene transformed into the Y. lipolytica with a chromosome-integrated lacZ reporter gene under the control of estrogen response elements (EREs). It was indicated that a combination of pTEF1p-hER${\alpha}$ and CXAU1-2XERE was the most effective system for the $E_2$-dependent induction of the ${\beta}$-galactosidase activity. This system showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity at $10^{-6}\;M\;E_2$, and the activity could be detected at even the concentration of $10^{-10}\;M\;E_2$. As a result, we have constructed a strongly sensitive detection system with Y. lipolitica to evaluate recognized/suspected ED chemicals, such as natural/synthetic hormones, pesticides, and commercial chemicals. The results demonstrate the utility, sensitivity, and reproducibility of the system for identifying and characterizing environmental estrogens.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.21
no.1
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pp.53-66
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1995
The gene for ${\gamma}$-casein, a milk protein, is a member of a family of casein gene which is expressed in mammary glands of the animal during the late gestation and lactation periods binder the influence of various hormones. In order to elucidate tile mechanisms b)'which hormones regulate the coordinate induction of milk protein genes, the mouse ${\gamma}$-casein gene was isolated and characterized. The ${\gamma}$-casein gene was screened from a mouse genomic library constructed in bacteriophage EMBL3 with the ${\gamma}$-casein CDNA used as probe and one clone was obtained. The ${\gamma}$-casein CDNA as probe was partially sequenced and contained ATG start codon and 5'-noncoding region. The cloned genomic DNA was digested with Sal I restriction enzyme, by which the insert DNA can be isolated from EMBL3 vector. Three DNA bands were observed and the size of DNAs was approximately 28kb, 14kb and 9Kb, respectively Accordingly the size of the insert DNA was calculated with approximately 23Kb. The result of Southern blot analysis, however, showed that the cloned genomic DNA was not hybridized with the synthetic oligonucleotides (40 mer) of cDNA 5'-end region, but it was hybridized with the y -casein CDNA. This means that tile cloned y -casein gene may not contain its promoter region. The ${\gamma}$ -casein genomic DNA containing the promoter region has been screening from mouse genomic library with oligonucleotides of CDNA 5'-end region as probe, and twenty-nine clones was obtained.
The alkaline protease gene was cloned from a halo-tolerant alkalophilic Bacillus clausii I-52 isolated from the heavily polluted tidal mud flat of West Sea in Inchon Korea, which produced a strong extracellular alkaline protease (BCAP). Based on the full genome sequence of Bacillus subtilis, PCR primers were designed to allow for the amplification and cloning of the intact pro-BCAP gene including promoter region. The full-length gene consists of 1,143 bp and encodes 381 amino acids, which includes 29 residues of a putative signal peptide and an additional 77-amino-acid propeptide at its N-terminus. The mature BCAP deduced from the nucleotide sequence consists of 275 amino acids with a N-terminal amino acid of Ala, and a relative molecular weight and pI value was 27698.7 Da and 6.3, respectively. The amino acid sequence shares the highest similarity (99%) to the nattokinase precursor from B. subtilis and subtilisin E precursor from B. subtilis BSn5. The substrate specificity indicated that the recombinant BCAP could hydrolyze efficiently the synthetic substrate, N-Suc-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA,and did not hydrolyze the substrates with basic amino acids at the P1 site. The recombinant BCAP was strongly inhibited by typical serine protease inhibitor, PMSF, indicating that BCAP is a member of the serine proteases.
Kim, Bumjoon;Kim, Byeong Chan;Lee, Ho Joung;Lee, Sang Jun
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.49
no.4
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pp.534-542
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2021
Single-molecular guide RNA (sgRNA) plays a role in recognizing the DNA target sequence in CRISPR technology for genome editing and gene expression control. In this study, we systematically compared the length of the target recognition sequence in sgRNAs required for genome editing using Cas9-NG (an engineered Cas9 recognizing 5'-NG as PAM sequence) and gene expression control using deactivated Cas9-NG (dCas9-NG) by targeting the gal promoter in E. coli. In the case of genome editing, the truncation of three nucleotides in the target recognition sequence (TRS) of sgRNA was allowed. In gene expression regulation, we observed that target recognition and binding were possible even if eleven nucleotides were deleted from twenty nucleotides of the TRS. When 4 or more nucleotides are truncated in the TRS of the sgRNA, it is thought that the sgRNA/Cas9-NG complex can specifically bind to the target DNA sequence, but lacks endonuclease activity to perform genome editing. Our study will be helpful in the development of artificial transcription factors and various CRISPR technologies in the field of synthetic biology.
Ferulic acid (FA) is a phytochemical with various bioactive properties. It has recently been proposed that due to its phytogenic action it can be used as an alternative growth promoter additive to synthetic compounds. The objective of the present study was to evaluate the growth performance, carcass traits, fiber characterization and skeletal muscle gene expression on hair-lambs supplemented with two doses of FA. Thirty-two male lambs (n = 8 per treatment) were individually housed during a 32 d feeding trial to evaluate the effect of FA (300 and 600 mg d-1) or zilpaterol hydrochloride (ZH; 6 mg d-1) on growth performance, and then slaughtered to evaluate the effects on carcass traits, and muscle fibers morphometry from Longissimus thoracis (LT) and mRNA abundance of β2-adrenergic receptor (β2-AR), MHC-I, MHC-IIX and IGF-I genes. FA increased final weight and average daily gain with respect to non-supplemented animals (p < 0.05). The ZH supplementation increased LT muscle area, with respect to FA doses and control (p < 0.05). Cross-sectional area (CSA) of oxidative fibers was larger with FA doses and ZH (p < 0.05). Feeding ZH increased mRNA abundance for β2-AR compared to FA and control (p < 0.05), and expression of MHC-I was affected by FA doses and ZH (p < 0.05). Overall, FA supplementation of male hair lambs enhanced productive variables due to skeletal muscle hypertrophy caused by MHC-I up-regulation. Results suggest that FA has the potential like a growth promoter in lambs.
Tocopherols are essential lipophilic antioxidant in human cells, while little is known about its function in plant tissues. To study the impact of composition and content of tocopherols on stress tolerance, tobacco (Nicotiana tabacum) was transformed with a construct containing a cDNA insert encoding $\gamma$-tocopherol methyltransferase ($\gamma$-TMT/VTE4) from perilla under the control of the cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S promoter. The transgenic tobacco was confirmed by PCR and RT-PCR. The total content and composition of tocopherols in the transgenic lines were similar with wild type controls. However, chlorophyll-a and carotenoid content in the transgenic lines were increased by up to 45% (P<0.01) and 39% (P<0.02), respectively. Also, the over-expression of $\gamma$-TMT increased the salt stress tolerance in tobacco plants. These results demonstrate that over-expression of $\gamma$-TMT gene in tocopherol bio-synthetic pathway can increase salt stress tolerance and contents of chlorophyll-a and carotenoid in transgenic tobacco plants.
Kim, Su-mi;Lim, Sangyong;Park, Si Jae;Joo, Jeong Chan;Choi, Jong-il
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.45
no.3
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pp.271-275
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2017
The expression of Deinococcus radiodurans dr1558 and pprM genes was examined for enhanced lysine production in recombinant Corynebacterium glutamicum. These genes are known to confer high tolerance to pH and osmotic shock in Escherichia coli. D. radiodurans dr1558 and pprM genes were expressed in C. glutamicum by using 6 synthetic promoters of different strengths, to evaluate the effect of expression efficiency on lysine production. Recombinant C. glutamicum expressing DR1558 under the L26 and I64 promoters showed higher lysine production than that expressing DR1558 under other promoters. Similarly, recombinant C. glutamicum expressing PprM under same promoters (L26 and I64) showed a higher increase in lysine production compared to that expressing PprM under other promoters. In the absence of $CaCO_3$ in the medium, the expression of DR1558 or PprM also increased lysine concentration in C. glutamicum depending on the promoter used. Together, these results suggest that genes involved in radiation tolerance in D. radiodurans can be used to enhance production of amino acids and their derivatives.
To determine the site at which -1 ribosomal frameshifting occurs within the gag-pro overlap of HTL V-I. DNA fragment corresponding to a portion of the gene overlap was cloned into a SP6 vector. The resultant plasmid harbors the hybrid gene consisting of a synthetic gene encoding 5 amino acids derived from chick prelysozyme including the initiator methionine plus 141 nucleotides of gag-pro overlapping region followed by Staphylococcus aurcus protein A gene fragment. In vitro transcription by SP6 RNA polymerase with this DNA template made an abundant amount of single species mRNA. Cell-free translation programmed with the RNA transcribed in vitro yielded a polypeptide of 21 kDal in size. which could be purified into homogeneity by IgG-Sepharose affinity chromatography. In vitro system described in this study must be useful for rapid purification and sequencing of the Gag-Pro transframe protein. allowing to determine the exact frameshift site on mRNA and to identify the tRNA involved in frameshifting event for the expression of pro gene.
Park, Ji-Young;Kang, Hee-Kyoung;Jin, Xing-Ji;Ahn, Joon-Seob;Kim, Seung-Heuk;Kim, Do-Won;Kim, Do-Man
한국생물공학회:학술대회논문집
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2005.10a
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pp.644-648
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2005
Dextranase (${\alpha}$-1,6-D-glucan-6-glucanogydrolase:E.C. 3.2.1.11) catalyzes the hydrolysis of ${\alpha}$-(1.6) linkages of dextran. A lsd1 gene encoding an extracellular dextranase was isolated from the genomic DNA of L. starkeyi. The lsd11 gene is a synthetic dextranase (lsd1) after codon optimization for gene expression with Pichia pastoris system. A open reading frame of lsd11 gene was 1827 bp and it was inserted into the pPIC3.5K expression vector. The plasmid linearized by Sac I was integrated into the 5'AOX region of the chromosomal DNA of P. pastoris. The lsd11 gene fragment encoding a mature protein of 608 amino acids with a predicted molecular weight of 70 kDa, was expressed in the methylotrophic yeast P. pastoris by controling the alcohol oxidase-1 (AOX1) promoter. The recombinant lds11 was optimized by using the shake-flask expression and upscaled using fermentation technology. More than 9.8 mg/L of active dextranase was obtained after induction by methanol. The optimum pH of LSD11 was found to be 5.5 and the optimum temperature $28^{\circ}C$.
Soriano, Francesc X.;Baxter, Paul;Murray, Lyndsay M.;Sporn, Michael B.;Gillingwater, Thomas H.;Hardingham, Giles E.
Molecules and Cells
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v.27
no.3
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pp.279-282
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2009
"Two-cysteine" peroxiredoxins are antioxidant enzymes that exert a cytoprotective effect in many models of oxidative stress. However, under highly oxidizing conditions they can be inactivated through hyperoxidation of their peroxidatic active site cysteine residue. Sulfiredoxin can reverse this hyperoxidation, thus reactivating peroxiredoxins. Here we review recent investigations that have shed further light on sulfiredoxin's role and regulation. Studies have revealed sulfiredoxin to be a dynamically regulated gene whose transcription is induced by a variety of signals and stimuli. Sulfiredoxin expression is regulated by the transcription factor AP-1, which mediates its up-regulation by synaptic activity in neurons, resulting in protection against oxidative stress. Furthermore, sulfiredoxin has been identified as a new member of the family of genes regulated by Nuclear factor erythroid 2-related factor (Nrf2) via a conserved cis-acting antioxidant response element (ARE). As such, sulfiredoxin is likely to contribute to the net antioxidative effect of small molecule activators of Nrf2. As discussed here, the proximal AP-1 site of the sulfiredoxin promoter is embedded within the ARE, as is common with Nrf2 target genes. Other recent studies have shown that sulfiredoxin induction via Nrf2 may form an important part of the protective response to oxidative stress in the lung, preventing peroxiredoxin hyperoxidation and, in certain cases, subsequent degradation. We illustrate here that sulfiredoxin can be rapidly induced in vivo by administration of CDDO-TFEA, a synthetic triterpenoid inducer of endogenous Nrf2, which may offer a way of reversing peroxiredoxin hyperoxidation in vivo following chronic or acute oxidative stress.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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