To design gene deliver systems which can deliver higher amounts of genes into stem cells, we studied the expression of receptors involved in the receptor-mediated endocytosis of bone marrow stromal stem cells. Bone marrow was isolated from ICR mice, and bone marrow stromal stem cells were isolated based on their plastic adherence property. Several culture conditions were screened for effective and continuous culture of marrow stromal stem cells. MesenCult medium was finally used to cultivate marrow stromal stem cells in vitro. As candidate receptors, various chemokine receptors were studied. Both bone marrow cells ad marrow-derived stromal stem cells showed expression of CC chemokine receptors (CCR) and CXC chemokine receptors (CXCR). Marrow stromal stem cells showed higher expression of CCR5 ad CXCR4 chemokine receptors as compared to other types of chemokine receptors. Moreover, though the expression of chemokine receptors generally decreased in most chemokine receptors with the cultivaton of marrow stromal stem cells, CCR5 and CXCR4 chemokine receptors retained the higher level of receptor expressions over prolonged periods. These results suggest that the ligands exhibiting specific binding to CCR5 or CXCR4 might be used to modify gene delivery systems for increased levels of receptor-mediated gene delivery into stromal stem cells.
Microfluidics can provide unique experimental tools to visualize the development of neural structures within a microscale device, which is followed by guidance of neurite growth in the axonal isolation compartment. We utilized microfluidics technology to monitor the differentiation and migration of neural cells derived from human embryonic stem cells (hESCs). We co-cultured hESCs with PA6 stromal cells, and isolated neural rosette-like structures, which subsequently formed neurospheres in suspension culture. Tuj1-positive neural cells, but not nestin-positive neural precursor cells (NPCs), were able to enter the microfluidics grooves (microchannels), suggesting that neural cell-migratory capacity was dependent upon neuronal differentiation stage. We also showed that bundles of axons formed and extended into the microchannels. Taken together, these results demonstrated that microfluidics technology can provide useful tools to study neurite outgrowth and axon guidance of neural cells, which are derived from human embryonic stem cells.
Purwaningrum, Medania;Jamilah, Nabila Syarifah;Purbantoro, Steven Dwi;Sawangmake, Chenphop;Nantavisai, Sirirat
Journal of Veterinary Science
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v.22
no.6
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pp.74.1-74.13
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2021
Tissue engineering has been extensively investigated and proffered to be a potential platform for novel tissue regeneration. The utilization of mesenchymal stem cells (MSCs) from various sources has been widely explored and compared. In this regard, MSCs derived from bone marrow have been proposed and described as a promising cell resource due to their high yield of isolated cells with colony-forming potential, self-renewal capacity, MSC surface marker expression, and multi-lineage differentiation capacities in vitro. However, there is evidence for bone marrow MSCs (BM-MSCs) both in vitro and in vivo from different species presenting identical and distinct potential stemness characteristics. In this review, the fundamental knowledge of the growth kinetics and stemness properties of BM-MSCs in different animal species and humans are compared and summarized. Finally, to provide a full perspective, this review will procure results of current information studies focusing on the use of BM-MSCs in clinical practice.
Ha, Yoon;Yoon, Do Heum;Yeon, Dong Su;Kim, Hyun Ok;Lee, Jin Ju;Cho, Yong Eun;Choi, Joong Uhn
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.30
no.8
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pp.963-969
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2001
Objectives : Cord blood stem cells have been widely used as donor cells for bone marrow transplantation recently. These cells can give rise to a variety of hematopoietic lineages to repopulate the blood. Recent observations reveal that some bone marrow cells and bone marrow stromal cells(MSCs) can grow to become either neurons or glial cells. It is, however, unclear whether or not there exists stems cells which can differentiate into neurons in the blood during the early stages of postnatal life. Methods : Human cord blood stem cells were prepared from human placenta after full term delivery. To induce neuronal differentiation of stem cells, ${\beta}$-mercaptoethanol was treated. To confirm the neuro-glial characteristics of differentiated stem cells, immunocytochemical stain for NeuN, neurofilament, glial fibrillary acidic protein(GFAP), microtubule associated protein2(MAP2) was performed. RT-PCR was performed for detecting nestin mRNA and MAP2 mRNA. Results : We showed in this experiment that neuro-glial markers(NeuN, neurofilament, MAP2, GFAP) were expressed and axon-like cytoplasmic processes are elaborated in the cultured human cord blood stem cells prepared from new born placenta after full term delivery. Nestin mRNA was also detected in fresh cord blood monocytes. Conclusions : These results suggest that human cord blood derived stem cells may be potential sources of neurons in early postnatal life.
Soo-Been Jeon; A-Reum Han;Yoo Bin Choi;Ah Reum Lee;Ji Yoon Lee
International Journal of Stem Cells
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v.16
no.1
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pp.108-116
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2023
γδ T cells are a rare and unique prototype of T cells that share properties with natural killer cells in secondary lymphoid organs. Although many studies have revealed the function and importance of adult-derived γδ T cells in cancer biology and regenerative medicine, the low numbers of these cells hamper their application as therapeutic cell sources in the clinic. To solve this problem, pluripotent stem cell-derived γδ T cells are considered alternative cell sources; however, few studies have reported the generation of human pluripotent stem cell-derived γδ T cells. In the present study, we investigated whether lymphoid lineage γδ T cells were successfully generated from human pluripotent stem cells via hemogenic endothelium under defined culture conditions. Our results revealed that pluripotent stem cells successfully generated γδ T cells with an overall increase in transcriptional activity of lymphoid lineage genes and cytolytic factors, indicating the importance of the optimization of culture conditions in generating lymphoid lineage γδ T cells. We uncovered an initial step in differentiating γδ T cells that could be applied to basic and translational investigations in the field of cancer biology. Based on our result, we will develop an appropriate method to purify γδ T cells with functionality and it helpful for the study of basic mechanism of γδ T cells in pathophysiologic condition as well as clinic application.
Purpose: We investigated the neurogenic potentials of amniotic fluid-derived stem cells (AFSCs) according to the expression levels of stem cell markers and ingredients in the neural induction media. Materials and Methods: Four samples of AFSCs with different levels of Oct-4 and c-kit expression were differentiated neurally, using three kinds of induction media containing retinoic acid (RA) and/or a mixture of 3-isobutyl-1-methylxanthine/indomethacin/insulin (neuromix), and examined by immunofluorescence and reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) for their expression of neurospecific markers. Results: The cells in neuromix-containing media displayed small nuclei and long processes that were characteristic of neural cells. RT-PCR analysis revealed that the number of neural markers showing upregulation was greater in cells cultured in the neuromix-containing media than in those cultured in RA-only medium. Neurospecific gene expression was also higher in Oct-4 and c-kit double-positive cells than in c-kit-low or -negative cells. Conclusion: The stem cell marker c-kit (rather than Oct-4) and the ingredient neuromix (rather than RA) exert greater effects on neurogenesis of AFSCs.
Researches for stem cells have been focused on scientists in biomedical sciences as well as clinical application for its great therapeutic potentials. Stem cells have two distinct characteristics: self-renewal and differentiation. In this short review, the links between stem cell research and biomedical engineering is discussed based on the basic characteristics of stem cells. This concept can be extended to the fundamental questions of biological sciences for cells such as proliferation, apoptosis, differentiation, and migration. For understanding proliferation and apoptosis of stem cells, techniques from biomedical engineering such as surface patterning, MEMS, nanotechnologies have been used. The advanced technologies such as microfluidic technologies, three dimensional scaffold fabrication, and mechanical/electrical stimulation have also been used in cell differentiation and migration. Basic and unsolved questions in the stem cell research field have limitations by studying conventional technologies. Therefore, the strategic fusion between stem cell biology and novel biomedical engineering field will break the barriers for understanding fundamental questions of stem cells, which can open the window for the clinical applications of stem cell based therapeutics as well as regeneration of damaged tissues.
Dayem, Ahmed Abdal;Lee, Soo Bin;Kim, Kyeongseok;Lim, Kyung Min;Jeon, Tak-il;Cho, Ssang-Goo
BMB Reports
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v.52
no.5
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pp.295-303
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2019
Breakthroughs in stem cell technology have contributed to disease modeling and drug screening via organoid technology. Organoid are defined as three-dimensional cellular aggregations derived from adult tissues or stem cells. They recapitulate the intricate pattern and functionality of the original tissue. Insulin is secreted mainly by the pancreatic ${\beta}$ cells. Large-scale production of insulin-secreting ${\beta}$ cells is crucial for diabetes therapy. Here, we provide a brief overview of organoids and focus on recent advances in protocols for the generation of pancreatic islet organoids from pancreatic tissue or pluripotent stem cells for insulin secretion. The feasibility and limitations of organoid cultures derived from stem cells for insulin production will be described. As the pancreas and gut share the same embryological origin and produce insulin, we will also discuss the possible application of gut organoids for diabetes therapy. Better understanding of the challenges associated with the current protocols for organoid culture facilitates development of scalable organoid cultures for applications in biomedicine.
Human embryonic stem (ES) cells are derived from the inner cell mass of the preimplantation embryo and have the capacity to differentiate into various types of cells in the body. Hence, these cells may potentially be an indefinite source of cells for cell therapy in various degenerative diseases including neuronal disorders. For clinical applications of human ES cells, directed differentiation of these cells would be necessary. The objective of this study is to develop the culture condition for the expansion of neural precursor cells derived from human ES cells. Human ES cells were able to differentiate into neural precursor cells upon a stepwise culture condition. Neural precursor cells were propagated up to 5000-fold in cell numbers over 12-week period of culture and evaluated for their characteristics. Expressions of sox1 and pax6 transcripts were dramatically up-regulated along the differentiation stages by RT-PCR analysis. In contrast, expressions of oct4 and nanog transcripts were completely disappeared in neural precursor cells. Expressions of nestin, pax6 and sox1 were also confirmed in neural precursor cells by immunocytochemical analysis. Upon differentiation, the expanded neural precursor cells differentiated into neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. In immunocytochemical analysis, expressions of type III ${\beta}$-tubulin and MAP2ab were observed Presence of astrocytes and oligodendrocytes were also confirmed by expressions of GFAP and O4, respectively. Results of this study demonstrate the feasibility of long-term expansion of human ES cell-derived neural precursor cells in vitro, which can be a potential source of the cells for the treatment of neurodegenerative disorders.
Neural stem cells (NSCs) can proliferate and differentiate into multiple cell types that constitute the nervous system. NSCs can be derived from developing fetuses, embryonic stem cells, or induced pluripotent stem cells. NSCs provide a good platform to screen drugs for neurodegenerative diseases and also have potential applications in regenerative medicine. Natural products have long been used as compounds to develop new drugs. In this review, natural products that control NSC fate and induce their differentiation into neurons or glia are discussed. These phytochemicals enable promising advances to be made in the treatment of neurodegenerative diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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