This study aimed to characterize a lytic Salmonella Typhimurium-specific (ST) phage and its biofilm control capability against S. Typhimurium biofilm on polypropylene surface. ST phage was isolated, propagated, and purified from water used in a slaughterhouse. The morphology of ST phage was observed via transmission electron microscopy. Its bactericidal effect was evaluated by determining bacterial concentrations after the phage treatment at various multiplicities of infection (MOIs) of 0.01, 1.0, and 100. Once the biofilm was formed on the polypropylene tube after incubation at 37℃ for 48 h, the phage was treated and its antibiofilm capability was determined using crystal violet staining and plate count method. The phage was isolated and purified at a final concentration of ~11 log PFU/mL. It was identified as a myophage with an icosahedral head (~104 nm) and contractile tail (~90-115 nm). ST phage could significantly decrease S. Typhimurium population by ~2.8 log CFU/mL at an MOI of 100. After incubation for 48 h, biofilm formation on polypropylene surface was confirmed with a bacterial population of ~6.9 log CFU/cm2. After 1 h treatment with ST phage, the bacterial population in the biofilm was reduced by 2.8 log CFU/cm2. Therefore, these results suggest that lytic ST phage as a promising biofilm control agent for eradicating S. Typhimurium biofilm formed on food contact surfaces.
Protein expression patterns in Salmonella enterica subspecies enterica serovar Typhimurium (S. Typhimurium) strains with diverse phenotypes, such as phage type, antibiotic resistance pattern and plasmid profiles were examined. For detailed analysis of proteins expressed by different S. Typhimurium strains, protein fractions were divided into detergent-rich phase (DP) and aqueous phase (AP) using triton X-114 detergent. The two phases were subjected to two-dimensional gel electrophoresis (2-DE), followed by protein identification using peptide mass fingerprinting (PMF). In the results, PMF showed that DP fractions consisted mainly of outer membrane proteins, whereas the AP fractions included cytosolic proteins. Comparison of 2-DE profiles of DP did not show any distinct protein spots which could be correlated with phage type, antibiotic resistance pattern or plasmid profile. However, comparisons of 2-DE profiles of the AP revealed differences in the protein spots, which could be correlated with the plasmid profile and phage types. Among these protein spots, flagellin was specific for strains containing a 90 kb plasmid. Compared to DT193 phage type, three protein spots in the range of pI 5.0-5.5 and MW 8-15 kDa of AP 2-DE profiles were absent in the DT104 phage types. Additionally, a protein spot with PI in the range of 4.5-5.0 and molecular weight (MW) between 51-69 kDa was specific for phage type DT104, while a protein spot with pI in the range of 4.0-4.8 and MW between 18-20 kDa was specific for DT193 phage type. These protein spots may be useful for discriminating phage types of S. Typhimurium.
Choi, In Young;Park, Do Hyeon;Chin, Brayan A.;Lee, Cheonghoon;Lee, Jinyoung;Park, Mi-Kyung
Journal of Animal Science and Technology
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v.62
no.5
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pp.668-681
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2020
The purpose of this study was aimed to isolate a Salmonella Typhimurium-specific phage (KFS-ST) from washing water in a poultry processing facility and to investigate the feasibility of the KFS-ST as a novel bio-receptor for the magnetoelastic (ME) biosensor method. KFS-ST against S. Typhimurium was isolated, propagated, and purified using a CsCl-gradient ultracentrifugation. Morphological characteristics of KFS-ST were analyzed using transmission electron microscopy (TEM). Its specificity and efficiency of plating analysis were conducted against 39 foodborne pathogens. The temperature and pH stabilities of KFS-ST were investigated by the exposure of the phage to various temperatures (-70℃-70℃) and pHs (1-12) for 1 h. A one-step growth curve analysis was performed to determine the eclipse time, latent time and burst size of phage. The storage stability of KFS-ST was studied by exposing KFS-ST to various storage temperatures (-70℃, -20℃, 4℃, and 22℃) for 12 weeks. KFS-ST was isolated and purified with a high concentration of (11.47 ± 0.25) Log PFU/mL. It had an icosahedral head (56.91 ± 2.90 nm) and a non-contractile tail (225.49 ± 2.67 nm), which was classified into the family of Siphoviridae in the order of Caudovirales. KFS-ST exhibited an excellent specificity against only S. Typhimurium and S. Enteritidis, which are considered two of the most problematic Salmonella strains in the meat and poultry. However, KFS-ST did not exhibit any specificity against six other Salmonella and 27 non-Salmonella strains. KFS-ST was stable at temperature of 4℃ to 50℃ and at pH of 4 to 12. The eclipse time, latent time, and burst size of KFS-ST were determined to be 10 min, 25 min and 26 PFU/ infected cell, respectively. KFS-ST was relatively stable during the 12-week storage period at all tested temperatures. Therefore, this study demonstrated the feasibility of KFS-ST as a novel bio-receptor for the detection of S. Typhimurium and S. Enteritidis in meat and poultry products using the ME biosensor method.
Choi, In Young;Lee, Ju-Hoon;Kim, Hye-jin;Park, Mi-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.12
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pp.2151-2155
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2017
Bacteriophages have gained substantial attention as biocontrol and biorecognition agents, substituting antibodies. In this study, a Salmonella Enteritidis-specific bacteriophage, KFS-SE1, was isolated, identified, and characterized. This Siphoviridae phage infects S. Enteritidis with high specificity. This phage is highly stable under various pH (5-11), temperature ($4-60^{\circ}C$), and organic solvent conditions. The KFS-SE1 genome consisted of 59,715 bp with 73 predicted open reading frames and 57.14% GC content; it had a complete set of genes required for phage reconstruction. Comparative phylogenetic analysis of KFS-SE1 revealed that it was very similar to the other Salmonella phages in the Siphoviridae family. These characteristics suggest that KFS-SE1 with its high specificity and host lysis activity toward S. Enteritidis may have various potential applications.
Salmonella is one of the principal causes of foodborne outbreaks. As traditional control methods have shown less efficacy against emerging Salmonella serotypes or antimicrobial-resistant Salmonella, new approaches have been attempted. The use of lytic phages for the biocontrol of Salmonella in the food industry has become an attractive method owing to the many advantages offered by the use of phages as biocontrol agents. Phages are natural alternatives to traditional antimicrobial agents; they have proven effective in the control of bacterial pathogens in the food industry, which has led to the development of different phage products. The treatment with specific phages in the food industry can prevent the decay of products and the spread of bacterial diseases, and ultimately promotes safe environments for animal and plant food production, processing, and handling. After an extensive investigation of the current literature, this review focuses predominantly on the efficacy of phages for the successful control of Salmonella spp. in foods. This review also addresses the current knowledge on the pathogenic characteristics of Salmonella, the prevalence of emerging Salmonella outbreaks, the isolation and characterization of Salmonella-specific phages, the effectiveness of Salmonella-specific phages as biocontrol agents, and the prospective use of Salmonella-specific phages in the food industry.
Pullorum disease affecting poultry is caused by Salmonella enterica serovar Pullorum and results in severe economic loss every year, especially in countries with a developing poultry industry. The pathogenesis of S. Pullorum is not yet well defined, as the specific virulence factors still need to be identified. Thus, to isolate specific DNA fragments belonging to S. Pullorum, this study used suppression subtractive hybridization. As such, the genome of the S. Pullorum C79-13 strain was subtracted from the genome of Salmonella enterica serovar Gallinarum 9 and Salmonella enterica serovar Enteritidis CMCC(B) 50041, respectively, resulting in the identification of 20 subtracted fragments. A sequence homology analysis then revealed three types of fragment: phage sequences, plasmid sequences, and sequences with an unknown function. As a result, several important virulence-related genes encoding the IpaJ protein, colicin Y, tailspike protein, excisionase, and Rhs protein were identified that may play a role in the pathogenesis of S. Pullorum.
At the present study, it was aimed to explore the molecular genetic characterization of multiple antimicrobial resistant Salmonella spp. isolates from pigs and cattle. A total of 138 Salmonella Typhimurium (S. Typhimurium) isolates were typed with phage, among them, 83.3% of S. Typhimurium tested could divide into a 10 phage types. Definitive type 193 (DT193) (25.4%) and DT195 (24.6%) were exhibited as the dominant types. DT104 and U302 were found from pigs and cattle. On the other hand, S. Enteritidis had 6 phage types, of them, phage type 21 (PT21) and PT11b were the popular types. In the plasmid profiles, 135 of S. Typhimurium isolates were exhibited 1 to 6 plasmid bands which molecular weight ranged from 90 to 2kb. 35 isolates (25.4%) harbored a 90kb plasmid which is thought to be the serotype specific virulence plasmid. Two of twenty five S. Enteritidis had common plasmids at 2 and 1.5kb. With multiplex polymerase chain reaction, virulence genes (invA and spvC) were detected from all Salmonella spp. from 167 of S. Typhimurium, S. Enteritidis and chloramphenicol resistant S. Schwarzengrund, but some drug resistant genes, such as PSE-1, cml/tetR and flo were not determined but other drug resistant genes, for example TEM and int were found. The detection rates of spvC, TEM and int gene was 35.3%, 29.3% and 72.5%, respectively. The TEM gene was highly popular in S. Typhimurium, which was detected from ampicillin and amoxicillin resistant strains as 95.9%. int gene was able to detect from all the isolates identified as multidrug resistsnt (MDR), particularly DT193 was thought as the most prevalent virulence and multidrug resistance isolate. The major plasmid profile and drug resistance pattern of DT193 were 90, 40, 10.5, 6.3, 3.0kb and ACCbDNaPSSuT, respectively. MDR was commonly found in other phage types, particularly DT104, U302 and DT203.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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