Song, Hye Jin;Kim, Mi-Sun;Lee, Hong Gu;Jin, Mu Hyun;Lee, Sang Hwa
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.42
no.2
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pp.173-181
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2016
Skin basement membrane (BM) is a specialized structure that binds dermis and epidermis of the skin and plays an important role in maintaining skin structure. Structural change and destruction of BM is reported to appear due to UV exposure and aging, which may contribute to skin aging including wrinkle formation and a decrease in elasticity of the skin. One of the key components of the BM is laminin-332 (LN-332), and is a major contributor to epidermal-dermal attachment. In this study, we elucidated the effects of Meladrium firmum hexane fraction (MFHF) on LN-332 expression in HaCaT, a human keratinocyte cell line. Quantitative real-time PCR (RT-PCR) and immunoblot analysis revealed that MFHF induced upregulation of LN-332 gene and protein expression. Next, cells were treated with p38 MAPK inhibitor (SB202190) prior to MFHF treatment to analyze the signaling pathway contributing to LN-332 expression. The mRNA and protein levels of LN-332 expression were suppressed completely by pretreatment with p38 MAPK inhibitor. Furthermore, MFHF also increased the mRNA level of collagen type VII and integrin ${\alpha}6$ of skin BM component. These results collectively suggest that MFHF may have potential as an effective agent to stimulate the synthesis of BM components, and could be used to improve phenomenon of skin aging ascribed to the structural and functional impairments of BM in aged human skin.
Peptidoglycan (PG) is found in atheromatous lesions of arteries, where monocytes/macrophages express inflammatory cytokines, including tumor necrosis factor-alpha ($TNF-{\alpha}$). This study investigated the effects of PG on $TNF-{\alpha}$ expression and examined possible cellular factors involved in $TNF-{\alpha}$ upregulation. The overall aim was to identify the molecular mechanisms underlying inflammatory responses to bacterial pathogen-associated molecular patterns in the artery. Exposure of human THP-1 monocytic cells to PG enhanced the secretion of $TNF-{\alpha}$ and induced its gene transcription. Inhibition of TLR-2/4 with OxPAPC significantly inhibited $TNF-{\alpha}$ gene expression, whereas inhibition of LPS by polymyxin B did not. The PG-induced expression of $TNF-{\alpha}$ was also significantly suppressed by pharmacological inhibitors that modulate activities of cellular signaling molecules; for example, U0126 (an ERK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), and SP6001250 (a JNK inhibitor) significantly attenuated PG-induced transcription of $TNF-{\alpha}$ and secretion of its gene product. $TNF-{\alpha}$ expression was also inhibited by rapamycin (an mTOR inhibitor), LY294002 (a PI3K inhibitor), and Akt inhibitor IV (an Akt inhibitor). ROS-regulating compounds, like NAC and DPI, also significantly attenuated $TNF{\alpha}$ expression induced by PG. These results suggest that PG induces $TNF-{\alpha}$ expression in monocytes/macrophages by multiple molecules, including TLR-2, PI3K, Akt, mTOR, MAPKs, and ROS.
The expression of interleukin-1α (IL-1α) is elevated in monocytic cells, such as monocytes and macro-phages, within atherosclerotic arteries, yet the cellular molecules involved in cytokine upregulation remain unclear. Because peptidoglycan (PG), a major component of gram-positive bacterial cell walls, is detected within the inflammatory cell-rich regions of atheromatous plaques, it was investigated if PG contributes to IL-1α expression in monocytes/macrophages. Exposure of THP-1 monocytic cells to PG resulted in elevated levels of IL-1α gene transcripts and increased secretion of IL-1α protein. The transcription and secretion of IL-1α were abrogated by OxPAPC, an inhibitor of TLR2/4, but not by polymyxin B that inhibits lipopolysaccharide-induced TLR4 activation. To understand the molecular mechanisms of the inflammatory responses due to bacterial pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) in diseased arteries, we attempted to determine the cellular factors involved in the PG-induced upregulation of IL-1α expression. Pharmacological inhibition of cell signaling pathways with LY294002 (a PI3K inhibitor), Akti IV (an inhibitor of Akt activation), rapamycin (an mTOR inhibitor), U0126 (a MEK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), SP6001250 (a JNK inhibitor), and DPI (a NOX inhibitor) also significantly attenuated the PG-mediated expression of IL-1α. These results suggest that PG induces the monocytic or macrophagic expression of IL-1α, thereby contributing to vascular inflammation, via multiple signaling molecules, including TLR2, PI3K/Akt/mTOR, and MAPKs.
Kim, Kang-Seung;Rhim, Byung-Yong;Eo, Seong-Kug;Kim, Koan-Hoi
Biomolecules & Therapeutics
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v.19
no.3
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pp.302-307
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2011
Peptidoglycan (PGN) is detected in inflammatory cell-rich regions of human atheromatous plaques. The present study investigated the effects of PGN on CC chemokine ligand 3 (CCL3) expression, which is elevated in the atherosclerotic arteries, and determined cellular factors involved in PGN-mediated CCL3 up-regulation in mononuclear cells, with the goal of understanding the molecular mechanisms of inflammatory responses to bacterial pathogen-associated molecular patterns in diseased arteries. Exposure of human monocytic leukemia THP-1 cells to PGN resulted in enhanced secretion of CCL3 and profound induction of the CCL3 gene transcript. Both events were abrogated by oxidized 1-palmitoyl-2-arachidonosyl-sn-phosphatidylcholine, an inhibitor of Toll-like receptors 2/4. Pharmacological inhibitors such as U0126, SP6001250, Akt inhibitor IV, rapamycin, RO318220, diphenyleneiodonium chloride, and N-acetylcysteine also significantly attenuated PGN-mediated CCL3 up-regulation. However, polymyxin B, LY294002, and SB202190 did not influence CCL3 expression. We propose that PGN contributes to enhanced CCL3 expression in atherosclerotic plaques and that Toll-like receptors (TLR2), Akt, mTOR, mitogen-activated protein kinase, and reactive oxygen species are involved in that process.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2002.07a
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pp.238-238
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2002
We studied whether kinase pathways are involved in TCDD-induced gene expression by treating specific kinase inhibitors ncluding MEK1 inhibitor PD98059, p38 inhibitor SB202190, PI-3 kinase inhibitor Wortmannin or LY294002 or protein tyrosine kinase inhibitor Genestein and then tested the effects of individual inhibitors on TCDD-induced gene expression of cytochromelAl gene (CYPlAl). Our results show that PD98059, MEK-1 inhibitor reduces dioxin-inducible transcription of CYPlAl. p44/p42MAPK, that is phosphorylated by Mek-1, are phosphorlylated by treatment of TCDD, peaking at lnM, 30min treatments. Overexpressions of p44/p42 MAPK dominant negative mutants suppress dioxin dependent transcription of DRE-driven reporter gene in a dose-dependent manner. Our results demonstrate that p44/p42 MAPK is essential for transcriptional activity of AHR/ARNT heterodimer. We found that PD98059 dose-dependently blocks TCDD-induced DRE binding of the AHR/ARNT heterodimer, thereby it reduces TCDD-induced gene expression. Therefore, our results indicate that Mek-1/p44/p42 MAPK pathway is involved in TCDD-induced gene expression, [This study was supported by a grant from Korean Research Foundation Grant (X01529)to H. Park]
The protein kinase $CK2{\alpha}$ (formerly Casein Kinase II) is implicated in tumorigenesis and transformation. However, the mechanisms of $CK2{\alpha}$ activation in breast cancer have yet to be elucidated. This study investigated the mechanisms of $CK2{\alpha}$ activation in estrogen signaling. Estrogen increased reactive oxygen species (ROS) production, $CK2{\alpha}$ activity, and protein expression in estrogen receptor positive ($ER^+$) MCF-7 human breast cancer cells, which were inhibited by the antioxidant N-acetyl-L-cysteine. $H_2O_2$ enhanced $CK2{\alpha}$ activity and protein expression. Human epidermal growth factor (EGF) increased ROS production, $CK2{\alpha}$ activity and protein expression in EGF receptor 2 (HER2)-overexpressing MCF-7 (MCF-7 HER2) cells, but not in MCF-7 cells. Estrogen induced the phosphorylation of p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK). The p38 inhibitor, SB202190, blocked estrogen-induced increases in ROS production, $CK2{\alpha}$ activity and $CK2{\alpha}$ protein expression. The data suggest that ROS/p38 MAPK is the key inducer of $CK2{\alpha}$ activation in response to estrogen or EGF.
Heat shock proteins (HSPs) serve as molecular chaperones and play a role in cell protection from damage in response to stress stimuli. The aim of this article is to investigate whether HSP22 affects IL-8 expression in vascular smooth muscle cells (VSMCs), and which cellular factors are involved in the HSP-mediated IL-8 induction in that cell type in terms of mitogen activated protein kinase (MAPK) and transcription element. Exposure of aortic smooth muscle cells (AoSMCs) to HSP22 not only enhanced IL-8 release but also induced IL-8 transcript via promoter activation. HSP22 activated ERK and p38 MAPK in AoSMCs. HSP22-induced IL-8 release was inhibited by U0126, but not by SB202190. A mutation in the IL-8 promoter region at the binding site of NF-${\kappa}$ B, but not AP-1 or C/EBP, impaired promoter activation in response to HSP22. Delivery of I ${\kappa}$ B, but not dominant negative c-Jun, lowered HSP22-induced IL-8 release from AoSMCs. These results suggest that HS P22 induces IL-8 in VSMCs via ERK1/2, and that transcription factor NF-kB may be required for the HSP22-induced IL-8 up-regulation.
Cho, Young-Suk;Kim, Chan Hyung;Ha, Tae-Sun;Lee, Sang Jin;Ahn, Hee Yul
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.2
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pp.133-137
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2013
Vascular cell adhesion molecule 1 (VCAM-1), intercellular adhesion molecule 1 (ICAM-1), P- and E-selectin play a pivotal role for initiation of atherosclerosis. Ginsenoside, a class of steroid glycosides, is abundant in Panax ginseng root, which has been used for prevention of illness in Korea. In this study, we investigated the mechanism(s) by which ginsenoside Rg2 may inhibit VCAM-1 and ICAM-1 expressions stimulated with lipopolysaccharide (LPS) in human umbilical vein endothelial cell (HUVEC). LPS increased VCAM-1 and ICAM-1 expression. Ginsenoside Rg2 prevented LPS-mediated increase of VCAM-1 and ICAM-1 expression. On the other hand, JSH, a nuclear factor kappa B (NF-${\kappa}B$) inhibitor, reduced both VCAM-1 and ICAM-1 expression stimulated with LPS. SB202190, inhibitor of p38 mitogen-activated protein kinase (p38 MAPK), and wortmannin, phosphatidylinositol 3-kinase (PI3-kinase) inhibitor, reduced LPS-mediated VCAM-1 but not ICAM-1 expression. PD98059, inhibitor of mitogen-activated protein kinase kinase/extracellular signal-regulated kinase (MEK/ERK) did not affect VCAM-1 and ICAM-1 expression stimulated with LPS. SP600125, inhibitor of c-Jun N-terminal kinase (JNK), reduced LPS-mediated ICAM-1 but not VCAM-1 expression. LPS reduced IkappaB${\alpha}$ ($I{\kappa}B{\alpha}$) expression, in a time-dependent manner within 1 hr. Ginsenoside Rg2 prevented the decrease of $I{\kappa}B{\alpha}$ expression stimulated with LPS. Moreover, ginsenoside Rg2 reduced LPS-mediated THP-1 monocyte adhesion to HUVEC, in a concentration-dependent manner. These data provide a novel mechanism where the ginsenoside Rg2 may provide direct vascular benefits with inhibition of leukocyte adhesion into vascular wall thereby providing protection against vascular inflammatory disease.
We investigated the question of whether cholesterol catabolite can influence expression of inflammatory cytokines via Toll-like receptors (TLR) in monocytic cells. Treatment of THP-1 monocytic cells with 27-hydroxycholesterol (27OHChol) resulted in induction of gene transcription of TLR6 and elevated level of cell surface TLR6. Addition of FSL-1, a TLR6 agonist, to 27OHChol-treated cells resulted in transcription of the $IL-1{\alpha}$ gene and enhanced secretion of the corresponding gene product. However, cholesterol did not affect TLR6 expression, and addition of FSL-1 to cholesterol-treated cells did not induce expression of $IL-1{\alpha}$. Using pharmacological inhibitors, we investigated molecular mechanisms underlying the expression of TLR6 and $IL-1{\alpha}$. Treatment with Akt inhibitor IV or U0126 resulted in significantly attenuated expression of TLR6 and $IL-1{\alpha}$ induced by 27OHChol and 27OHChol plus FSL-1, respectively. In addition, treatment with LY294002, SB202190, or SP600125 resulted in significantly attenuated secretion of $IL-1{\alpha}$. These results indicate that 27OHChol can induce inflammation by augmentation of TLR6-mediated production of $IL-1{\alpha}$ in monocytic cells via multiple signaling pathways.
Leukotactin(Lkn)-1 is a CC chemokine and is upregulated in macrophages in response to Mycobacterium tuberculosis (MTB) infection. We investigated whether mitogen-activated protein kinases (MAPKs) are involved in MTB-induced expression of Lkn-1. The up-regulation of Lkn-1 by infection with MTB was inhibited in cells treated with inhibitors specific for JNK (SP600125) or p38 MAPK (SB202190). Since the up-regulation of Lkn-1 by MTB has been reported to be mediated by the PI3-K/PDK1/Akt signaling, we examined whether JNK and/or p38 MAPK are also involved in this signal pathway. MTB-induced Akt phosphorylation was blocked by treatment with JNK- or p38 MAPK-specific inhibitors implying that p38 and JNK are upstream of Akt. In addition, treatment with the PI3-K-specific inhibitor inhibited MTB-stimulated activation of JNK or p38 MAPK implying that PI3-K is upstream of JNK and p38 MAPK. These results collectively suggest that JNK and p38 MAPK are involved in the signal pathway responsible for MTB-induced up-regulation of Lkn-1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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