Post-transcriptional regulation is an indispensable cellular mechanism of gene expression control that dictates various cellular functions and cell fate decisions. Recently, various chemical RNA modifications, termed the "epitranscriptome," have been proposed to play crucial roles in the regulation of post-transcriptional gene expression. To date, more than 170 RNA modifications have been identified in almost all types of RNA. As with DNA modification-mediated control of gene expression, regulation of gene expression via RNA modification is also accomplished by three groups of proteins: writers, readers, and erasers. Several emerging studies have revealed that dysregulation in RNA modification is closely associated with tumorigenesis. Notably, the molecular outcomes of specific RNA modifications often have opposite cellular consequences. In this review, we highlight the current progress in the elucidation of the mechanisms of cancer development due to chemical modifications of various RNA species.
During the last decade small regulatory RNA (srRNA) emerged as central players in the regulation of gene expression in all kingdoms of life. Multiple pathways for srRNA biogenesis and diverse mechanisms of gene regulation may indicate that srRNA regulation evolved independently multiple times. However, small RNA pathways share numerous properties, including the ability of a single srRNA to regulate multiple targets. Some of the mechanisms of gene regulation by srRNAs have significant effect on the abundance of free srRNAs that are ready to interact with new targets. This results in indirect interactions among seemingly unrelated genes, as well as in a crosstalk between different srRNA pathways. Here we briefly review and compare the major srRNA pathways, and argue that the impact of srRNA is always at the system level. We demonstrate how a simple mathematical model can ease the discussion of governing principles. To demonstrate these points we review a few examples from bacteria and animals.
Piras, Vincent;Selvarajoo, Kumar;Fujikawa, Naoki;Choi, Sang-Dun;Tomita, Masaru;Giuliani, Alessandro;Tsuchiya, Masa
Genomics & Informatics
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제5권3호
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pp.107-112
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2007
MicroRNAs (miRNAs) are known to negatively control protein-coding genes by binding to messenger RNA (mRNA) in the cytoplasm. In innate immunity, the role of miRNA gene silencing is largely unknown. In this study, we performed microarray-based experiments using lipopolysaccharide (LPS)-stimulated macrophages derived from wild-type, MyD88 knockout (KO), TRIF KO, and MyD88/TRIF double KO mice. We employed a statistical approach to determine the importance of the commonality and specificity of miRNA binding sites among groups of temporally co-regulated genes. We demonstrate that both commonality and specificity are irrelevant to define a priori groups of co-down regulated genes. In addition, analyzing the various experimental conditions, we suggest that miRNA regulation may not only be a late-phase process (after transcription) but can also occur even early (1h) after stimulation in knockout conditions. This further indicates the existence of dynamic interactions between miRNA and signaling molecules/transcription factor regulation; this is another proof for the need of shifting from a 'hard-wired' paradigm of gene regulation to a dynamical one in which the gene co-regulation is established on a case-by-case basis.
MicroRNAs are non-coding short (~23 nucleotides) RNAs that mediate post-transcriptional regulation through sequence-specific gene silencing. The role of miRNAs in neuronal development, synapse formation and synaptic plasticity has been highlighted. However, the role of neuronal activity on miRNA regulation has been less focused. Neuronal activity-dependent regulation of miRNA may finetune gene expression in response to synaptic plasticity and memory formation. Here, we provide an overview of miRNA regulation by neuronal activity including high-throughput screening studies. We also discuss the possible molecular mechanisms of activity-dependent induction and turnover of miRNAs.
Both glycerol-phosphate acyltransferase (GPAT) and 7.2 kb mRNAs were present at the highest level in liver. Glycerol-phosphate acyltransferase and 7.2 kb mRNA levels increased dramatically when fasted mice were refed a high carbohydrate diet. In mature 3T3-L1 adipocytes, insulin increased both glycerol-phosphate acyltransferase and 7.2kb mRNA levels 2.6 to 3-fold while dibutyryl cAMP decreased mRNA levels by 50% and 80%, respectively. These results indicate positive regulation by insulin and negative regulation by dibutyryl cAMP of both glycerol-phosphate acyltransferase and 7.2 kb mRNA.
Park, Hongmarn;Yoon, Yeongseong;Suk, Shinae;Lee, Ji Young;Lee, Younghoon
BMB Reports
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제47권11호
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pp.619-624
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2014
Antisense RNA is a type of noncoding RNA (ncRNA) that binds to complementary mRNA sequences and induces gene repression by inhibiting translation or degrading mRNA. Recently, several small ncRNAs (sRNAs) have been identified in Escherichia coli that act as antisense RNA mainly via base pairing with mRNA. The base pairing predominantly leads to gene repression, and in some cases, gene activation. In the current study, we examined how the location of target sites affects sRNA-mediated gene regulation. An efficient antisense RNA expression system was developed, and the effects of antisense RNAs on various target sites in a model mRNA were examined. The target sites of antisense RNAs suppressing gene expression were identified, not only in the translation initiation region (TIR) of mRNA, but also at the junction between the coding region and 3' untranslated region. Surprisingly, an antisense RNA recognizing the upstream region of TIR enhanced gene expression through increasing mRNA stability.
The regulation of actin gene expression during the differentiation of Naegleria gruberi was examined. Actin mRNA concentration was maximal in amoebae and decreased rapidly after the initiation of differentiation. At 20 min after initiation, the concentration of actin mRNA decreased to 55% of the maximal value. The actin mRNA concentration decreased to the minimum at 80 min (15% of the maximum), and then began to increase slightly at the end of differentiation. This decrease of actin mRNA concentration was regulated by the repression of actin gene transcription based on nuclear run-on transcription experiments. The rates of transcription of actin gene in nuclei prepared at 40 and 80 min after the initiation of differentiation were 50 and 28% of that of nuclei prepared at the beginning of differentiation, respectively. The addition of cycloheximide at the initiation of differentiation inhibited both the rapid decrease in the concentration of actin mRNA and the repression of actin gene transcription. These results suggest that the rapid decrease in the concentration of actin mRNA during the differentiation of N. gruberi is accomplished by the repression of actin gene transcription and this transcriptional regulation requires continuous protein synthesis during the differentiation.
The meiotic process from the primordial stage to zygote in female germ cells is mainly adjusted by post-transcriptional regulation of pre-existing maternal mRNA and post-translational modification of proteins. Several key proteins such as the cell cycle regulator, Cdk1/cyclin B, are post-translationally modified for precise control of meiotic progression. The second messenger (cAMP), kinases (PKA, Akt, MAPK, Aurora A, CaMK II, etc), phosphatases (Cdc25, Cdc14), and other proteins (G-protein coupled receptor, phosphodiesterase) are directly or indirectly involved in this process. Many proteins, such as CPEB, maskin, eIF4E, eIF4G, 4E-BP, and 4E-T, post-transcriptionally regulate mRNA via binding to the cap structure at the 5' end of mRNA or its 3' untranslated region (UTR) to generate a closed-loop structure. The 3' UTR of the transcript is also implicated in post-transcriptional regulation through an association with proteins such as CPEB, CPSF, GLD-2, PARN, and Dazl to modulate poly(A) tail length. RNA interfering is a new regulatory mechanism of the amount of mRNA in the mouse oocyte. This review summarizes information about post-transcriptional and post-translational regulation during mouse oocyte meiotic maturation.
Posttranscriptional regulation of RNA metabolism, including RNA processing, intron splicing, editing, RNA export, and decay, is increasingly regarded as an essential step for fine-tuning the regulation of gene expression in eukaryotes. RNA-binding proteins (RBPs) are central regulatory factors controlling posttranscriptional RNA metabolism during plant growth, development, and stress responses. Although functional roles of diverse RBPs in living organisms have been determined during the last decades, our understanding of the functional roles of RBPs in plants is lagging far behind our understanding of those in other organisms, including animals, bacteria, and viruses. However, recent functional analysis of multiple RBP family members involved in plant RNA metabolism and elucidation of the mechanistic roles of RBPs shed light on the cellular roles of diverse RBPs in growth, development, and stress responses of plants. In this review, we will discuss recent studies demonstrating the emerging roles of multiple RBP family members that play essential roles in RNA metabolism during plant growth, development, and stress responses.
In mammalian ovary, steroidogenic acute regulatory (StAR) protein mediates the true rate-limiting step of transport of cholesterol from outer to inner mitochondrial membrane. Appropriate expression of StAR gene represents an indispensable component of steroidogenesis and its regulation has been found to be species specific. However, limited information is available regarding StAR gene expression during estrous cycle in buffalo ovary. In the present study, expression, localization and hormonal regulation of StAR mRNA were analyzed by semi-quantitative RT-PCR in buffalo ovary and partial cDNA was cloned. Total RNA was isolated from whole follicles of different sizes, granulosa cells from different size follicles and postovulatory structures like corpus luteum and Corpus albicans. Semi-quantitative RT-PCR analyses showed StAR mRNA expression in the postovulatory structure, corpus luteum. No StAR mRNA was detected in total RNA isolated from whole follicles of different size including the preovulatory follicle (>9 mm in diameter). However, granulosa cells isolated from preovulatory follicles showed the moderate expression of StAR mRNA. To assess the hormonal regulation of StAR mRNA, primary culture of buffalo granulosa cells were treated with FSH (100 ng/ml) alone or along with IGF-I (100 ng/ml) for 12 to 18 h. The abundance of StAR mRNA increased in cells treated with FSH alone or FSH with IGF-I. However, effect of FSH with IGF-I on mRNA expression was found highly significant (p<0.01). In conclusion, differential expression of StAR messages was observed during estrous cycle in buffalo ovary. Also, there was a synergistic action of IGF-I on FSH stimulation of StAR gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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