Fast and accurate diagnosis is needed to eradicate and manage economically important and invasive diseases like fire blight. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) is known as the best on-site diagnostic, because it is fast, highly specific to a target, and less sensitive to inhibitors in samples. In this study, LAMP assay that gives more consistent results for on-site diagnosis of fire blight than the previous developed LAMP assays was developed. Primers for new LAMP assay (named as DS-LAMP) were designed from a histidine-tRNA ligase gene (EAMY_RS32025) of E. amylovora CFBP1430 genome. The DS-LAMP amplified DNA (positive detection) only from genomic DNA of E. amylovora strains, not from either E. pyrifoliae (causing black shoot blight) or from Pseudomonas syringae pv. syringae (causing shoot blight on apple trees). The detection limit of DS-LAMP was 10 cells per LAMP reaction, equivalent to $10^4$ cells per ml of the sample extract. DS-LAMP successfully diagnosed the pathogens on four fire-blight infected apple and pear orchards. In addition, it could distinguish black shoot blight from fire blight. The $B{\ddot{u}}hlmann$-LAMP, developed previously for on-site diagnosis of fire blight, did not give consistent results for specificity to E. amylovora and on-site diagnosis; it gave positive reactions to three strains of E. pyrifoliae and two strains of P. syringae pv. syringae. It also, gave positive reactions to some healthy sample extracts. DS-LAMP, developed in this study, would give more accurate on-site diagnosis of fire blight, especially in the Republic of Korea, where fire blight and black shoot blight coexist.
Thirty-seven carbofuran-degrading bacteria were isolated from agricultural soils, and their genetic and phenotypic characteristics were investigated. The isolates were able to utilize carbofuran as a sole source of carbon and energy. Analysis of the 16S rRNA gene sequence indicated that the isolates were related to members of the genera Rhodococcus, Sphingomonas, and Sphingobium, including new types of carbofuran-degrading bacteria, Bosea and Microbacterium. Among the 37 isolates, 15 different chromosomal DNA patterns were obtained by polymerase chain reaction (PCR) amplification of repetitive extragenic palindromic (REP) sequences. Five of the 15 representative isolates were able to degrade carbofuran phenol, fenoxycarb, and carbaryl, in addition to carbofuran. Ten of the 15 representative isolates had 1 to 8 plasmids. Among the 10 plasmid-containing isolates, plasmid-cured strains were obtained from 5 strains. The cured strains could not degrade carbofuran and other pesticides anymore, suggesting that the carbofuran degradative genes were on the plasmid DNAs in these strains. When analyzed with PCR amplification and dot-blot hybridization using the primers targeting for the previously reported carbofuran hydrolase gene (mcd), all of the isolates did not show any positive signals, suggesting that their carbofuran hydrolase genes had no significant sequence homology with the mcd gene.
Soybean mosaic virus (SMV) is the predominant viral pathogen that affects the yield and quality of soybean. The natural host range for SMV is very narrow, and generally limited to Leguminosae. However, we found that SMV can naturally infect Pinellia ternata and Atractylodes macrocephala. In order to clarify the molecular mechanisms underlying the cross-family infection of SMV, we used double-stranded RNA extraction, rapid amplification of cDNA ends polymerase chain reaction and Gibson assembly techniques to carry out SMV full-length genome amplification from susceptible soybeans and constructed an infectious cDNA clone for SMV. The genome of the SMV Shanxi isolate (SMV-SX) consists of 9,587 nt and encodes a polyprotein consisting of 3,067 aa. SMV-SX and SMV-XFQ008 had the highest nucleotide and amino acid sequence identities of 97.03% and 98.50%, respectively. A phylogenetic tree indicated that SMV-SX and SMV-XFQ018 were clustered together, sharing the closest relationship. We then constructed a pSMV-SX infectious cDNA clone by Gibson assembly technology and used this clone to inoculate soybean and Ailanthus altissima; the symptoms of these hosts were similar to those caused by the virus isolated from natural infected plant tissue. This method of construction not only makes up for the time-consuming and laborious defect of traditional methods used to construct infectious cDNA clones, but also avoids the toxicity of the Potyvirus special sequence to Escherichia coli, thus providing a useful cloning strategy for the construction of infectious cDNA clones for other viruses and laying down a foundation for the further investigation of SMV cross-family infection mechanisms.
Dental health care workers (DHCW) are at a risk of occupational exposure to Helicobacter pylori from the aerosolized oral biofilms and saliva of patients. We designed this study to investigate the prevalence of H. pylori in the oral biofilms of a group of dental and non-dental undergraduates from Sri Lanka. After obtaining informed consent, oral biofilms were collected from 38 dental undergraduates (19 males and 19 females) undergoing clinical training and 33 non-dental undergraduates (14 males and 19 females). The participants were in the age range of 22-27 years and had healthy periodontium. Total DNA from the oral biofilms were extracted, and H. pylori DNA was detected using polymerase chain reaction (PCR) amplification of 16S rRNA gene of H. pylori using JW22-JW23 primers, and the results were confirmed using PCR amplification of H. pylori-urease specific HPU1-HPU2 primers. Out of 71 participants, 11 (28.95%) dental and 3 (9.09%) non-dental undergraduates had H. pylori in their oral biofilms indicating an overall prevalence rate of 19.72% (14/71). Thus, the prevalence of H. pylori in oral biofilms was significantly higher in dental undergraduates than in non-dental undergraduates (p < 0.05). An odds ratio of 4.07 indicated that dental undergraduates were four times more likely to harbor H. pylori in their oral biofilms than non-dental undergraduates. Foregoing data support the fact that there may be greater occupational risk of exposure to H. pylori for dental undergraduates during clinical training than that for non-dental undergraduates, warranting meticulous infection control practices during clinical dentistry.
Biopharmaceuticals and the cell substrates used for their manufacture are currently tested for porcine adventitious viruses due to the widespread use of porcine trypsin in cell culture. Porcine transmissible gastroenteritis virus (PTGV) is one of the major adventitious porcine viruses causing contaminated during the manufacture of biopharmaceuticals. Therefore, rapid and sensitive detection of PTGV is essential in ensuring the safety of biopharmaceuticals. A TaqMan probe real-time RT-PCR method was developed for the quantitative detection of PTGV contamination in cell substrates, raw materials, manufacturing processes, and final products, as well as PTGV clearance validation. Specific primers for the amplification of PTGV RNA were selected, and PTGV RNA was quantified by use of a specific TaqMan probe. Specificity, limit of detection (LOD), and robustness of the method was validated according to international guidelines on the validation of nucleic acid amplification tests. The sensitivity of the assay was calculated to be 1.10 × 100 TCID50/ml. The real-time RT-PCR method was validated to be reproducible, very specific to PTGV, and robust. The established real-time RT-PCR assay was successfully applied to the validation of Chinese Hamster Ovary (CHO)-K1 cells artificially infected with PTGV.
Several lines of evidence indicate that some neuropeptides classically associated hypothalamus have been found in pituitary gland, suggesting the existence of local regulation of pituitary function. Among the hypothalamic releasing hormones, genes for TRH and GnRH are expressed in the rat anterior pituitary gland. The present study was carried out to investigate the expression of the GHRH gene in rat anterior pituitary and the pituitary-derived cell lines. The presence of GHRH transcripts in pituitary tissue was shown by 3'rapid amplification of cDNA end (3'-RACE) analysis. In reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) study, GHRH cDNA fragments were amplified from two pituitary-derived cell lines, $\alpha$T3 cells originated from mouse gonadotrope and GH3 cells from rat somatolactotrope. Immunoreactive GHRH was detected in large and medium-sized pituitary cells by immunocytochemistry. Significant amounts of GHRH-like molecules were found in the GH3 cell extracts. In RNase protection assay, the level of pituitary GHRH mRNA was augmented by ovariectomy. These results demonstrate that GHRH gene is expressed in the rat gonadotropes and somatotropes, and suggest that the pituitary GHRH could be participated in the paracrine and/or autocrine regulation of cell proliferation, as well as promoting growth hormone secretion.
In order to examine the prevalence of Cryptosporidium infection in wild rodents and insectivores of South Korea and to assess their potential role as a source of human cryptosporidiosis, a total of 199 wild rodents and insectivore specimens were collected from 10 regions of South Korea and screened for Cryptosporidium infection over a period of 2 years (2012-2013). A nested-PCR amplification of Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP) gene fragment revealed an overall prevalence of 34.2% (68/199). The sequence analysis of 18S rRNA gene locus of Cryptosporidium was performed from the fecal and cecum samples that tested positive by COWP amplification PCR. As a result, we identified 4 species/genotypes; chipmunk genotype I, cervine genotype I, C. muris, and a new genotype which is closely related to the bear genotype. The new genotype isolated from 12 Apodemus agrarius and 2 Apodemus chejuensis was not previously identified as known species or genotype, and therefore, it is supposed to be a novel genotype. In addition, the host spectrum of Cryptosporidium was extended to A. agrarius and Crosidura lasiura, which had not been reported before. In this study, we found that the Korean wild rodents and insectivores were infected with various Cryptosporidium spp. with large intra-genotypic variationa, indicating that they may function as potential reservoirs transmitting zoonotic Cryptosporidium to livestock and humans.
This study was performed to develop the molecular marker for sex determination of hare (Lepus coreanus) distributed in Korea which focused on sexual dimorphism between X and Y chromosomal homologous genes, zinc finger-X (ZFX) and -Y (ZFY). The intron 7 regions of ZFX and ZFY genes exhibited differential amplification patterns between male and female hares. The lengths of intron 7 region of ZFX and ZFY genes were 538 and 233-bp, respectively. Especially, the ZFX intron 7 contained a repetitive sequence identified as member of RNA-mediated transposable elements which was similar to CSINE2 commonly found in the rabbit genome. However, it was not present in intron 7 of ZFY gene. The molecular sex typing by polymerase chain reaction (PCR) was also carried out to determine the sex of hare based on difference in lengths between the intron 7 regions of ZFX and ZFY genes. All DNA samples tested had common band amplified from ZFX. However, the male hare DNAs had two distinct bands which amplified from ZFX and ZFY genes, respectively. The results from ZFX-ZFY PCR sex typing were identical to those from phenotypic investigation and from amplification patterns using male-specific sex determining region Y (SRY) gene as well. Finally, this study suggested that the sexual dimorphism between intron 7 regions of ZFX and ZFY could be useful genetic marker to determine sex of hare.
Foulbrood disease is infected by Paenibacillus larvae on larval stage of honeybee, and is lethal disease to result in population death. This disease was manifested in 2008 in Korea, is still suffered by the secondary damages. In this study, we are to examine diagnostic PCR approaches to manage the Foulbrood disease. PCR amplification of 16S rRNA is generally using for microbial infection, but the specificity is little poor for the correct diagnosis. Therefore, we are to identify specific genes expressed in Paenibacillus larvae, and perform PCR analysis. We selected five distinct genes from literature references. Those genes are commonly known as toxic genes for host infection, and include Toxin1, Toxin2A & 2B, SplA, CBP49, and SevA&SevB. PCR amplification for these genes is difficult to detect at the first time. So, we performed the second PCR using the first PCR product as a template. This approach using the nested PCR was very useful for detecting large marker genes. When Paenibacillus larvae was cultured in the medium containing plant extracts, PCR amplification of the identified genes is correlated with the microbial growth inhibition. Therefore, these results suggest that the identified genes might be useful to study diagnostic PCR markers for honeybee Foulbrood disease.
Recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cell lines expressing a high level of human thrombopoietin (hTPO) or its analog, TPO33r, were obtained by transfecting expression vectors into dihydrofolate reductase-deficient (dhfr) CHO cells and subsequent gene amplification in media containing stepwise increments in methotrexate (MTX) level such as 20, 80, and 320 nM. The parental clones with a hTPO expression level $>0.40\;{\mu}g/ml$ (27 out of 1,200 clones) and the parental clones with a TPO33r expression level $>0.20\;{\mu}g/ml$ (36 out of 400 clones) were subjected to 20 nM MTX. The clones that displayed an increased expression level at 20 nM MTX were subjected to stepwise increasing levels of MTX such as 80 and 320 nM. When subjected to 320 nM MTX, most clones did not display an increased expression level, since the detrimental effect of gene amplification on growth reduction outweighed its beneficial effect of specific TPO productivity ($q_{TPO}$) enhancement at 320 nM MTX. Accordingly, the highest producer subclones ($1-434-80^{*}$ for hTPO and $2-3-80^{*}$ for TPO33r), whose $q_{TPO}$ was 2- to 3-fold higher than that of their parental clones selected at 80 nM MTX, were isolated by limiting dilution method and were established as rCHO cel1 lines. The $q_{TPO}$ of $1-434-80^{*}\;and\;2-3-80^{*}\;was\;5.89{\pm}074\;and\;1.02{\pm}0.23\;{\mu}g/10^6$ cells/day, respectively. Southern and Northern blot analyses showed that the enhanced $q_{TPO}$ of established rCHO cell lines resulted mainly from the increased TPO gene copy number and subsequent increased TPO mRNA level. The hTPO and TPO33r produced from the established rCHO cell lines were biologically active in vivo, as demonstrated by their ability to elevate platelet counts in treated mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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