MicroRNAs (miRNAs) are a large family of post-transcriptional regulators, which are 21-24 nt in length and play a role in a wide variety of biological processes in eukaryotes. The past few years have seen rapid progress in our understanding of miRNA biogenesis and the mechanism of action, which commonly entails a combination of target degradation and translational repression. The target degradation mediated by Argonaute-catalyzed endonucleolytic cleavage exerts a significant repressive effect on target mRNA expression, particularly during rapid developmental transitions. This review outlines the current understanding of the mechanistic aspects of this important process and discusses several different experimental approaches to identify miRNA cleavage targets.
Methylglyoxal (MG) is an endogenous metabolite which is present in increased concentrations in diabetics and reacts with amino acids to form advanced glycation end products. In this study, we investigated whether ferritin enhances DNA cleavage by the reaction of MG with lysine. When plasmid DNA was incubated with MG and lysine in the presence of ferritin, DNA strand breakage was increased in a dose-dependent manner. The ferritin/MG/lysine system-mediated DNA cleavage was significantly inhibited by reactive oxygen species (ROS) scavengers. These results indicated that ROS might participate in the ferritin/MG/lysine system-mediated DNA cleavage. Incubation of ferritin with MG and lysine resulted in a time-dependent release of iron ions from the protein molecules. Our data suggest that DNA cleavage caused by the ferritin/MG/lysine system via the generation of ROS by the Fenton-like reaction of free iron ions released from oxidatively damaged ferritin.
Trichomonas vaginalis secretes a number of proteases which are suspected to be the cause of pathogenesis; however, little is understood how they manipulate host cells. The mammalian target of rapamycin (mTOR) regulates cell growth, cell proliferation, cell motility, cell survival, protein synthesis, and transcription. We detected various types of metalloproteinases including GP63 protein from T. vaginalis trophozoites, and T. vaginalis GP63 metalloproteinase was confirmed by sequencing and western blot. When SiHa cells were stimulated with live T. vaginalis, T. vaginalis excretory-secretory products (ESP) or T. vaginalis lysate, live T. vaginalis and T. vaginalis ESP induced the mTOR cleavage in both time-and parasite load-dependent manner, but T. vaginalis lysate did not. Pretreatment of T. vaginalis with a metalloproteinase inhibitor, 1,10-phenanthroline, completely disappeared the mTOR cleavage in SiHa cells. Collectively, T. vaginalis metallopeptidase induces host cell mTOR cleavage, which may be related to survival of the parasite.
Song, Yuanda;Dilger, Emily;Bell, Jessica;Barton, William A.;Fang, Xianjun
BMB Reports
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v.43
no.8
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pp.541-546
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2010
We utilized a mammalian expression system to purify and characterize autotaxin (ATX)/lysophospholipase D, an enzyme present in the blood responsible for biosynthesis of lysophosphatidic acid. The human ATX cDNA encoding amino acids 29-915 was cloned downstream of a secretion signal of CD5. At the carboxyl terminus was a thrombin cleavage site followed by the constant domain (Fc) of IgG to facilitate protein purification. The ATX-Fc fusion protein was expressed in HEK293 cells and isolated from conditioned medium of a stable clone by affinity chromatography with Protein A sepharose followed by cleavage with thrombin. The untagged ATX protein was further purified to essential homogeneity by gel filtration chromatography with a yield of approximately 5 mg/liter medium. The purified ATX protein was enzymatically active and biologically functional, offering a useful tool for further biological and structural studies of this important enzyme.
Kex2 protease (Kex2p) is a membrane-bound serine protease responsible for the proteolytic maturation of various secretory proteins by cleaving after dibasic residues in the late Golgi network. In this study, we present an application of Kex2p as an alternative endoprotease for the in vitro processing of recombinant fusion proteins produced by the yeast Saccharomyces cerevisiae. The proteins were expressed with a fusion partner connected by a Kex2p cleavage sequence for enhanced expression and easy purification. To avoid in vivo processing of fusion proteins by Kex2p during secretion and to guarantee efficient removal of the fusion partners by in vitro Kex2p processing, P1', P2', P4, and P3 sites of Kex2p cleavage sites were elaborately manipulated. The general use of Kex2p in recombinant protein production was confirmed using several recombinant proteins.
A complete cDNA, which encodes for a myostatin-like protein (Es-MSTN), was isolated from the Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis. Es-MSTN was composed of 2,397 nucleotides and the open reading frame (ORF) specified a protein containing 468 amino acids. Es-MSTN exhibited 32% amino acid sequence identity and 52% similarity to human myostatin. Multiple sequence alignment analysis indicated that Es-MSTN possessed the conserved proteolytic cleavage site (RXXR) for maturation of the protein and nine cysteine residues for disulfide bridges. Besides the conserved structural features, Es-MSTN also exhibits its unique characters; a longer N-terminal domain which is involved in protein folding and latent form of myostatin and absence of the cleavage site for BMP-1/tolloid family of metalloproteinase to activate mature myostatin. Phylogenetic analysis suggests that Es-MSTN showed the closely related to both vertebrate myostatin and GDF11. Es-MSTN is expressed highly in the claw muscle, leg muscle, thoracic muscle and heart, and moderately in the hindgut suggesting that Es-MSTN may play important roles in the muscle tissues. As homolog of mammalian myostatin and GDF11, Es-MSTN may be involved in development of muscular tissue and further study will help to produce high-quality seafood.
In order to develop procedures for the rapid isolation of recombinant sugar transporter in functional form from away from the endogenous insect cell transporter, gene fusion techniques were exploited. Briefly, BamH1-digested human HepG2 type glucose transport protein cDNA was first cloned into a transfer vector pBlueBacHis, containing a tract of six histidine residues. Recombinant baculoviruses including the human cDNA were then generated by allelic exchange following transfection of insect cells with wild-type BaculoGold virus DNA and the recombinant transfer vector. Plaque assay was then performed to obtain and purify recombinant viruses expressing the human transport protein. All the cell samples that had been infected with viruses from the several blue plaques exhibited a positive reaction in the immnuassay, demonstrating expression of the glucose transport protein. In contrast, no color development in the immunoassay was observed for cells infected with the wild-type virus or no virus. Immunoblot analysis showed that a major immunoreactive band of apparent Mr 43,000~44,000 was evident in the lysate from cells infected with the recombinant baculovirus. Following expression of the recombinant fusion protein with the metal-binding domain and enterokinase cleavage site, the fusion protein was recovered by competition with imidizole using immobilized metal charged resin. The leader peptide was then removed from the fusion protein by cleavage with porcine enterokinase. Final separation of the recombinant protein of the interest was achieved by passage over $Ni^{2+}$-charged resin under binding conditions. The expressed transport protein bound cytochalasin B and demonstrated a functional similarity to its human counterpart.
The formation of ${\beta}$-amyloid peptide ($A{\beta}$) is initiated from cleavage of amyloid precursor protein (APP) by a family of protease, ${\alpha}$-, ${\beta}$-, and ${\gamma}$-secretase. Sub W, a substrate peptide, consists of 10 amino acids, which are adjacent to the ${\beta}$-cleavage site of wild-type APP, and Sub M is Swedish mutant with double mutations on the left side of the ${\beta}$-cleavage site of APP. Sub W is a normal product of the metabolism of APP in the secretary pathway. Sub M is known to increase the efficiency of ${\beta}$-secretase activity, resulting in a more specific binding model compared to Sub W. Three-dimensional structures of Sub W and Sub M were studied by CD and NMR spectroscopy in water solution. On the basis of these structures, interaction models of ${\beta}$-secretase and substrate peptides were determined by molecular dynamics simulation. Four hydrogen bonds and one water-mediated interaction were formed in the docking models. In particular, the hydrogen bonding network of Sub M-BACE formed spread over the broad region of the active site of ${\beta}$-secretase (P5-P3'), and the side chain of P2- Asn formed a hydrogen bond specifically with the side chain of Arg235. These are more favorable to the cleavage of Sub M by ${\beta}$-secretase than Sub W. The two substrate peptides showed different tendency to bind to ${\beta}$-secretase and this information may useful for drug development to treat and prevent Alzheimer's disease.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.19
no.3
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pp.677-683
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2005
The aim of this study was to investigate the apoptotic effect and its mechanism on Radix Aconiti (RA) extract in HL-60 human leukemia cell line. RA extract induced apoptosis as confirmed by discontinuous fragmentation of DNA. To clarify the mechanisms on RA extract-induced apoptosis, we examined the caspase-3, -8 enzyme activity and protein levels including Fas, FasL in HL-60 cells. Treatment with RA extracts resulted in the increase of caspase-3 enzyme activity in a time and dose-dependent manners, which was accompanied by the cleavage of poly-(ADP-ribose) polymerase (PARP). This activation of caspase-3 enzyme resulted from cleavage of procaspase-8, which was followed by increases of FasL, Fas protein expression in RA extracts-treated HL-60 cells. In conclusion, RA extract induced apoptosis of HL-60 human leukemia cell line. This results suggest that the apoptotic mechanisms of RA extract on HL-60 cells involved in FasL, Fas activation, procaspase-8 cleavage, activation of caspase-3 and cleavage of PARP. Collectively, these results suggest that RA may be a valuable agent as a anti-cancer drug.
Zinc released from excited glutamatergic neurons accelerates amyloid ${\beta}$ (A ${\beta}$) aggregation, underscoring the therapeutic potential of zinc chelation for the treatment of Alzheimer's disease (AD). Zinc can also alter A ${\beta}$ concentration by affecting its degradation. In order to elucidate the possible role of zinc influx in secretase-processed A ${\beta}$ production, SH-SY5Y cells stably expressing amyloid precursor protein (APP) were treated with pyrrolidine dithiocarbamate (PDTC), a zinc ionophore, and the resultant changes in APP processing were examined. PDTC decreased A ${\beta}$ 40 and A ${\beta}$ 42 concentrations in culture media bathing APP-expressing SH-SY5Y cells. Measuring the levels of a series of C-terminal APP fragments generated by enzymatic cutting at different APP-cleavage sites showed that both ${\beta}$-and ${\alpha}$-cleavage of APP were inhibited by zinc influx. PDTC also interfered with the maturation of APP. PDTC, however, paradoxically increased the intracellular levels of A ${\beta}$ 40. These results indicate that inhibition of secretase-mediated APP cleavage accounts -at least in part- for zinc inhibition of A ${\beta}$ secretion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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