The nonobese diabetic / severe combined immune deficiency (NOD/SCID) has been used for determination of proliferation and differentiation of hematopoietic stem cells as xenotransplantation animal model. In this study, we transplanted porcine hematopoietic cells from bone marrow into NOD/SCID mice via intravenous injection to confirm the activity of differentiation and proliferation for porcine hematopoietic cells in vivo. Interestingly, we observed the result of high efficiency with pig T lymphocytes in hematopoietic organs, liver, spleen lymph node, and bone marrow in NOD/SCID mice. The porcine $CD3^{+}$ T cells were detected with $5.4{\pm}1.9%$ in bone marrow, $15.4{\pm}7.3%$ in spleen, $21.3{\pm}1.4%$ in liver, and $33.5{\pm}32.8%$ in lymph node of NOD/SCID mice at 6 weeks after trans-plantation Furthermore, immunohistochemical analysis showed the high engraftment of porcine T lymphocytes in spleen of NOD/SCID mice. Our data suggest that NOD/SCID mice are excellent animal model to determinate the generation md function of pig T lymphocytes.
The SCID-repopulation cells(SRCs) assay has been widely used to determine the self-renewal capacity of hematopoietic stem cells (HSCs). In this study, we tested the repopulating efficiency of porcine bone marrow derived hematopoietic stem cells using nonobese diabetic/severe combined immunodieficient (NOD/SCID) mice which was inherited immunodeficiency mire with defect of T cells, B cells, and low activity of NK cells. We transplanted porcine bone marrow hematopoietic stem/progenitor cells with intraperitoneal injection into neonate NOD/SCID mice. We confirmed efficient reconstitution activity of inoculated porcine hematopoietis cells in variety of organs of NOD/SCID mice. Interestingly, pig $CD3^+$ T lymphocytes detected with high level in liver($15.6{\pm}3.7%$), spleen($5.6{\pm}3.0%$), thymus($1.5{\pm}1.3%$), and BM($2.3{\pm}0.9%$), respectively. These data imply that microenvironment of neonate NOD/SCID mice is very efficient for proliferation and differentiation of porcine T cells, and can be useful for the study of T cells development and renogeneic organ transplantation.
Multidrug resistance of tumors has been a severe obstacle to the success of cancer chemotherapy. The study wants to investigate the reversal effects of imperatorin (IMP) on doxorubicin (DOX) resistance in K562/DOX leukemia cells, A2780/Taxol cells and in NOD/SCID mice, to explore the possible molecular mechanisms. K562/DOX and A2780/Taxol cells were treated with various concentrations of DOX and Taol with or without different concentrations of IMP, respectively. K562/DOX xenograft model was used to assess anti-tumor effect of IMP combined with DOX. MTT assay, Rhodamine 123 efflux assay, RT-PCR, and Western blot analysis were determined in vivo and in vitro. Results showed that IMP significantly enhanced the cytotoxicity of DOX and Taxol toward corresponding resistance cells. In vivo results illustrated both the tumor volume and tumor weight were significantly decreased after 2-week treatment with IMP combined with DOX compared to the DOX alone group. Western blotting and RT-PCR analyses indicated that IMP downregulated the expression of P-gp in K562/DOX xenograft tumors in NOD/SCID mice. We also evaluated glycolysis and glutamine metabolism in K562/DOX cells by measuring glucose consumption and lactate production. The results revealed that IMP could significantly reduce the glucose consumption and lactate production of K562/DOX cells. Furthermore, IMP could also remarkably repress the glutamine consumption, α-KG and ATP production of K562/DOX cells. Thus, IMP may sensitize K562/DOX cells to DOX and enhance the antitumor effect of DOX in K562/DOX xenograft tumors in NOD/SCID mice. IMP may be an adjuvant therapy to mitigate the multidrug resistance in leukemia chemotherapy.
The discovery of the immunodeficient mice has provided a tool for establishing animal models as hosts for in vivo analysis of AML. Various model systems have been established in the last few decades, and it is essential that murine AML models are developed to exploit more specific, targeted therapeutics. In this review, we concentrate on the models of AML and discuss the development of immunodeficiency models for understanding of leukemogenesis, describe those now available and their values and document the methods used for establishing and identifying AML mice models, as well as factors influencing engraftment of human AML in immunodeficient mice. Thus, the function of this article is to provide clinicians and experimentalists with a chronological, comprehensive appraisal of all AML model systems.
Humanized mice, containing engrafted human cells and tissues, are emerging as an important in vivo platform for studying human diseases. Since the development of Nod scid gamma (NSG) mice bearing mutations in the IL-2 receptor gamma chain, many investigators have used NSG mice engrafted with human hematopoietic stem cells (HSCs) to generate functional human immune systems in vivo, results in high efficacy of human cell engraftment. The development of NSG mice has allowed significant advances to be made in studies on several human diseases, including cancer and graft-versus-host-disease (GVHD), and in regenerative medicine. Based on the human HSC transplantation, organ transplantation including thymus and liver in the renal capsule has been performed. Also, immune reconstruction of cells, of the lymphoid as well as myeloid lineages, has been partly accomplished. However, crosstalk between pluripotent stem cell derived therapeutic cells with human leukocyte antigen (HLA) mis/matched types and immune CD3 T cells have not been fully addressed. To overcome this hurdle, human major histocompatibility complex (MHC) molecules, not mouse MHC molecules, are required to generate functional T cells in a humanized mouse model. Here, we briefly summarize characteristics of the humanized mouse model, focusing on development of CD3 T cells with MHC molecules. We also highlight the necessity of the humanized mouse model for the treatment of various human diseases.
Lee, Gab Sang;Kim, Byung Soo;Sheih, Jae-hung;Moore, Malcolm AS
Molecules and Cells
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v.25
no.4
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pp.487-493
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2008
HoxB4 has been shown to enhance hematopoietic engraftment by hematopoietic stem cells (HSC) from differentiating mouse embryonic stem cell (mESC) cultures. Here we examined the effect of ectopic expression of HoxB4 in differentiated human embryonic stem cells (hESCs). Stable HoxB4-expressing hESCs were established by lentiviral transduction, and the forced expression of HoxB4 did not affect stem cell features. HoxB4-expressing hESC-derived CD34+ cells generated higher numbers of erythroid and blast-like colonies than controls. The number of CD34+ cells increased but CD45+ and KDR+ cell numbers were not significantly affected. When the hESC derived CD34+ cells were transplanted into $NOD/SCID{\beta}2m-/-$ mice, the ectopic expression of HoxB4 did not alter their repopulating capacity. Our findings show that overexpression of HoxB4 in differentiating hESCs increases hematopoietic colony formation and hematopoietic cell formation in vitro, but does not affect in vivo repopulation in adult mice hosts.
Objective : EID3 (EP300-interacting inhibitor of differentiation) was identified as a novel member of EID family and plays a pivotal role in colorectal cancer development. However, its role in glioma remained elusive. In current study, we identified EID3 as a novel oncogenic molecule in human glioma and is critical for glioma cell survival, proliferation and invasion. Methods : A total of five patients with glioma were recruited in present study and fresh glioma samples were removed from patients. Four weeks old male non-obese diabetic severe combined immune deficiency (NOD/SCID) mice were used as transplant recipient models. The subcutaneous tumor size was calculated and recorded every week with vernier caliper. EID3 and AMP-activated protein kinase α1 (AMPKα1) expression levels were confirmed by real-time polymerase chain reaction and Western blot assays. Colony formation assays were performed to evaluate cell proliferation. Methyl thiazolyl tetrazolium (MTT) assays were performed for cell viability assessment. Trypan blue staining approach was applied for cell death assessment. Cell Apoptosis DNA ELISA Detection Kit was used for apoptosis assessment. Results : EID3 was preferentially expressed in glioma tissues/cells, while undetectable in astrocytes, neuronal cells, or normal brain tissues. EID3 knocking down significantly hindered glioma cell proliferation and invasion, as well as induced reduction of cell viability, apoptosis and cell death. EID3 knocking down also greatly inhibited tumor growth in SCID mice. Knocking down of AMPKα1 could effectively rescue glioma cells from apoptosis and cell death caused by EID3 absence, indicating that AMPKα1 acted as a key downstream regulator of EID3 and mediated suppression effects caused by EID3 knocking down inhibition. These findings were confirmed in glioma cells generated patient-derived xenograft models. AMPKα1 protein levels were affected by MG132 treatment in glioma, which suggested EID3 might down regulate AMPKα1 through protein degradation. Conclusion : Collectively, our study demonstrated that EID3 promoted glioma cell proliferation and survival by inhibiting AMPKα1 expression. Targeting EID3 might represent a promising strategy for treating glioma.
Objective: The present study was conducted to evaluate the viability of germ cells from the adult and fetal ovarian tissues after vitrification followed by xenografting. Method: The human adult ovarian tissues were obtained from 33 years old patient, and the fetal ovarian tissues were obtained from 22 weeks and 25 weeks in gestation. Ovarian tissues were cryopreserved by vitrification with 5.5 M ethylene glycol (EG 5.5) and 1.0 M sucrose as cryoprotectants. Adult and fetal ovarian tissues were pre-equilibrated with EG 5.5 at room temperature for 10 and 5 minutes, respectively and plunged into liquid nitrogen immediately. Frozen-thawed tissues were xenografted into NOD-SCID mice to evaluate the viability and capacity for further growth of the primordial follicles. Grafts were recovered from the recipients 4 weeks after transplantation and histological analysis was accomplished. Result and Conclusion: Grafts recovered 4 weeks after transplantation contained less number of oocytes and primordial follicles compared to that of the fresh tissues. Survived follicles were mainly primordial and intermediary with larger diameter and more granulosa cells. It is confirmed that 1) the ovarian tissues were healthy and the germ cells were survived after vitrification, and 2) the survived fetal primordial follicles after vitrification resumed the growth in the xenografts.
Endothelial cells are a vital constituent of most mammalian organs and are required to maintain the integrity of these tissues. These cells also play a major role in angiogenesis, inflammatory reactions, and in the regulation of thrombosis. Angiogenesis facilitates pulp formation and produces the vessels which are essential for the maintenance of tooth homeostasis. These vessels can also be used in bone and tissue regeneration, and in surgical procedures to place implants or to remove cancerous tissue. Furthermore, endothelial cell regeneration is the most critical component of the tooth generation process. The aim of the present study was to stimulate endothelial regeneration at a site of acute cyclophosphamide (CP)-induced endothelial injury by treatment with human umbilical cord-derived endothelial/mesenchymal stem cells (hEPCs). We randomly assigned 16 to 20-week-old female NOD/SCID mice into three separate groups, a hEPC ($1{\times}10^5$ cells) transplanted, 300mg/kg CP treated and saline (control) group. The mice were sacrificed on days 5 and 10 and blood was collected via the abdominal aorta for analysis. The alanine transaminase (ALT), aspartate aminotransferase (AST), serum alkaline phosphatase (s-ALP), and albumin (ALB) levels were then evaluated. Tissue sections from the livers and kidneys were stained with hematoxylin and eosin (HE) for microscopic analysis and were subjected to immunohistochemistry to evaluate any changes in the endothelial layer. CP treatment caused a weight reduction after one day. The kidney/body weight ratio increased in the hEPC treated animals compared with the CP only group at 10 days. Moreover, hEPC treatment resulted in reduced s-ALP, AST, ALT levels compared with the CP only group at 10 days. The CP only animals further showed endothelial injuries at five days which were recovered by hEPC treatment at 10 days. The number of CD31-positive cells was increased by hEPC treatment at both 5 and 10 days. In conclusion, the CP-induced disruption of endothelial cells is recovered by hEPC treatment, indicating that hEPC transplantation has potential benefits in the treatment of endothelial damage.
Human mesenchymal stem cells(hMSC), that have been reported to be present in bone marrow, adipose tissues, dermis, muscles and peripheral blood, have the potential to differentiate along different lineages including those forming bone, cartilage, fat, muscle and neuron. Therefore, hMSC are attractive candidates for cell and gene therapy. The optimal conditions for hMSC expansion require medium supplemented with fetal bovine serum(FBS). Some forms of cell therapy will involve multiple doses, raising a concern over immunological reactions caused by medium-derived FBS proteins. Previously, we have shown that hADSC can be cultured in human serum(HS) during their isolation and expansion, and that they maintain their proliferative capacity and ability for multilineage differentiation and promote engraftment of peripheral blood-derived CD34 cells mobilized from bone marrow in NOD/SCID mice. In this study we determined whether hADSC grown in HS maintain surface markers expression similar with cells grown in FBS during culture expansion and compared gene expression profile by Affymetrix microarray. Flow cytometry analysis showed that HLA-DR, CD117, CD29 and CD44 expression in HS-cultured hADSC during culture expansion were similar with that in FBS-cultured cells. However, the gene expression profile in HS-cultured hADSC was significantly different from that in FBS-cultured cells. Therefore, these data indicated that HS-cultured hADSC should be used in vivo animal study of hADSC transplantation for direct extrapolation of preclinical data into clinical application.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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