Background: Hypoxia causes oxidative stress and affects cardiovascular function and the programming of cardiovascular disease. Melatonin promotes antioxidant enzymes such as superoxide dismutase, glutathione reductase, glutathione peroxidase, and catalase. Objectives: This study aims to investigate the correlation between melatonin and hypoxia induction in cardiomyocytes differentiation. Methods: Mouse embryonic stem cells (mESCs) were induced to myocardial differentiation. To demonstrate the influence of melatonin under hypoxia, mESC was pretreated with melatonin and then cultured in hypoxic condition. The cardiac beating ratio of the mESC-derived cardiomyocytes, mRNA and protein expression levels were investigated. Results: Under hypoxic condition, the mRNA expression of cardiac-lineage markers (Brachyury, Tbx20, and cTn1) and melatonin receptor (Mtnr1a) was reduced. The mRNA expression of cTn1 and the beating ratio of mESCs increased when melatonin was treated simultaneously with hypoxia, compared to when only exposed to hypoxia. Hypoxia-inducible factor (HIF)-1α protein decreased with melatonin treatment under hypoxia, and Mtnr1a mRNA expression increased. When the cells were exposed to hypoxia with melatonin treatment, the protein expressions of phospho-extracellular signal-related kinase (p-ERK) and Bcl-2-associated X proteins (Bax) decreased, however, the levels of phospho-protein kinase B (p-Akt), phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K), B-cell lymphoma 2 (Bcl-2) proteins, and antioxidant enzymes including Cu/Zn-SOD, Mn-SOD, and catalase were increased. Competitive melatonin receptor antagonist luzindole blocked the melatonin-induced effects. Conclusions: This study demonstrates that hypoxia inhibits cardiomyocytes differentiation and melatonin partially mitigates the adverse effect of hypoxia in myocardial differentiation by regulating apoptosis and oxidative stress through the p-AKT and PI3K pathway.
CCCTC-binding factor (CTCF) critically contributes to 3D chromatin organization by determining topologically associated domain (TAD) borders. Although CTCF primarily binds at TAD borders, there also exist putative CTCF-binding sites within TADs, which are spread throughout the genome by retrotransposition. However, the detailed mechanism responsible for masking the putative CTCF-binding sites remains largely elusive. Here, we show that the ATP-dependent chromatin remodeler, chromodomain helicase DNA-binding 4 (CHD4), regulates chromatin accessibility to conceal aberrant CTCF-binding sites embedded in H3K9me3-enriched heterochromatic B2 short interspersed nuclear elements (SINEs) in mouse embryonic stem cells (mESCs). Upon CHD4 depletion, these aberrant CTCF-binding sites become accessible and aberrant CTCF recruitment occurs within TADs, resulting in disorganization of local TADs. RNA-binding intrinsically disordered domains (IDRs) of CHD4 are required to prevent this aberrant CTCF binding, and CHD4 is critical for the repression of B2 SINE transcripts. These results collectively reveal that a CHD4-mediated mechanism ensures appropriate CTCF binding and associated TAD organization in mESCs.
Testis-derived germline stem (GS) cells can undergo reprogramming to acquire multipotency when cultured under appropriate culture conditions. These multipotent GS (mGS) cells have been known to differ from GS cells in their DNA methylation pattern. In this study, we examined the DNA methylation status of the H19 imprinting control region (ICR) in multipotent adult germline stem (maGS) cells to elucidate how epigenetic imprints are altered by culture conditions. DNA methylation was analyzed by bisulfite sequencing PCR of established maGS cells cultured in the presence of glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) alone or both GDNF and leukemia inhibitory factor (LIF). The results showed that the H19 ICR in maGS cells of both groups was hypermethylated and had an androgenetic pattern similar to that of GS cells. In line with these data, the relative abundance of the Igf2 mRNA transcript was two-fold higher and that of H19 was three fold lower than in control embryonic stem cells. The androgenetic DNA methylation pattern of the H19 ICR was maintained even after 54 passages. Furthermore, differentiating maGS cells from retinoic acid-treated embryoid bodies maintained the androgenetic imprinting pattern of the H19 ICR. Taken together these data suggest that our maGS cells are epigenetically stable for the H19 gene during in vitro modifications. Further studies on the epigenetic regulation and chromatin structure of maGS cells are therefore necessary before their full potential can be utilized in regenerative medicine.
Gangliosides play important roles in the control of several biological processes, including proliferation and transmembrane signaling. In this study, we demonstrate the effect of ganglioside GM1 on the proliferation of mouse induced pluripotent stem cells (miPSCs). The proliferation rate of miPSCs was lower than in mouse embryonic stem cells (mESCs). Fluorescence activated cell sorting analysis showed that the percentage of cells in the G2/M phase in miPSCs was lower than that in mESCs. GM1 was expressed in mESCs, but not miPSCs. To confirm the role of GM1 in miPSC proliferation, miPSCs were treated with GM1. GM1-treated miPSCs exhibited increased cell proliferation and a larger number of cells in the G2/M phase. Furthermore, phosphorylation of mitogen-activated protein kinases was increased in GM1-treated miPSCs.
Lim, Joong-Yeon;Kim, Won Ho;Kim, Joon;Park, Sang Ick
Molecules and Cells
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v.24
no.3
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pp.431-436
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2007
Stem cell-based therapy is being considered as an alternative treatment for cardiomyopathy. Hence understanding the basic molecular mechanisms of cardiomyocyte differentiation is important. Besides BMP or Wnt family proteins, TGF−β family members are thought to play a role in cardiac development and differentiation. Although TGF−β has been reported to induce cardiac differentiation in embryonic stem cells, the differential role of TGF−β isoforms has not been elucidated. In this study, employing the DMSO-induced cardiomyocyte differentiation system using P19CL6 mouse embryonic teratocarcinoma stem cells, we investigated the TGF−β-induced signaling pathway in cardiomyocyte differentiation. TGF−β1, but not the other two isoforms of TGF−β, was induced at the mRNA and protein level at an early stage of differentiation, and Smad2 phosphorylation increased in parallel with TGF−β1 induction. Inhibition of TGF−β1 activity with TGF−β1-specific neutralizing antibody reduced cell cycle arrest as well as expression of the CDK inhibitor p21WAF1. The antibody also inhibited induction of the cardiac transcription factor Nkx2.5. Taken together, these results suggest that TGF−β1 is involved in cardiomyocyte differentiation by regulating cell cycle progression and cardiac gene expression in an autocrine or paracrine manner.
Park, Se-Pill;Kim, Eun-Young;Lee, Keum-Si;Lee, Young-Jae;Shin, Hyun-Ah;Min, Hyun-Jung;Lee, Hoon-Taek;Chung, Kil-Saeng;Lim, Jin-Ho
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.29
no.2
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pp.129-138
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2002
Objective: This study was to compare the characteristics between parthenogenetic mES (P-mES) cells and in vitro fertilization mES cells. Materials and Methods: Mouse oocytes were recovered from superovulated 4 wks hybrid F1 (C57BL/6xCBA/N) female mice. For parthenogenetic activation, oocytes were treated with 7% ethanol for 5 min and 5μg/ml cytochalasin-B for 4 h. For IVF, oocytes were inseminated with epididymal sperm of hybrid F1 male mice (1times106/ml). IVF and parthenogenetic embryos were cultured in M16 medium for 4 days. Cell number count of blastocysts in those two groups was taken by differential labelling using propidium iodide (red) and bisbenzimide (blue). To establish ES cells, b1astocysts in IVF and parthenogenetic groups were treated by immunosurgery and recovered inner cell mass (ICM) cells were cultured in LIF added ES culture medium. To identify ES cells, the surface markers alkaline phosphatase, SSEA-1, 3,4 and Oct4 staining were examined in rep1ated ICM colonies. Chromosome numbers in P-mES and mES were checked. Also, in vitro differentiation potential of P-mES and mES was examined. Results: Although the cleavage rate (≥2-cell) was not different between IVF (76.3%) and parthenogenetic group (67.0%), in vitro development rate was significantly low in parthenogenetic group (24.0%) than IVF group (68.4%) (p<0.05). Cell number count of ICM and total cell in parthenogenetic b1astocysts (9.6±3.1,35.1±5.2) were signficantly lower than those of IVF blastocysts (19.5±4.7,63.2±13.0) (p<0.05). Through the serial treatment procedure such as immunosurgery, plating of ICM and colony formation, two ICM colonies in IVF group (mES, 10.0%) and three ICM colonies (P-mES, 42.9%) in parthenogenetic group were able to culture for extended duration (25 and 20 passages, respectively). Using surface markers, alkaline phosphatase, SSEA-l and Oct4 in P-mES and mES colony were positively stained. The number of chromosome was normal in ES colony from two groups. Also, in vitro neural and cardiac cell differentiation derived from mES or P-mES cells was confirmed. Conclusion: This study suggested that P-mES cells can be successfully established and that those cell lines have similar characteristics to mES cells.
Lipopolysaccharide (LPS) is an endotoxin factor present in the cell wall of Gram-negative bacteria and induces various immune responses to infection. Recent studies have reported that LPS induces cellular stress in various cells including oocytes and embryos. Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine) is a regulatory hormone of circadian rhythm and a powerful antioxidant. It has been known that melatonin has an effective function in scavenging oxygen free radicals and has been used as an antioxidant to reduce the cytotoxic effects induced by LPS. However, the effect of melatonin on LPS treated early embryonic development has not yet been confirmed. In this study, we cultured mouse embryos in medium supplemented with LPS or/and melatonin up to the blastocyst stage in vitro and then evaluated the developmental rate. As a result of the LPS-treatment, the rate of blastocyst development was significantly reduced compared to the control group in all the LPS groups. Next, in the melatonin only treated group, there was no statistical difference in embryonic development and no toxic effects were observed. And then we found that the treatment of melatonin improved the rates of compaction and blastocyst development of LPS-treated embryos. In addition, we showed that melatonin treatment decreased ROS levels compared to the LPS only treated group. In conclusion, we demonstrated the protective effect of melatonin on the embryonic developmental rate reduced by LPS. These results suggest a direction to improve reproduction loss that may occur due to LPS exposure and bacterial infection through the using of melatonin during in vitro culture.
Kim, Songhee H.;Vieira, Melissa;Kim, Hye-Jin;Kesawat, Mahipal Singh;Park, Hye Yoon
Molecules and Cells
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v.42
no.4
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pp.356-362
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2019
The binding of MS2 bacteriophage coat protein (MCP) to MS2 binding site (MBS) RNA stem-loop sequences has been widely used to label mRNA for live-cell imaging at single-molecule resolution. However, concerns have been raised recently from studies with budding yeast showing aberrant mRNA metabolism following the MS2-GFP labeling. To investigate the degradation pattern of MS2-GFP-labeled mRNA in mammalian cells and tissues, we used Northern blot analysis of β-actin mRNA extracted from the Actb-MBS knock-in and MBS×MCP hybrid mouse models. In the immortalized mouse embryonic cell lines and various organ tissues derived from the mouse models, we found no noticeable accumulation of decay products of β-actin mRNA compared with the wild-type mice. Our results suggest that accumulation of MBS RNA decay fragments does not always happen depending on the mRNA species and the model organisms used.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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